Среды культуральные для выращивания микроорганизмов

Независимо от вида используемого сырья технологический процесс производства микробных белковых препаратов состоит из следующих основных стадий подготовка сырья и приготовление питательных сред для выращивания микроорганизмов культивирование микроорганизмов выделение биомассы продуцента из культуральной жидкости плазмолиз клеток сушка биомассы фасовка и упаковка готового препарата. [c.83]

Очень многие культуральные среды для выращивания бактерий и дрожжей по существу являются ньютоновскими жидкостями даже при очень высокой плотности клеток, если только в среду не экскретируются в значительном количестве синтезируемые этими микроорганизмами биополимеры. Напротив, культуральные жидкости, в которых растут плесневые грибы или актиномицеты, часто являются неньютоновскими, причем степень отклонения их от поведения ньютоновских жидкостей зависит как от концентрации мицелия, так и от его морфологии. При удалении мицелия из большинства культуральных жидкостей плесневых грибов и актиномицетов они становятся ньютоновскими. [c.458]

Для практических целей микроорганизмы выращивают в виде чистых культур, которыми называют культуры, состоящие только из одного вида размножившихся в среде микроорганизмов. Чистую культуру можно получить лишь искусственным путем в лаборатории. В природе— в естественных субстратах — микроорганизмы встречаются в виде групповых скоплений, где имеются актиномицеты, бактерии, плесени и другие микробы. Иногда при выращивании определенных видов микроорганизмов в их культуральную жидкость или среду попадают посторонние микроорганизмы. Такая культуральная жидкость называется нестерильной. [c.19]

Микроорганизмы, образующие аминокислоты, не накапливают их в клетке, а постоянно секретируют в питательную среду. Поэтому аминокислоты выделяют из фильтрата культуральной жидкости. Выращивание микроорганизмов ведется в стерильных условиях. Обычно продуцентами аминокислот являются ауксотрофные му- [c.18]

ООО О Среды культуральные для выращивания микроорганизмов [c.390]

Стадия предварительной обработки культуральной жидкости, клеток (мицелия) микроорганизма и фильтрации (отделения культуральной жидкости от биомассы продуцента). Эффективность стадии во многом определяется составом среды для выращивания продуцента антибиотика, характером его роста, местом основного накопления биологически активного вещества (в культуральной жидкости или внутриклеточно). [c.475]

Батарейный способ. Микроорганизмы развиваются в ряду последовательно соединенных ферментеров. Культуральная жидкость на определенной стадии развития микроорганизма перекачивается из первого ферментера во второй, затем из второго — в третий и т.д. Освобожденный ферментер немедленно заполняется свежей питательной средой, засеянной микроорганизмом. При этом способе выращивания микроорганизмов емкости используются более рационально. [c.477]

При осуществлении транспорта кислорода соответственно уравнению (8) абсорбция кислорода культуральной средой не будет лимитировать процесс выращивания микроорганизмов. [c.142]

Аэрация среды. Продуценты известных антибиотиков, образуемых микроорганизмами, это аэробы, требующие для своего развития хорошо аэрируемых условий. Обеспечение культур микроорганизмов кислородом осуществляется в основном следующими способами пропусканием воздуха через культуральную жидкость с одновременным ее перемешиванием встряхиванием культуральной среды, находящейся в колбах, на специальных качалках выращиванием микроорганизмов в виде пленки на поверхности питательной среды. [c.261]

Уравнение (12) позволяет определить концентрацию растворенного в культуральной среде кислорода в периодически действующем аппарате при выращивании микроорганизмов для любого момента времени. [c.144]

Выделение ферментных препаратов из клеток микроорганизмов и особенно из культуральной среды после их выращивания проще и экономичнее, чем из растительных и животных тканей. [c.50]

В ИСО/ТК 147 стандартизацией методов бактериального контроля воды занимаются специалисты ПК 4 Микробиологические методы [4, 5 ]. Особое внимание специалисты подкомитета уделяют стандартизации общих требований к выращиванию колоний микроорганизмов. ИСО 8199 устанавливает требования к безопасности и гигиене в микробиологической лаборатории, общие требования при приготовлении культуральных сред, их стерилизации, дает примеры разбавителей, часто используемых в микробиологическом анализе, а также буферных растворов, устанавливает требования к стерилизации приборов и посуды. В стандарте приведены общие требования к отбору проб для микробиологического анализа, их консервации и транспортированию, методике разбавления пробы и ее высева на культуральную среду, а также инкубации. [c.388]

