Культура грибов

На спиртовых заводах получило распространение приготовление посевного материала в виде поверхностной культуры гриба на пшеничных отрубях, которое складывается из следующих двух операций 1) выращивание спороносной культуры гриба в пробирках на сусло-агаре 2) засев спорами пшеничных отрубей в колбах и выращивание культуры гриба. [c.154]

Чистая культура на сусло-агаре служит исходным материалом для размножения грибов на пшеничных отрубях в колбах. Отруби смешивают с водопроводной водой в соотношении 1 0,7 и переносят в несколько колб по 10—20 г в каждую. Колбы закрывают ватными пробками и стерилизуют в автоклаве при избыточном давлении 0,15 МПа в течение 1 ч. После охлаждения до комнатной температуры в колбы вносят суспензию спор гриба, содержащую 150— 200 тыс. спор в 1 мл. Для этого в пробирку с культурой гриба на сусло-агаре прибавляют 10 мл стерильной водопроводной воды и при помощи стерильной пипетки над огнем соскабливают конидии гриба. Полученная суспензия используется для посева (2—2,5% от массы засеваемой среды или 0,4—0,5 мл на 10 г отрубей). [c.154]

На рис. 56 приведена технологическая схема получения культуры гриба в растильных камерах на кюветах. Этот способ связан с затратой большого количества ручного труда, однако пока применяется на заводах. [c.155]

Пшеничные отруби ковшовым элеватором I подают на автоматические весы 2, отсюда они поступают в загрузочный бункер 5, а из него в стерилизатор 5. В этом аппарате отруби увлажняются водой, подаваемой через форсунки из бака для стерильной воды 4. На 1 кг отрубей добавляют 0,2 л воды и 7—8 мл соляной кислоты с относительной плотностью 1,19 или 2,7—3,0 мл серной кислоты плотностью 1,84. Стерилизацию производят острым паром при температуре 103—105°С (давление 0,07 МПа) в течение 1—1,5 ч, периодически включая мешалку. По окончании стерилизации отруби дополнительно увлажняют до содержания влаги 58—60%, охлаждают до 40—42" С и затем производят засев культурой гриба, полученной в отделении чистых культур. [c.155]

Готовую культуру гриба упаковывают в бумажные крафт-мешки. Каждый мешок снабжают этикеткой или биркой с указанием завода-изготовителя, наименования продукта, даты выпуска, номе- [c.156]

В ферментаторе среду засевают культурой гриба из маточника 14. До засева из ферментатора отбирают пробы через пробоотборник для микробиологического контроля (высев на МПБ или МПА) и биохимических анализов. Засев осуществляют по линии передав-ливания, предварительно стерилизованной от маточника до ферментатора острым паром в течение 1 ч. Для этого закрывают вентиль на выходной воздушной линии у маточника и поднимают в нем давление до 0,06—0,08. МПа, оставляя в ферментаторе давление 0,02—0,03 МПа, после чего открывают вентиль на линии пере-давливания у маточника и ферментатора и в связи с разностью давления посевную культуру из маточника передавливают в ферментатор. Если маточник один на. два ферментатора, то из него передавливают только 50% культуры. После этого закрывают вентили на линии передавливания, в ферментаторе приводят во вращение мешалку и начинают процесс выращивания культуры. [c.164]

Установка состоит из батареи ферментаторов, соединенных переточными трубами. Выращенную в маточнике посевную культуру гриба передают в головной ферментатор, в который одновременно поступает готовая питательная среда. По заполнении первого ферментатора культура самотеком поступает во второй, затем в третий и т. д. С помощью лоткового делителя питательную среду мож- [c.166]

Культура гриба рассевается иа скошенную в пробирках среду и выращивается в течение 12 сут в термостате при 25° С. Готовая культура должна иметь характерный для вида цвет н складчатую поверхность. Она используется для приготовления жидкого посевного материала. [c.57]

Культура гриба в пробирке хранится в холодильнике прн температуре 6—10° С в теченне 1—1,5 мес. [c.77]

Культура гриба, выращенная в пробирках, служит для з а с е-ва среды в малых маточных колбах. Среду в больших колбах засевают посевным материалом из малых колб. Расход суспензии составляет ие менее 2 мл для малых и 5 мл для больших колб. Состав среды в малых и больших колбах одинаков при выращивании маточной культуры в колбах в качестве питательной среды используются пшеничные отруби. Влажность засеянной среды в колбах должна составлять 45—50%. Количество среды в малых колбах составляет не менее 10, в больших —не менее 25 г. [c.77]

Выращенная культура гриба измельчается на молотковых дробилках и подается в барабанную сушилку, где при температуре 50—80°С подсушивается до влажности 10—13%, после чего фасуется в бумажные мешки. [c.79]

Инфицированная культура гриба, количество которой не должно превышать 5% от общего количества ферментаций или 0,05 м на 1 м культуры, подвергается стерилизации при давлении 0,18— [c.235]

Приготовление растворов из культуры гриба (вытяжка). Для приготовления основного раствора 5 г исследуемой культуры гриба, предварительно растертой в ступке, взвешивают в стаканчике вместимостью 50 мл, переносят в коническую колбу вместимостью 250 мл, добавляют 90 мл дистиллированной воды и 10 мл ацетатного буфера с pH 4,7. Смесь выдерживают в течение 1 ч в термостате при температуре 30° С, периодически перемешивая, и затем фильтруют. Фильтрат используют в качестве основного раствора. Вытяжку можно хранить в течение 1 сут при температуре от 2 до 6° С. [c.286]

Рабочий раствор культуры гриба готовят из основного раствора, разбавляя его в зависимости от активности исследуемой культуры гриба. Количество основного раствора культуры гриба, которое необходимо взять для приготовления рабочего раствора, находят по табл. 87. [c.286]

Таблица 87 ДАННЫЕ для ПРИГОТОВЛЕНИЯ РАБОЧЕГО РАСТВОРА КУЛЬТУРЫ ГРИБА

Амилолитическая активность (АС) культуры гриба (предполагаемая), ед./г Количество культуры гриба в 1 мл рабочего раствора, мг Количество основного раствора, необходимое для вторичного разбавления, мл Общий объем разбавленного раствора, мл [c.286]

Во втором случае 1 г тонко измельченной воздушно-сухой культуры гриба заливают 100 мл дистиллированной воды п выдерживают при комнатной температуре при периодическом перемешивании в течение I ч. [c.294]

Вибрационные растильные установки основаны на динамическом методе выращивания культур грибов в непрерывно движущемся вибрационном слое. Сущность способа заключается в том, что стерильную питательную среду, смешанную с [c.1043]

Скорость движения среды по лоткам виброконвейеров составляет 2...3 мм/с, а диаметр и число витков всех виброконвейеров рассчитаны так, чтобы среда находилась в непрерывном движении в течение всего процесса роста. Из верхнего лотка третьего виброконвейера выращенная культура гриба по трубе поступает в нижний приемный лоток четвертого конвейера на сушку. Устройство этого виброконвейера идентично второму, но в рубашку лотков подают воду температурой 70 °С и дополнительно подводится воздух температурой 70...80 °С. Выращенная и высушенная культура гриба выгружается, а воздух после бактериальной очистки удаляется. [c.1044]

Изучена способность различных культур грибов осуществлять биодефадацию полициклических ароматических углеводородов. Полициклические ароматические углеводороды представляют собой фуппу ксенобиотиков, характеризующихся токсичностью, канцеро-генньгми и мутагенными свойствами. Показано, что метаболиты, образующиеся из углеводородов под действием микроорганизмов, проявляют меньшую токсичность по сравнению с исходными соединениями. Рассмотрены механизмы и ферментативные системы, а также пути де-фадации углеводородов и образующихся при этом метаболитов [93]. [c.90]

Максимальная активность ферментов достигается ири культивировании грибов на пшеничных отрубях. Дробина барды бедна питательными веществами, и активность ферментов в культурах грибов, выращенных на ней, в 4—5 раз ниже, чем на отрубях. Зрелая культура грибов вследствие обволакивания частпц отрубе мицелием имеет вид плотной войлокообра.зноп массы. [c.151]

Недостаток поверхностного способа — необходимость установки множества кювет, работу с которыми трудно механизировать. Себестоимость культуры гриба-продуцента высока, причем в основном из-за затраты большого количества ручного труда. Механизация процесса выращивания возможна путем создания непрерывно действующих установок или бескюветных аппаратов с вертикальным толстым слоем питательной среды и интенсивным продуванием воздуха через этот слой. [c.152]

При нормальном росте поверхность сусло-агара равномерно покрывается спороносящим мицелием. Культура гриба с плохим спороношением, с медленно растущим мицелием, с пушком вторичного роста в производство не допускается. Пробирки с выросшей культурой вынимают из термостата и хранят в холодильнике. Перед посевом в колбы проверяют чистоту культуры высевом на чашки Петри и микроскопированием. [c.154]

Посевной материал, приготовленный онисапным способом, представляет собой спороносную культуру гриба, содержащую не менее 0,7 млрд. спор в 1 г, из которых 86—90% способны к прорастанию. Посевной материал не должен содержать насторонней микрофлоры. [c.155]

При необходимости транспортировки на дальние расстояния культуру гриба дробят на шнеке-дробилке /О и дезинтеграторе 11 по размеров частиц не более 10 мм и высушивают в сушилке 18 теплым воздухом до содержания влаги не более 10—12%. Воздух нагревают в калорифере 20 и подают в сушилку вентилятором 19. Отработавший воздух удаляют вентилятором 17 и выбрасывают в атмосферу через циклон 14. Высушенную культуры шнеком 16 подают на весы 15 для фасовки. Сюда же подаются уловленные в циклоне частички культуры, унесенны с воздухом. Освободившиеся кюветы проходят мойку 12, обеспложиваются в стерилизаторе 13 и возвращаются под загрузку. [c.156]

Взвешенные отруби загружают в бункер, нз которого дозатором передают в шнек-стерилизатор. Стерилизованная среда поступает в выдерживатель, а из него в аппарат для расхолаживания, увлажнения и засева культурой гриба в виде суспензии. Конечная влажность засеянных отрубей около 607о- Расход посевной культуры — 0,5% к массе воздушно-сухих отрубей. [c.157]

Разгрузка кювет и дробление культуры гриба должны проводиться в герметически закрытых камерах, снабженных аспираци-оннымн устройствами. [c.159]

Одним из перспективных является метод меченых культур грибов радиоактивным Р з, Он позволяет оценить интенсивность внедрения гриба в полимерные материалы и определить их грибо-стойкость. Одновременно оценивается и активность гриба. Этим методом выявлено, что гриб А. niger растет только на поверхности образцов, поэтому использовать его в качестве тест-культуры при исследованиях грибостойкости материалов нецелесообразно. [c.75]

Методы защиты полимерных материалов от биоповреждений аналогичны используемым при защите ЛКП. Например, одним из важнейших условий получения стойких к воздействию микроорганизмов материалов является введение в их состав таких компонентов, которые не могут быть использованы микроорганизмами в качестве субстратов в процессе развития. Анализ химического состава пленок ПВХ показал, что после воздействия на них некоторых культур грибов и бактерий содержание пластификатора (ПДЭС-1) резко снижалось. Очевидно, это связано с использованием последнего в процессе жизнедеятельности микроорганизмов. Подобное явление наблюдалось при поражении грибами полиэтиленов. Биостойкость резко снижалась при введении в полиэтилены углеродсодержащих наполнителей или при использовании полиэтиленов с низкой молекулярной массой. Для повышения стойкости полимерных материалов достаточно было в первом случае заменить пластификатор, во втором — исключить наполнитель и применять полиэтилены с высокой молекулярной массой. [c.82]

В настоящее время из поверхностных культур для осахаривания крахмала разваренного сырья применяются препараты Глюкаваморин Пх (поверхностная сухая культура гриба Asp. awamori - как источник глюкоамилазы и а-амилазы) и Амилоризин Пх (поверхностная сухая культура гриба Asp. oryzae как источник а-амилазы и протеазы). Они представляют собой мелкозернистый продукт (величина частиц не менее 5 мм) светло-серого или бежевого цвета. Влажность препаратов— не более 13%. По биологическим показателям препараты должны соответствовать требованиям, указанным в табл. 11. [c.18]

Режим выращивания следующий температура среды 26—28° С продолжительность 72—84 ч, частота вращения мешалки 200-220 МИН , расход стерильного воздуха 20—30 mV иа 1 м среды При выращивании культуры гриба Asp. batatae-61 питательна среда Имеет следующий состав (в %) [c.76]

Процесс производства препаратов Глюкаваморин Пх и Амилоризин Пх состоит из следующих стадий выраш,ивапие маточной культуры, выращивание посевной культуры в растильиых камерах, стерилизация питательной среды, раскладка питательной среды, выращивание культуры гриба в растильных камерах, дробление, сушка и упаковка готовых препаратов. [c.77]

Выращивание маточной культуры. Маточная культура выращивается по схеме культура гриба в пробирке маточная культура в малых колбах вместимостью 0,25 л- -маточпая культура в больших колбах Вместимостью 1 л. [c.77]

При выращивании культуры грнба Asp. awamori-673 влажность отрубей должна составлять 50—60%. Увлажненные отруби раскладывают в бюксы и стерилизуют в автоклавах в течение 1,5 ч при давлении 0,15 МПа. После охлаждения до 40—42° С среду засевают суспензией конидий. Для засева используется культура гриба, выращенная в больших маточных колбах. [c.78]

При использовании сухих препаратов поверхностных кулы плесневых грибов взвешенную культуру или смесь культур предва] тельно тщательно измельчают на дробилках, применяемых для др ления солода. Культуру гриба предварительно смачивают водо соотношении 1 1. Измельченный продукт смешивают в сборнию теплой водой из расчета 3—4 л на 1 кг препарата. Вода может по ваться непосредственно через дробилку при измельчении препара Б готовую суспензию задают 20—25 мл 40%-ного раствора ф малина на каждые 10 л, перемешивают в течение 15—20 мин, выд живают 25—30 мин и затем перекачивают насосом в расходный нок, откуда она дозируется в осахариватель. [c.98]

Приготовление основных растворов фермент-го препарата, Основные растворы готовят из ферментных гпаратов, культуры гриба и сиропа. [c.293]

Если на испытание взято 5 мл ферментного раствора в разведении 1 100, то мальтазную активность (в ед./г или ед./мл) культуры гриба и сиропа определяют по формуле УИС= А-5Р/(т 100). [c.295]

В качестве примера можно привести разработанный в Институте микробиологии АН БССР метод получения грибного белка на основе отходов картофелекрахмального производства. При работе по данному методу используется культура гриба Peni illium digitatum 24 П. [c.118]

В современной биологии много внимания уделяется факторам, оказывающим цитоморфологический эффект. Изменению морфологии клеток под влиянием антибиотиков посвящено большое число работ. В связи с возникновением резистентных форм и возможностью эпидемиологического неблагополучия привлекают внимание морфологические особенности культур грибов со сниженной чувствительностью к антибиотикам. [c.192]

ОРАЗА - препарат, содержащий комплекс амилолитических и про- еолитических ферментов, получаемых пз культуры гриба Aspergillus oiyzae. Большим преимуществом кислотоустойчивых микробных ферментов перед панкреатином является их хорошая биодоступность мик-[юбные гидролазы освобождаются из лекарственной формы в желудке. ПО обеспечивает более ранний и равномерный гидролиз пищевых суб- [c.225]

В 1968 г. из культуры гриба Рзеис1ого1шт оуаИз был вьщелен сесквитерпен (—)-овалицин (36, схема 1.11). Хотя этот метаболит проявлял ряд свойств антибиотика, он не казался перспективным в качестве лекарственного средства и, как это бывает достаточно часто, не имелось абсолютно никаких данных о его возможной роли в жизнедеятельности организма-продуцента. Тем не менее, необычность и сложность строения этого соединения не могли не вызвать у синтетиков амбициозного желания синтезировать эту структуру. Синтез рацемического 36 был выполнен Кори в 1985 г. [22а], и одной из его целей была просто проверка предлагаемых общих принципов методологии органического синтеза. Схема синтеза включала последовательность большого числа стадий и, конечно, не предполагала возможности какого-либо практического использования. [c.30]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология