Питательный раствор для водной культуры

Как было отмечено, в песчаных, а тем более в водных культурах, можно создать концентрацию питательного субстрата более равномерную, чем при почвенных культурах. Однако и в этих условиях растения в продолжение вегетации, потребляя те или иные питательные вещества, изменяют как концентрацию питательного субстрата, так и его реакцию. Если по условиям опыта надо иметь в течение длительного периода строго постоянную концентрацию питательных веществ или постоянное соотношение между элементами, и особенно когда изучают условия питания при постоянной реакции среды, используют модификацию вегетационного метода — метод текучих растворов. Постановка опыта методом текучих растворов — очень трудоемкая работа и чаще всего используется лишь при сравнительно коротких схемах. Примером использования методики текучих растворов могут служить работы, выполненные в лаборатории Д. Н. Прянишникова, о влиянии pH среды на поступление в растение NHl и NO3 ионов. [c.507]

Физиологическими опытами, поставленными в лаборатории Прянишникова, доказана возможность роста различных культур даже при содержании только 0,01 —0,03 мг РаОд в 1 л питательного раствора (водные культуры). Но обязательное условие питания при столь слабых концентрациях фосфатов — увеличение объема сосуда до таких размеров, чтобы общее количество фосфора было достаточным для удовлетворения потребностей растения. [c.26]

Таким образом, при испытании токсичности промышленных сточных вод и различных ядовитых веществ для одноклеточных зеленых водорослей необходимо в первую очередь подобрать, такую питательную среду, рост и развитие водорослей на которой отвечали бы задачам исследования. Применение культуральных сред, используемых для получения интенсивных культур водорослей, в токсикологических экспериментах нежелательно. Используемые в лаборатории водной токсикологии МГУ" питательные растворы Успенского № 1, модифицированная среда Успенского, предложенная нами при работе с непроточными [c.222]

Гербициды, быстро разлагающиеся в почве (далапон и амитрол), испытывались на растениях в водных культурах раствор гербицида заменялся через 5—7 дней питательная смесь к раствору не добавлялась, [c.304]

Еще в конце прошлого века агрохимики подметили, что недостаток питательных веществ в почве приводит к образованию относительно большей массы корней у растений, чем при хорошей обеспеченности их всеми факторами роста. Например, на солевом питательном растворе в водных культурах корневая система развивается гораздо слабее, чем в поле. Впоследствии, однако, отмечали, что нередко минеральные удобрения в небольших дозах не повышают урожая не потому, что растения не могут их использовать, а вследствие исправления соотношения между надземной частью и корнями, так как развитие последних из-за недостатка питательных веществ было слабым и подавлялось сильнее, чем надземной массы. [c.54]

Вопрос о влиянии концентрации питательного раствора на рост и развитие растений в разные фазы жизни изучался при выращивании растений в водных культурах. В почве, в связи с присущей ей поглотительной способностью, в результате адсорбционных процессов концентрация внесенных удобрений не является строго определенной. Соли, растворенные в воде, имеют более определенную концентрацию. В тесной связи со сказанным стоит вопрос об изучении влияния на растения различного соотношения отдельных питательных элементов. Только постановкой опытов в песчаной культуре, исключая воздействие почвы, можно установить влияние корневых выделений различных растений на усвоение труднодоступных питательных веществ. Это было блестяще показано работами Д. Н. Прянишникова по изучению доступности фосфорита для разных растений. [c.550]

Чехол делают немного длиннее высоты сосуда с пробкой, сверху продергивают тесьму и завязывают так, чтобы одновременно закрепить пробку на сосуде. При постановке опыта сосуды наполняют дистиллированной водой на /д или объема и вносят отмеренные цилиндрами или пипетками растворы питательных солей, затем доводят объем водой па 1 см ниже внутренней поверхности пробки. Растения для высаживания их в водную культуру должны иметь росток высотой 5—7 см и корневую систему длиной около [c.555]

Объектом исследования служил подсолнечник Саратовский 169 . В течение летнего периода 1966 г. было проведено два опыта в водных культурах на питательной смеси Кнопа (разбавленной 1 3) в вегетационном домике МГУ. В первом опыте, проводившемся в период июнь — июль, испытывалась обработка растений тремя дозировками хлорхолинхлорида (С-С-С) 10, 25 и 50 мг на сосуд (12 растений), по 3 сосуда каждого варианта в этом опыте использовались стеклянные сосуды типа высоких кристаллизаторов емкостью 2 л, диаметром — 30 см. В студенческих опытах предыдущего года по влиянию С-С-С на рост растений подсолнечника был испытан ряд дозировок, что послужило основой для подбора концентраций в настоящих исследованиях. Во втором опыте, на основании данных по росту растений первого опыта, дозировка 50 мг вследствие ее большой токсичности не испытывалась, брались только дозировки 10 и 25 мг на сосуд. Сосуды во втором опыте были взяты трехлитровые по 15 сосудов на каждый вариант по 6 растений в сосуде, чтобы иметь возможность взять достаточно материала для проб на содержание нуклеиновых кислот в отдельных органах растений. Обработка в обоих опытах проводилась однократно, растения опрыскивались раствором препарата из пульверизатора, каждый раз обработка проводилась вечером — в 18 ч. Контролем служили растения, опрыснутые водой. Во время обработки растения были в фазе трех пар настоящих листьев. [c.59]

В дальнейшем было обращено внимание на содержание в почве алюминия, которое оказалось далеко не одинаковым при тех же значениях pH (в кислом интервале) различных почв. В водных культурах при pH около 4 даже в концентрации 2 мг на 1 л питательного раствора алюминий угнетает развитие большинства культурных растений (сахарной свеклы, льна, яровой пшеницы, ячменя, гороха и др.). Люпин, озимая рожь, картофель и некоторые другие культуры отличаются устойчивостью к алюминию в питательном растворе. Следовательно, отношение различных растений к кислой реакции и содер канию в растворе алюминия довольно хорошо коррелирует. [c.61]

В условиях водных культур труднорастворимые соединения оседают на дно сосуда, и питание ими идет менее интенсивно поэтому в случае, когда изучаются труднорастворимые соединения или возможно их образование при изменении состава питательной среды во время вегетации растений, предпочтительнее проводить опыт в песчаной культуре. По этой же причине в водных культурах растения часто страдают от хлороза вследствие гидролиза солей железа и выпадения гидрата окиси железа или же вследствие образования малорастворимых соединений железа. Учитывая существующие различия между песчаной и водной культурой, экспериментатор может выбрать ту или иную модификацию в зависимости от темы и схемы опыта. Постановка опыта в водной культуре предпочтительна в тех случаях, когда по характеру исследования нужна более гарантированная чистая среда, когда требуется полная смена питательного раствора во время вегетации когда в процессе вегетации необходимо временное помещение растений в иной питательный раствор, также удобно применять водные культуры. [c.503]

Водные культуры (рис. 81) более трудоемкие, чем песчаные или почвенные культуры. Сосуды для постановки водных культур представляют собой широкогорлые банки емкостью от 4 до 8 л. В некоторых случаях при постановке опытов с такими культурами, как кукуруза, подсолнечник, клещевина, табак, сахарная свекла, используют обычные стеклянные вегетационные сосуды большого объема. Сверху сосуды закрывают деревянными пробками, у которых нижний диаметр равен точно диаметру сосуда или горлу банки, а верхний диаметр на 0,5 см шире и примерно равен внешнему диаметру сосуда. В пробке делают ряд отверстий диаметром 1,5—2 см, а иногда и шире для помещения в них стебля растения. Одно отверстие в центре пробки слу жит для закрепления каркаса и другое отверстие используют для стеклянной трубки, через которую продувают воздух. На сосуды надевают двойные чехлы, сшитые из белой хлопчатобумажной ткани с черной подкладкой. Это делают с целью уменьшения нагревания от солнца, а также чтобы в питательный раствор не проникал свет и в нем не развивались водоросли. [c.506]

Чехол делают немного длиннее высоты сосуда с пробкой, сверху продергивают тесьму и завязывают так, чтобы одновременно закрепить пробку на сосуде. При постановке опыта сосуды наполняют дистиллированной водой на /5 или /4 объема и вносят отмеренные цилиндрами или пипетками растворы питательных солей, затем доводят объем водой на 1 см ниже внутренней поверхности пробки. Растения для высаживания их в водную культуру должны иметь росток высотой 5—7 см и корневую систему длиной около 6—7 см. Для этого семена растений предварительно проращивают в песке, как это описано для почвенных культур, а затем высаживают на парафинированную марлевую сетку, помещенную на кристаллизатор емкостью 1 — [c.507]

Установка для вегетационного опыта в текучих растворах показана на рисунке 82. Из особого резервуара нри помощи сифона в сосуды, наполненные песком, непрерывно подается питательный раствор нужного состава. В сосудах, на дне имеется отверстие, сквозь которое вытекает жидкость, просочившаяся через весь слой песка в сосуде. Имея запас свежего питательного раствора в бутыли и регулируя скорость притока раствора в сосуд, а следовательно, и оттока, можно в песке осуществлять постоянное возобновление питательной смеси с постоянной концентрацией и реакцией. Кроме песчаных текучих культур, применяются также водные текучие культуры, но методика их проведения сложнее. [c.508]

Во многих случаях требуется умение приготовить буферный раствор на заданное значение pH (например, питательный раствор для выращивания водных сельскохозяйственных культур и т. д.). [c.207]

На четвертый день наблюдалась, собственно, та же самая картина, что и на третий день. Таким образом четырехдневное пребывание растений ячменя в питательных растворах - , содержащих различное количество радиоактивного стронция 8г , показало, что его депрессивное действие на рост и развитие растений (в условиях водных культур) наступает тогда, когда концентрация этого изотопа достигает порядка 0,8 микрокюри. Концентрации, превышающие эту величину, вызывают вначале повреждение растений, а затем — его гибель. [c.116]

Изучая интенсивность восстановления нитратов при различных условиях питания растений, мы установили, что восстановление нитратов происходит более энергично в момент.их поступления в растение и неизмеримо слабее тогда, когда нитраты уже более йли менее продолжительное время находились в тканях растений. Это удалось показать таким образом растения до экспозиции их на N 5 выращивались в водных культурах на нитратном (немеченом) источнике азота, и в этих условиях в тканях растений накапливались в значительных количествах нитраты. Затем растения переносились на питательный раствор, азот в котором был представлен меченным по N азотнокислым кальцием. Одновременно на такой же раствор переносились и растения, которым до этого давался не нитратный, а аммиачный азот. [c.240]

По данным исследований водных культур, поглощение магния ячменем начиналось с первых моментов его развития и прекращалось в фазе полной зрелости. Максимум поглощения приходился на период от выхода в трубку до начала созревания. Использование магния ячменем было невысоким и составляло от 6 до 15%, в то время как использование кальция было в 2 раза больше. В другом опыте [86] полное исключение магния из питательного раствора в различные фазы развития оказывало сильное отрицательное влияние на урожай ячменя, особенно в начале кущения и стеблевания. Выключение магния и в поздние сроки (в начале восковой спелости) заметно снижало урожай. [c.28]

Какие же свойства питательных растворов заслуживают особого внимания агронома Можно прежде всего назвать следующие состав и формы соединений, концентрация и уравновешенность, реакция и ее стабильность, осмотическое давление. В настоящее время известны многие десятки питательных растворов, предложенных и испытанных для выращивания основных культур. Мы рассмотрим только две питательные смеси Гельригеля для водных и песчаных культур и Прянишникова для песчаных культур (обе должны дополняться микроэлементами). [c.43]

В 1859 г. растения в водных культурах впервые были доведены до созревания, хотя еще при небольшом урожае, о чем почти одновременно сообщали Кноп и Сакс но Сакс пришел к методу фракционированных растворов, и лишь Кноп установил полную питательную смесь для нормальных культур в той форме, в какой до сих пор ею пользуются. Задача для того времени была трудной, так как сразу имели дело со многими неизвестными не знали не только того, какие элементы нужны, но и в какой форме их лучше давать и какая реакция раствора лучше для растения, какую концентрацию солей оно выносит нужно было обеспечить аэрацию водного раствора, защитить его от прямого действия солнечных лучей, словом, выработать технику водных культур так, чтобы каждый раз пользоваться ею без риска затемнения поставленного вопроса побочными обстоятельствами. [c.37]

Интересно, что в работах авторов того времени отмечалось в виде отдельного тезиса, что растения водных культур достигли полного развития, не имея другого источника углерода, кроме углекислоты атмосферы. Следовательно, еще в 60-х годах считалось нужным окончательно констатировать эту независимость питания растений от углерода почвы. Еще в 1861 г. Сакс вводил в питательный раствор экстракт гумуса и убедился, что это не содействовало росту. [c.39]

Водная культура растений (или собственно гидропоника). Плоский водонепроницаемый бак различной величины в зависимости от особенностей выращиваемого растения покрывают специальной сеткой или крышкой с отверстиями. На сетку помещают слой подстилки (стружка, мох, торф, пемзовая крошка, рисовая шелуха, солома и пр.), в которую высевают семена и.т1и сажают рассаду. В случае применения крышки с отверстиями рассаду или молодые растения укрепляют в отверстиях с помощью ватной пробки. В бак подают раствор с таким расчетом, чтобы между сеткой (или крышкой), из которой свисают корни растений, и поверхностью питательного раствора осталось свободное пространство — влажная воздушная зона высотой от 1,5 до 10 см, в зависимости от возраста растений и величины корневой системы. Корни укрепленных на крышке бака растений находятся, таким образом, в трех слоях среды верхнем — подстилке среднем — воздушном, обеспечивающем их кислородное питание нижнем — водном растворе, откуда растения поглощают воду и питательные соединения. Систематически в раствор вдувают воздух и периодически меняют питательный раствор. [c.273]

Чтобы выяснить, влияют ли ПАВ на поступление триазинов в корни растений, были заложены вегетационные опыты с водными культурами. Растения выращивали в течение 5—6 дней на полной питательной смеси Кнопа. Затем в питательный раствор вносили водные растворы гербицида и смачивателя в соответствующей концентрации. Когда на обработанных вариантах в достаточной степени проявлялось токсическое действие гербицидов, растения убирали и определяли сухой вес надземной массы и корней. Результаты опытов приведены в таблицах 6, 7 и 8. [c.206]

В методе водной культуры используют емкости с питательным раствором. Стебли растений поддерживает горизонтально натянутая проволочная сетка. [c.99]

Различают следующие методы искусственных культур водных, песчаных и почвенных. Метод водных культур впервые был разработан немецкими физиологами Н. Кнопом и Ю. Саксом в 70-х годах XIX в, Стеклянный сосуд вместимостью от 1 до 10 л (в, зависимости от растительного объекта) наполняют водным раствором питательных веществ, а проростки растений размещают на деревянной или пластмассовой крышке с отверстиями, которой накрывают сосуд. [c.282]

Проникновение триазинов в растение и изменения их. Для изучения этого вопроса был поставлен вегетационный опыт с водными культурами. В этом опыте кукурузу и овес выдерживали на растворах симазина, атразина, пропазина и хлоразина в течение 48 часов. На растворы гербицидов, в которые вносили и соли питательной смеси Гельригеля, растения помещали в фазе двух листьев. Растворы содержали следующие количества гербицидов из расчета на 100 мл — симазин 220 х.г, атра-зин — 940, пропазин — 260 и хлоразин 440 цг. Этого было вполне достаточно для поступления гербицидов в ткани растений. [c.17]

В опытах с горохом ячменем в почвенных и водных культурах обнаружили, что между выделением СОг и поглощением корнями растений катионов Са, М и К из почвы рвязь очевидна, а при поглощении из питательной смеси в водной культуре такая связь отсутствовала (табл. 6). Это легко понять, ведь из почвы растения усваивали преимущественно обменнопоглощенные катионы, а из раствора — воднорастворимые. Для вытеснения катионов из почвенных коллоидов в раствор необходимо наличие выделяемых корнями ионов водорода [c.51]

Опыты с кукурузой в водной культуре при возрастающей концентрации алюминия [на каждый литр питательного раствора от 10 до 100 мг А12(804)з-I8H2O] показали, что рост и урожайность кукурузы значительно снизились, за исключением концентраций 10 и 10 , нри которых наблюдалось небольшое повышение урожайности однако росту корней причиняла вред любая концентрация. [c.583]

Опыты проводились в вегетационном домике МГУ летом 1967 г. Объектом опытов был подсолнечник Саратовский 169 , выращиваемый в водных культурах в трехлитровых стеклянных сосудах на смеси Прянишникова при различных дозах азота половина сосудов в течение всего опыта получала 7г нормы азота (7г N), а другая половина — 5 норм (5 N). pH питательного раствора все время поддерживался около 6,2. Растения были высажены на питательную смесь в начале июня (13.VI), а убирались во время цветения (варианты с 5 N — 8.VIII, а варианты с 7г N — 21.VHI, соответственно цветению в разное время). [c.18]

ГУБЭ-800 у-лучами Со дозой 1000 р для водных и 1500 р — для почвенных культур, а другую часть оставляли необлученной. После этого облученные и необлученные зерновки высевались в почву и высаживались па раствор с питательной смесью. Обработка проростков растворами кининов начиналась с момента высадки их на раствор и проводилась затем через день. В течение опыта регулярно проводили промеры растений в водных культурах, после 6 обработок в возрасте 17 дней растения были убраны. В почвенных культурах было проведено 10 обработок растений. При уборке учитывали вес сухой и сырой массы проростков. В проростках определяли растворимые углеводы микрометодом Хагедорна — Иенсена. Азот в зерне пшеницы определяли методом Кьельдаля, осаждение белка проводили по Барнштейну. [c.26]

ОПЫТ ВЕГЕТАЦИОННЫЙ. Изучение питания растений и испытание действия удобрений, гербицидов и других химикатов на рост, развитие и урожай растений при выращивании их в искусственных условиях, в сосудах. Проводятся в вегетационных домиках (павильонах), помещениях с прозрачными (стеклянными, пластмассовыми) стенами и крышей, яа площадках, открытых или покрытых сеткой во избежание повреждений растений, а также в теплицах и фитотронах, т. е. в теплицах с кондиционированными температурой, влажностью воздуха и освещением. В зависимости от задач исследований опыты ставятся с наполнением сосудов водой, кварцевым песком или почвой (водные, песчаные и почвенные культуры). Кроме обычных опытов имеется много вариантов. Важнейшие 1) опыты в стерильных условиях ( стерильные культуры ) — корни растений находятся в стерильной среде 2) опыты с изолированным питанием ( изолированные культуры ) — одна часть корней растевия находится в одном сосуде, а другая в другом 3) опыты с текучими растворами ( текучие культуры ) — питательные вещества в виде растворов все время поступают в сосуд, в котором растут растения, и вытекают из него. О. в. проводятся как для изучения теоретических вопросов питания расте ний и применения удобрений, так и для решения практических вопросов установления усвояемости или токсичности различных [c.211]

Для изучения роли калия в использовании растениями аммиачного азота были проведены опыты с использованием меченного изотополмг N 5 сульфата аммония. Растения овса предварительно выращивали в условиях водных культур на растворах с очень низким содержанием калия — 0,05 г К2О на сосуд емкостью 5 л и на растворах с нормальным содержанием калия— 0,50 г К2О на сосуд. И в том и в другом случае в качестве источника азота вносили кальциевую селитру из расчета 0,3 г на сосуд, а также все другие необходимые для растений макро- и микроэлементы в оптимальных дозах. Через 3 недели после закладки опыта растения пересаживались на новые питательные растворы, азот в которых был представлен в форме меченого сульфата аммония с содержанием 12,5% избытка атомов N 5. Во время опыта реакция раствора поддер- [c.151]

Если растениям, испытывающим недостаток в азоте, дать азотную подкормку, то уже через 1—2 дня можно наблюдать заметное усиление у них интенсивности зеленой окраски. Наоборот, удаление азота из питательной среды, как это легко может быть продемонстриро вано в водных культурах со сменными растворами, влечет за собой очень быстрое ослабление интенсивности зеленой окраски растений. [c.157]

Опыты были поставлены в водной культуре на питательной смеси Гельригеля. Деятельность корневой системы оценивалась по поглощению воды и минеральных соединений (фосфора и азота нитратов) из наружного питательного раствора через сутки после впрыскивания. Содержание фосфора в среде определялось методом Труога-Мейера, азота нитратов ди-сульфофеноловым методом. Опыты проводились в условиях нормальной естественной освещенности (весенне-летний и начало осеннего периоды). [c.262]

Первый опыт в этом направлении проводился с кукурузой, которая выращивалась в водной культуре при искусственном освещении лампами дневного света иа питательной смеси Гельригеля. На 15-й день после посева группа проростков (50 шт.) помещалась на четыре дня в сосуды, содержащие радиофосфор в форме фосфорнокислого натрия в количестве 100 (хС иа сосуд. Через четыре дня корни растений были отмыты, и они до месячного возраста выращивались на обычной питательной смеси.. Р , поступивший в растения в течение четырех дней, в последующие 11 дне11 подвергался в составе клеток растения использованию и перегруппировке и несомненно вошел в состав всех фосфорных фракций. Вторая группа растений убиралась одновременно с первой, однако срок внесения Р был иным радиофосфор вносился в питательный раствор этих растений лишь за 30 часов до их уборки и входил, таким образом, в состав только тех веществ и соединений, которые синтезировались в предшествовавший уборке период. [c.62]

Опыты проводились в водных и в почвенных культурах. В водных культурах растения выращивались на несколько измененной 3. И. Жур-бицким питательной смеси Кнопа. Изменения заключались в том, что соотношение между азотом, фосфором и калием устанавливалось в соответствии с потребностями отдельных культур, а нужная реакция раствора достигалась сочетанием одно- и двухзамещенных фосфатов. [c.157]

Большая часть основных работ по вопросу об усвоении минеральных веществ в последующие годы проводилась по методу водных культур, при котором корни растений погружаются в раствор питательных веществ в дистиллированной воде. Этот метод получил предпочтение потому, что свободную от примесей воду получить гораздо легче, нежели освободить от них песок путем промывания его кислотами кроме того, и самая прозрачность среды, возможность вынимать из нее растение, не причиняя вреда ему, представляют известные удобства. Ботаник Сакс, напечатавший в 1857 г. работу по морфологии корневой системы, сообщил, что его растения в обыкновенной воде могли расти и даже доходить до цветения. Это легко осуществляется у растений с крупными семенами, каковы, например, бобы. Эти опыты Сакса не касались вопроса о минеральном питании и в сущности не отличались от культур Дюгамсля (1758), но работа Сакса появилась в такое время, когда Либих, изложив свои 50 тезисов (1855), дал новый [c.36]

Задачи, которые решаются при помощи вегетационных опытов в водных культурах, в общем те же, что и в песчаных. Проводятся эти опыты в специальных широкогор-лых банках или обычных стеклянных вегетационных сосудах. В горлышко банки вставляются деревянные крышки с отверстиями, число которых соответствует числу растений. Для защиты корневых систем растений от повреждающего действия света и перегрева, на сосуды натягиваются двойные чехлы — белые снаружи и черные внутри. В банки наливается вода (водопроводная или дистиллированная), в которую вносится питательная смесь. На протяжении опыта производится регулярная смена растворов ежедневно питательный раствор продувается для обеспечения корней кислородом. [c.397]

Субстрат, покрытый тонким слоем питательного раствора. В этом методе, как и в водной культуре, используют емкости, защищенные слоем водонепроницаемой битумной краски. Иногда применяют емкости или поддоны, выстланные полиэтиленовой пленкой. В качестве инертного субстрата для наполнения емкости или поддона выбирают отмытые гравий или мелкий щебень, грубый крупновспученный вермикулит, перлит, гранулированный полистирол, лигнит или выдержанную золу. Субстрат постоянно покрыт питательным раствором, избыток которого циркулирует в системе. Регулярно контролируют концентрацию питательных веществ и величину pH раствора. При необходимости корректируют их или полностью заменяют раствор. Замена раствора стоит значительно дороже, чем его корректировка, но является более действенной мерой. При этом сразу достигается нужная величина концентрации питательных веществ. Подача раствора и дренаж обеспечивают доступ воздуха к корням, а субстрат создает необходимую поддержку растениям. [c.99]

Для нормального развития растепий необходимы также микро- и ультрамнкроэлементы. Микроэлементы содержатся в солях, посуде, применяемой для опытов. При использовании для песчаных и водных культур абсолютно чистых солей к основной смеси прибавляют некоторые микроэлементы, иапример бор и марганец, или более сложную смесь. Питательные смеси для водных культур имеют определенную буферность, т. е. способность растворов противодействовать изменению реакции среды. [c.283]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология