Культуральные среды

Особенности производства и потребления готовой продукции. Дрожжевое производство основано на способности дрожжевых клеток (микроорганизмов) расти и размножаться. В основе технологии хлебопекарных дрожжей на дрожжевых заводах лежат биохимические процессы, связанные с превращением питательных веществ культуральной среды при активной аэрации в клеточное вещество дрожжей. При аэрации дрожжи окисляют сахар питательной среды до воды и диоксида углерода (аэробное дыхание). Вьщелившаяся при этом тепловая энергия используется дрожжами для синтеза клеточного вещества и обменных процессов. В аэробных условиях в субстрате накапливаются значительно большие биомассы, чем при анаэробном дыхании. [c.85]

Часто культуру клеток выращивают в условиях, когда время генерации поддерживается постоянным, однако плотность клеток в среде не возрастает. Для этих целей создано простое устройство, названное хемостатом. Среда в сосуде с культурой, содержащая определенное число бактерий, непрерывно перемешивается. В этот сосуд из специального резервуара все время поступает свежая культуральная среда, а часть содержимого сосуда вместе с суспендированными бактериями непрерывно выводится в другой сосуд. Численность популяции бактерий в сосуде достигает постоянного уровня, который может поддерживаться относительно долго. [c.40]

Наибольшее практическое значение, ввиду низкой растворимости кислорода в жидкости (для культуральных сред при 32— 35°С 6-10 з г/л), имеет межфазный переход газ—жидкость , а для сегрегированной системы жидкость—клеточный агломерат . При этом общий коэффициент массопередачи определяется массо-отдачей кислорода в жидкой фазе, т. е. [c.88]

Характерной особенностью процесса ассимиляции углеводородов в качестве источника углерода является часто встречающееся накопление промежуточных продуктов в культуральной среде микроорганизмов, растущих за счет таких субстратов. Эта особенность позволяет использовать процессы микробиологического окисления угле-видородоБ для получения некоторь х веществ, Концетращио накапливающегося соединения можно значительно повыснгь тем или иным способом, варьируя условия культивирования, применяя ингибиторы и так далее. Обоснованность такого подхода и достигнутые успехи позволяют рассчитывать на возможность промышленного использования этого свойства микробных культур. [c.85]

Важный фактор, обеспечивающий в культуральной среде высокие концентрации аминокислоты, синтезированной внутри клетки, — проницаемость клеточных мембран. Проницаемость клеточной мембраны увеличивают либо с помощью мутаций, либо путем изменения состава питательной среды. В последнем случае в культуральной среде создают дефицит биотина (1 — 5 мкл/л), добавляют пенициллин (2—4 мкг/л), детергенты (твин-40 и твин-60) или производные высших жирных кислот (пальмитаты, стеараты). Биотин контролирует содержание в клеточной мембране фосфолипидов, а пенициллин нарушает биосинтез клеточных стенок бактерий, что повышает вьщеление аминокислот в среду. [c.45]

Для накопления ферментов в культуральной среде необходимо обеспечить оптимальные условия для их синтеза состав среды, температуру, значение pH, снабжение клеток кислородом воздуха. [c.88]

Температура культивирования зависит от видовых особенностей микроорганизмов и колеблется в широких пределах. Для равномерного распределения клеток по объему аппарата, улучшения их контакта с питательными веществами, обеспечения отвода от клеток продуктов их жизнедеятельности осуществляют перемешивание культуральной среды. [c.89]

Резервуар 1 установлен на балках 14-я стойках 15 я имеет охлаждающую рубашку 20 из десяти секций (поясов). Аппарат снабжен люками 18 и 21 для обслуживания и ремонта, смотровым окном 2, осветлителем 3, гидрозатвором 11, воздухоподводящей трубой 77, коробами 13 аэрационной системы, соплами 16 для промывания коробов, коллектором 79 для подачи воды в секции охлаждающей рубашки и коллектором 12 для вывода воды из охлаждающей рубашки. На крышке аппарата установлена вытяжная труба 7, которая перекрывается заслонкой 10. Заслонка с помощью муфты 4 соединена со штоком 9, несущим поршень, движущийся в цилиндре 8 при помощи гидравлического привода, снабженного четырехходовым краном 5. По шлангу 6 поступает вода для промывания. Подачу воздуха регулируют задвижкой 22 через распределительный коллектор 23. Культуральная среда выводится по трубе 24. За уровнем жидкости в аппарате наблюдают через мерное стекло 25. [c.1039]

Аппарат оснащен трубчатой аэрационной системой (рис. 20.12, б), перфорированные трубки 2 которой крепятся к коллектору 3, соединенному с трубопроводом 1. Перфорированные трубки с помощью резьбы соединены с коллектором (лежаком) диаметром 250 мм на расстоянии 125 мм. С одной стороны коллектора расположено 25 трубок диаметром 40 мм, в которых отверстия диаметром 1,5 мм обращены вниз и расположены в три ряда через 30° (в поперечном сечении). Расположение отверстий в коллекторе и в барботажных трубках представлено на рис. 20.12, в и г. В коллекторе также имеются отверстия диаметром 1,5 мм для выхода воздуха, обращенные вниз с шагом по длине коллектора 50 мм. По поперечному сечению расположено пять рядов отверстий через 23°30. Такое расположение отверстий исключает застой жидкости в системе аэрации и создает удобства для ее мойки. Культуральная среда охлаждается при прохождении ч ез выносной пластинчатый теплообменник с поверхностью теплообмена 100 м с помощью насоса. [c.1040]