Охлажденную среду передают в ферментер, после чего ее засевают полученным посевным материалом. При аэробном процессе аэрацию осуществляют продуванием через ферментационную жидкость предварительно, простерилизованного воздуха, который пропускают через- систему фильтров. Ферментация продолжается при определенном режиме в течение нескольких суток—г от 3 до 8. За это время микроорганизмы в процессе жизнедеятельности вырабатывают антибиотические вещества (или витамин В12). Концентрация антибиотиков в культуральной жидкости (мицелии, биомассе) зависит от продуктивности культуры, состава среды и условий выращивания. [c.24]

Принципиальная технологическая схема получения белковых препаратов при культивировании микроорганизмов на очищенных жидких н-парафинах нефти. Схема (рис. 75) включает следующие основные операции подготовку питательной среды, выращивание и дозревание биомассы микроорганизма, отделение и промывку полученной биомассы от культуральной жидкости, концентрирование биомассы и ее сушку. [c.245]

Неочишенные ферментные препараты получают путем высушивания в мягком режиме культуры микроорганизмов вместе с остатками питательной среды. Такие препараты получают и путем упаривания экстракта из культуры продуцента, выращенного поверхностным способом, или из фильтрата культуральной жидкости (в случае глубинного выращивания микроорганизмов). Распространен также метод ацетоновых порошков, состоящий в осаждении и быстром обезвоживании при температуре не вьппе -10 °С тканей или вытяжек из них, содержащих ферменты. Технические препараты ферментов представляют собой либо высушенные до порошкообразного состояния продукты, либо жидкие концентраты, обычно характеризующиеся 50 %-м содержанием сухой массы веществ. [c.79]

Принцип устройства одного из простых приборов для непрерывного выращивания микроорганизмов представлен на рис. 17. Здесь питательная среда из запасного баллона поступает с заданной скоростью в сосуд-культиватор, где она тщательно перемешивается с вносимой культурой. Образующийся при этом определенный избыток культуральной жидкости вместе с находящимися в ней клетками вытекает из сосуда. Количество клеток внутри сосуда дерл ится на постоянном уровне. Это, естественно, происходит в том случае, если скорость ухода (выведения клеток) или, иначе, скорость разбавления культуры током свежей среды точно равна скорости размножения. Могут иметь место только изменения, связанные с развитием клеток в период между двумя делениями. Но после того как отделяется дочерняя клетка, материнская каждый раз вновь возвращается в прежнее состояние. [c.134]

Аэрирование культур осуществляется в основном тремя способами 1) продуванием определенного объема воздуха через культуральную жидкость с одновременным ее перемешиванием или без него 2) встряхиванием культуральной жидкости, находящейся в колбах, на специальных аппаратах (качалки, шюттель-аппа-раты) и 3) выращиванием микроорганизмов в виде пленки на поверхности питательной среды. Наиболее совершенным методом аэрации следует признать первый способ, при котором уровень аэрации культуры можно учитывать количественно. [c.83]

Подготовленное сырье освобождают в декантаторе от взвешенных частиц и непрерывно подают в нижнюю часть ферментера (метантенка) емкостью 4200 м . Одновременно в ферментер поступает посевной материал культуры микроорганизмов, предварительно выращенный в специальных аппаратах. Для выращивания продуцента требуются облигатно анаэробные условия, ибо даже следы кислорода подавляют рост бактерий. При создании анаэробных условий в среду подают диоксид углерода или газы, вьщеляющиеся в процессе ферментации. Ежедневно из метантенка отбирают 25 — 30 % объема среды. Продукт ферментации стабилизируют, подкисляя соляной или фосфорной кислотой до pH 6,3 —6,5 и добавляя 0,2—0,25 % сульфита натрия, что предотвращает разрушение витамина при тепловой обработке, особенно существенное в щелочной среде. В дальнейшем отобранная часть культуральной жидкости дегазируется, упаривается в вакууме кон- [c.56]

Представляет большой интерес разработка технологических схем глубинного выращивания плесневых грибов. В качестве примера приведем способ глубинного выращивания Asp. oryzae, разработанный также во ВНИИФСе. Известно, что в зависимости от вида (штамма) микроорганизма, способа его выращивания и состава питательной среды образуются те или иные комплексы фе[ чентов. Если на подходящей среде глубинным способом выращивают Asp. oryzae, то образуется преимущественно комплекс амилолитических ферментов. Применяют их главным образом Б хлебопекарной промышленности. Приводимая схема состоит из двух основных этапов выращивания глубинной культуры и затем осаждения из культуральной жидкости этиловым спиртом препарата фермента. [c.181]

Нитратредуктаза является адаптивным ферментом и образуется только в присутствии нитрата в культуральной среде. Чрезвычайно интересные данные получены в опытах с индуктивным образованием этого фермента как у микроорганизмов, так и у высших растений [14]. При выращивании некоторых растений в стерильных условиях нитратредуктаза вообще не образуется, если в качестве источника азота растения используют аммиак. В то же время при добавлении нитрата происходит быстрый синтез этого фермента [1]. Важно отметить, что в течение 1—2 дней после удаления нитрата из питательной среды активность нитратредуктазы уменьшается па 50—80%. Возможно, что Y Е. oli [29] в отсутствие нитрата уменьшается активность не нитратредуктазы, а нитратпер-меазы — переносчика, ответственного за проникновение нитрата в клетку. Таким образом, индуцируемой системой является нитратредуктаза или белок-переносчик, ответственный за [c.280]

Стадия выращивания посевного материала для производства витамина В12 занимает 16 дней. Многоступенчатость этого процесса связана с большим расходом посевной культуры на засев flO—20% г ъема среды). Такое количество культуры необходимо для обеспечения быстрого роста продуцента и биосинтеза витамина В12. При внесении недостаточного количества посевного материала рост пропионовокислых бактерий замедляется, что может привести к низкому уровню накопления витамина и заражению культуральной жидкости посторонними микроорганизмами во время подщелачивания. [c.82]

Ферментер, подготовленный для работы, стерилизуется в автоклаве. Электроды, выходящие из строя под действием высокой температуры, стерилизуют химическими реагентами, отмывают стерильной водой и вставляют в стерильный ферментер. Лучшим стерилизующим средством является 2%-ный р-пропионилактон (выдержка — 40 мин). Возможна стерилизация выдерживанием в подкисленном 70%-ном этиловом спирте (2% Н2304) и в 33%-ном пероксиде водорода по 40 мин. После стерилизации производится засев ферментера. При достижении экспоненциальной фазы роста культуры включается поток среды. Отток культуры идет через сливную трубку, которая должна обеспечить вывод среды из нижнего слоя. Слив сверху также возможен, но иногда осложняется вспениванием культуры и концентрированием клеток в пене. Стационарное состояние при данной скорости потока считается установившимся, если плотность популяции не изменяется в течение не менее 5—7 генераций (g). Культура сливается в охлаждаемые емкости, например сосуды Дьюара, чтобы приостановить всякие изменения в клетках, предназначенных для анализа. Если нет нужды получать большие количества клеток и культуральной жидкости для анализа, то пробы лучше отбирать непосредственно из ферментера. Обрастание стенок ферментера и мешалки микроорганизмами является большой помехой для длительных исследований. Поэтому до сих пор имеется мало работ по выращиванию в хемостате грибов и актиномицетов, особенно склонных к обрастаниям. Во избел<ание возникновения и отбора спонтанных мутантов ие рекомендуется вести хемостатную культуру более четырех недель. Засев всегда необходимо делать из специально выращенной культуры (не из ферментера). Для получения хемостатной кривой обычно начйна- [c.125]

По уравнению (14) иа рис. 7.4 построены кривые изменения с течением времени концентраций кислорода, растворенного в культуральной жидкости без микроорганизмов (для кривой / = 0) и с микроорганизмами (для кривой 2 х == 1 кг СБ/м ). Р асчеты приведены применительно к выращиванию andida sp. иа средах с жидкими парафинами. [c.145]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология