Анализ красителей Определение индивидуальности красителей

Количественное определение красителей методами химического анализа возможно в тех случаях, когда известно строение красителя и когда краситель обладает активной группой, поддающейся восстановлению, окислению или другим химическим реакциям, протекающим количественно. В зависимости от химических свойств красителей различных классов применяется тот или другой метод их количественного определения. Само собой разумеется, что количественный анализ красителей дает определенные и точные результаты только в применении к индивидуальным красителям, а не к смесям красителей. [c.321]

Такой ппием хроматографического анализа можно использовать как для качественного открытия состава смеси, так и для количественного определения содержания ее компонентов. Для качественного определения индивидуальное вещество, содержащееся в каждом пятне проявленной хроматограммы, идентифицируют посредством характерных реакций. Если хроматографическому анализу подвергается смесь красителей, отдельные компоненты идентифицируют по их цвету и по изменениям их цвета при действии различных реагентов. Хроматограмму смеси бесцветных веществ можно расшифровать, превратив бесцветные вещества в окрашенные (например, в результате реакций диазотирования, сочетания, окисления и т. п.). Для расшифровки хроматограммы часто пользуются ультрафиолетовыми лучами, наблюдая [c.319]

Денситометрическое определение всех классов соединений на основе использования обычных методов проявления хроматограмм недостаточно точно ввиду отсутствия единой для всех соединений пропорциональности оптической плотности и концентрации. Однако менее трудоемко. Исходя из этих положений, Д. И. Кузнецов и Л. И. Семенова [4] разработали методику денситометрического определения индивидуальных классов липидов, в том числе стеринов, на основе хроматографии в тонком слое силикагеля. Принцип метода заключается в том, что перед анализом к силикагелю добавляют краситель метиловый красный. Липиды проявляются в виде пурпурных пятен на розовом, а затем желтом фоне. После обесцвечивания фона парами аммиака хроматограмму фотографируют и затем фотокопии денсйтом трйрукЛ, сравнивая оптическую плотность изучаемых фракций с оптической плотностью стандарта. [c.213]

Хроматографический анализ органических веществ развивался попутно с хроматографией неорганических веществ. В 1935— 1936 гг. появились первые сообщения об успешном применении метода Цвета в анализе синтетических красителей. Из жидкофазных вариантов хроматографии наиболее широкое применение в органической и биологической химии получила бумажная хроматография. Это тонкий микрометод, позволяющий разделять смеси нескольких десятков компонентов на полоске пористой бумаги, которая выполняет роль хроматографической колонки. Хроматограмма получается в виде пятен, окраска которых соответствует природной окраске разделяемых компонентов смеси. При анализе бесцветных веществ пятна проявляют, опрыскивая бумагу реактивом, образующим с разделяемыми компонентами окрашенные соединения. Например, при определении аминокислотного состава белков после их гидролиза бумагу опрыскивают раствором нин-гидрина, в результате чего на поверхности бумаги появляются пятна розового цвета, соответствующие индивидуальным аминокислотам (см. рис. 1.2). Если разделяемые бесцветные вещества обладают способностью к флуоресценции, бумагу облучают ультрафиолетовыми лучами (кварцевой или ртутной лампой) и тогда хроматограмма становится видимой. Этот случай можно наблюдать при разделении смеси антрахинонов, пятна которых в ультра- [c.9]

Проведена оценка аналитических возможностей поляри зованной люминесценции. Исследована принципиальная возможность проведения количественного анализа двухкомпонентной системы, состоящей из органических веществ с практически совпадающими спектрами люминесценции, по их поляризационным спектрам. Показана зависимость суммарной степени поляризации системы от соотнощения компонентов в ней. Получены формулы, позволяющие оценить влияние различных факторов на суммарную степень поляризации и рассчитать значение индивидуальной интенсивности для каждого из компонентов системы. Проведена экспериментальная проверка полученных математических зависимостей на модельных смесях, состоящих из представителей класса акридиновых красителей, а также на ряде оксипроизводных бензола. Проверка подтвердила правильность полученных математических выражений, показала достаточную чувствительность и точность предлагаемого метода количественного люминесцентного анализа. Максимальная ошибка определения составляла 13% при содержании анализируемых компонентов [c.162]

Методы определения технического и химического классов красителей на вторичном ацетате целлюлозы, а также способы идентификации индивидуальных дисперсных красителей описаны в работе [18]. Дифференциацию красителей одного цвета (желтый, оранжевый и др.) проводят с помощью флуоресценции в УФ-свете, отношения к диазотированию и сочетанию (ароматическиеамины), восстановлению, окислению, а также различными капельными пробами, исследованием цвета раствора в концентрированной серной кислоте. Указанные приемы часто достаточны для идентификации большого числа красителей. В случае, когда красители показывают идентичные реакции, их подвергают хроматографическому анализу или исследуют с помощью ИК-спектроскопии. [c.415]

В первую очередь разделяют жирорастворимые красители, для чего проводят элюирование хлористым метиленом. Этот растворитель одновремено вымывает жиры и масла на край пластинки, предотвращая их вредное действие при последующем разделении водорастворимых красителей, которые остаются на старте хроматограмы. Второе элюирование пластинки с использованием системы растворителей этилацетат — метанол — 30% водный аммиак (15 3 3) позволяет разделить водорастворимые красители. Далее красители индивидуально экстрагируют с силикагеля, после чего идентифицируют, а также подвергают количественному определению с помощью спектрофотометрии. Первоначально метод был предложен для анализа 15 красителей, допущенных к использованию в губной помаде, хотя другие красители, в случае их присутствия, также могут разделяться в указанных условиях. Опубликован [36] другой метод тонкослойного хроматографического анализа косметических красителей в губной помаде. Комбинируя системы растворителей увеличивающейся полярности удается разделить более чем 150 красителей. В число этих красителей входят не только допущенные в Соединенных Штатах, но также многие красители, применяющиеся для косметических целей в других странах. [c.490]

Клеточная память играет чрезвычайно важную роль, и именно по этой причине поведение клеток в определенное время зависит от того выбора, что был сделан ее предками в предыдущих циклах деления. Таким образом, для полного понимания всей программы развития необходимо знать, как осуществлялись клеточные деления, т.е. необходимо знать генеалогию индивидуальных клеток эмбриона. В этом и состоит сущность генеалогического анализа, проведение которого, особенно на примере крупных и сложно организованных животных (например, позвоночных), представляет собой довольно трудную задачу. Если на ранних стадиях развития специфически пометить отдельные клетки, то на более поздних стадиях можно идентифицировать сами клетки или их потомки. Один из способов мечения заключается в микроинъекции специфических молекул, за которыми легко следить (нанример, флуоресцирующие красители или фермент пероксидазу хрена см. разд.. 19.1.5), в клетки ранних эмбрионов (рис. 16-29). Кроме того, отдельные клетки эмбриона можно пометить генетически, нанример, создавая условия для их инфекции специально выбранным ретро-вирусом (см. разд. 17.5.4) или подвергая эмбрионы действию ионизирующего излучения, вызываюшего случайные соматические мутации (см. разд. 16.5.13). Эти методы генеалогического анализа весьма трудоемки и каждый из экспериментов дает лишь небольшую информацию [c.85]