Состав культуральных сред (Кс), упомянутых в табл. 4, приведен в Описке реактивов, испытательных и титрованных растворов (см. с. 189). В каждом случае окончательное значение pH доводится до величины, указанной в таблице. [c.171]

Используемая для испытаний на стерильность грибов и бактерий культуральная среда должна поддерживать рост самых разнообразных микроорганизмов, аэробных и анаэробных в том числе тех, которые обнаруживаются в производственных условиях. Для того чтобы удовлетворить этим критериям, обычно необходимо применять более чем одну культуральную среду. К средам, которые обычно дают удовлетворительные результаты, относятся жидкая меркаптоуксусная (тиогликолевая) среда (культуральная среда Кс4) и среда гидролизата соевой муки и казеина (культуральная среда Кс5). Однако можно применить любую другую среду, если подтверждена ее способность поддерживать рост микроорганизмов на том же уровне, что и указанные выше среды. [c.173]

Для проверки способности каждой культуральной среды поддерживать рост микроорганизмов необходимо использовать штаммы микроорганизмов с точно установленными питательными и аэробно-анаэробными потребностями в тест-культуре, содержащей лишь небольшое число организмов (менее 100). Среду следует инкубировать при той же температуре, при которой она будет использоваться в испытании на стерильность наличие роста должно быть очевидным через 24 ч. [c.174]

Суточная потребность около 2 мг в день. Вследствие широкого распространения рибофлавина в продуктах питания у людей редко наблюдается его недостаточность, при которой в первую очередь поражаются глаза и кожа. В промышленности большие количества рибофлавина получают при помощи грибов (таких, как ЕгетоШесшт азкЬу1), которые, по-видимому, из-за каких-то нарушений метаболизма, вырабатывают витамин в таком изобилии, что он кристаллизуется в культуральной среде. [c.256]

Характер изменения температурного профиля в периодическом термостерилизаторе для приведенных законов иллюстрирует табл. 3.4. При стерилизации культуральных сред в термостерилизаторах, когда сущ,ественны эффекты сегрегации, а микробные клетки или споры находятся в агломератах, характер изменения температуры во времени по радиусу агломерата имеет вид [c.131]

Учитывая, что в процессе термостерилизации культуральных сред прп длительном воздействии высоких температур возможно отрицательное влияние нагрева на целый ряд биологически активных веществ и витаминов, растворенных в среде, оценка структуры потоков в аппаратах приобретает важное значение. Так, в зависимости от режима прохождения стерилизуемой среды (критерия Ре) доля клеток, находящихся в аппарате в течение времени выше среднего (расчетного), составляет, % Ре->оо — 0 Ре = 320 —3,1 Ре = 80 —5,2 Ре=16—13,3 Ре = 0 —36,8. [c.133]

Образцы стерилизовали 6 %-ным раствором перекиси водорода в течение 6 ч, 2 раза отмывали стерильной водой, вводили в ячейку из оргстекла размером 210x250 мм с плотно пригнанной крышкой и фиксировали в ней двойными манжетами из вакуумной резины, обеспечивающими герметичность соединений. Ячейку также предварительно стерилизовали раствором перекиси водорода. После сборки ячейку стерильно заполняли средой Постгейта и инокулировали накопительной культурой сульфат-редуцирующих бактерий, выделенной из грунта траншей трубопровода, проложенного в дерновоподзолистой почве на севере Европейской части СССР. Каждые 4 дня 3/4 культуральной среды стерильно заменяли свежей средой Постгейта. Культуры сульфатредуцирующих бактерий выращивали при температуре 299-291 К. В указанных условиях концентрация свободного сероводорода составляла в среднем 19 мг/л, что соответствовало [c.27]

Структура пенициллина показана на рис. 14.11. Это вещество было синтезировано, однако дещевый метод синтеза его пока не разработан, и больщое количество пенициллина, используемого для лечения болезней, получают выращиванием плесени Peni illium и последующим его экстрагированием из культуральной среды. Важными этапами введения пенициллина в медицинскую практику были выбор штаммов плесени, дающих желательную форму пенициллина в больших количествах, и нахождение наиболее благоприятной среды для роста данной плесени. [c.425]

Приготовление суспензии миеломных клеток для гибридизации. Работа с клетками и культуральными средами должна проводиться в условиях, абсолютно стерильных 50 мл среды с культивируемыми миеломными клетками, находящимися в логарифмической стадии роста, центрифугируют в течение 8 мин при 800 об/мин, надосадок сливают в отдельную пробирку. Клетки суспендируют в 50 мл холодной ростовой среды без сыворотки (бессывороточная среда), отмывают центрифугированием при тех же условиях и суспендируют в 20 мл холодной бессывороточной среды. Клетки подсчитывают в камере Горяева. Их количество должно быть не менее 10 . [c.311]

Разделение белков и крахмала в крахмальных производствах из зерна злаковых влажным методом. Классическая схема экстрагирования крахмала кукурузы (рис. 9.54) осуществляется полностью в водной фазе из цельного зерна. На первом этапе надлежащим образом очищенные зерна вымачивают (при этом происходит мацерация) при температуре 50—52 °С в течение 30—48 ч в воде, содержащей серный ангидрид и молочнокислые бактерии. Эта операция вызывает разбухание и размягчение зерен, облегчающее дальнейшие операции разделения. Вода вымачивания сцеживается противотоком из партий зерна, которые последовательно подвергались вымачиванию. Она содержит растворимые вещества и может концентрироваться выпариванием в вакууме ее можно использовать для приготовления культуральных сред ( orn steep) или смешивать с волокнами, бардой или отходами из зерновых оболочек, извлеченных впоследствии, для скармливания скоту (кукурузный клейковинный корм). Разбух- [c.493]

Биомассу дрожжей выращивают при температуре 30 °С в среде, содержащей свекловичную мелассу, мочевину и минеральные компоненты. Через сутки в ферментер вводят 5 %-й спиртовой раствор антраниловой кислоты и 50 %-й раствор мочевины, а через 3 —4 ч после введения предшественника дополнительно добавляют источник углерода (25 %-й раствор мелассы). Антранило-вую кислоту и мочевину подают через каждые 6 ч, а мелассу — через каждые 12 ч. Процесс двухступенчатой ферментации завершается через 144 ч и обеспечивает содержание триптофана в культуральной среде до 6 г/л. [c.49]

Менее распространены одноступенчатые технолог получения триптофана на основе ауксотрофных мутантов бактерии Ba illus subtilis, осуществляемые по схеме, близкой к способу получения лизина. Длительность одноступенчатого процесса 48 ч, а концентрация триптофана в культуральной среде составляет 10 г/л. [c.49]

В качестве короткоцепочечного антибиотика можно назвать трипептид ь-аргинил-о-аллотреонил-ь-фенилаланин, выделенный из культуральной среды гриба Keratinophyton terreum, подавляющий, однако, только рост грибов, но не бактерий. Его антибиотическое действие снимается L-гистидином. [c.297]

Используют чашк И Петри или прямоугольные лотки, заполненные на глубину 3—4 мм, если нет других указаний в частной статье, культуральной средой, предварительно засеянной соответствующей культурой чувствительного тест-организма, приготовленного, как описано ниже. Питательный агар может состоять из двух отдельных слоев, из которых только верхний слой может быть засеян. Концентрация тест-организ-ма должна быть подобрана таким образом, чтобы получить четкие зоны угнетения в соответствии с ответами на дозу с различными концентрациями стандарта. Если посев готовят, как описано ниже, засеянная среда обычно содержит 1 мл посевного материала на 100 мл культуральной среды. Если культура состоит из суспензии вегетативных клеток, температура расплавленной для засева агаровой среды не должна превышать 48—50° С. Следует специально отобрать чашки и лотки с плоским дном во время заполнения их устанавливают на ровной горизонтальной поверхности для обеспечения одинаковой толщины слоя среды. При использовании некоторых тест-организмов методику можно усовершенствовать, перед употреблением высушивая засеянные лотки при комнатной температуре в течение 30 мин или помещая их в холодильник при 4°С на несколько часов. [c.166]

Bordetella bron hisepti a. Тест-культуру выращивают в течение ночи на культуральной среде Кс2 (pH 6,5—6,6 после стерилизации) три температуре 35—37 °С. Суспензию готовят смыванием культуры и разведением изотоническим стерильным раствором ИР или водой до определенной степени мутности взвеси, такой, например, при которой слой толщиной 1 см при 650 нм пропускает 50% падающего света. Суспензию можно хранить в течение 2 нед при температуре не выше 4°С. [c.171]

После завершения фильтрования мембрану асептически делят на две приблизительно равные части. Переносят одну часть мембраны в сосуд (для этого пригодна пробирка), содержащий 50—100 мл культуральной среды Кс4 (меркаптоуксусная среда), другую часть мембраны помещают в другой [c.174]

В зависимости от размера упаковки берут от 1 до 10 порций, каждая по 0,3 г испытуемого материала, и асептически переносят их в отдельные стерильные сосуды (для этого пригодны пробирки), содержащие 50—100 мл культуральной среды Кеб (меркаптоуксусная среда с пенициллиназой). Помещают порции такого же размера в другой набор отдельных стерильных сосудов, содержащих 50—100 мл культуральной среды Кс7 (гидролизат соевой муки и казеина с пенициллиназой). [c.175]

Смотреть страницы где упоминается термин Культуральные среды: [c.106] [c.114] [c.368] [c.368] [c.372] [c.373] [c.374] [c.378] [c.432] [c.321] [c.34] [c.43] [c.46] [c.50] [c.54] [c.60] [c.182] [c.605] [c.171] [c.171] [c.173] [c.175]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология