Бактерии непрерывная культура

Часто культуру клеток выращивают в условиях, когда время генерации поддерживается постоянным, однако плотность клеток в среде не возрастает. Для этих целей создано простое устройство, названное хемостатом. Среда в сосуде с культурой, содержащая определенное число бактерий, непрерывно перемешивается. В этот сосуд из специального резервуара все время поступает свежая культуральная среда, а часть содержимого сосуда вместе с суспендированными бактериями непрерывно выводится в другой сосуд. Численность популяции бактерий в сосуде достигает постоянного уровня, который может поддерживаться относительно долго. [c.40]

В периодической культуре условия все время меняются плотность популяции бактерий возрастает, а концентрация субстрата уменьшается. Во многих физиологических исследованиях представляется, однако, желательным, чтобы клетки могли долгое время находиться в фазе экспоненциального роста при постоянной концентрации субстрата в неизменных прочих условиях. В какой-то мере приблизиться к такому положению можно, многократно и достаточно часто перенося клетки в новую питательную среду. Той же цели было бы, очевидно, проще достичь, если в сосуд, содержащий популяцию растущих бактерий, непрерывно вводить новый питательный раствор и одновременно удалять из него соответствующее количество бактериальной суспензии. Именно [c.199]

Как правило, накопительные культуры получают в закрытых системах, т. е. микроорганизмы выращивают в обычных периодических (стационарных) условиях в колбах или пробирках, где концентрация питательных веществ и продуктов метаболизма постоянно изменяется в процессе их роста. Для получения накопительных культур используются также открытые системы. Например, с помощью хемостата можно обеспечить постоянство окружающей среды для бактерий, непрерывно подавая питательные вещества в концентрации, лимитирующей рост, и удаляя продукты метаболизма. Изменяя скорость разбавления среды в хемостате, можно контролировать концентрацию питательных веществ, лимитирующих рост. В свою очередь это может избирательно влиять на скорость роста различных организмов в смешанной бактериальной культуре, в результате чего один или другой организм смешанной популяции начинает количественно преобладать. [c.278]

Семенов Я. В., Петрова Т. А. Исследование роста водородных бактерий в периодическом и непрерывном режиме в аппаратах со струйным диспергированием.— В кн. Хемосинтез в непрерывной культуре. Новосибирск, 1978, с. 42—50. [c.143]

Метановое брожение осуществляют непрерывным способом, используя смешанную культуру метанобразующих бактерий, в ана- [c.389]

В настоящее время наиболее прогрессивным признан проточный метод культивирования микроорганизмов, который обеспечивает непрерывную подачу в ферментер как питательной среды, так и посевного материала. Размножение микроорганизмов и биосинтез фермента регулируют при использовании этого метода по мере поступления питательной смеси в ферментер. Такой ферментер представляет собой вращающийся трубкообразный реактор, через один конец которого в него поступает питательная среда и культура микроорганизмов, а из другого — выводятся ферменты, продукты жизнедеятельности и бактериальная масса. Основное достоинство метода — возможность длительное время поддерживать в автоматическом режиме рост культуры микроорганизма. Например, культура ацетонобутиловых бактерий находилась в таком реакторе в состоянии непрерывного размножения в течение 200 суток (И.Д. Иерусалимский с сотр., 1986). [c.78]

В СССР молочная промышленность обеспечивается жидкими или сухими заквасками из специализированных лабораторий чистых культур. В качестве примера можно привести метод приготовления сухих заквасок с использованием распылительных сушилок. Необходимо отметить, что размножение молочнокислых бактерий пока осуществляется по периодическому методу культивирования. Использование непрерывного метода культивирования затрудняет сложный микробиологический состав закваски — несколько культур с отличающимися физиологически- [c.122]

Сбраживание затора осуществляется с помош ью чистых культур либо периодическим, либо непрерывным способом. Относительно высокие начальные концентрации сахаров и декстринов в заторах неблагоприятны для бактерий — контаминантов из-за повышенного осмотического давления. Позже, когда осмотическое давление снижается, образующийся этанол и естественно возрастающая или искусственно создаваемая подкислением серной кислотой) кислотность среды (pH 3,8—4,0) выступают основными [c.396]

Потери фиксированного азота почвой связаны с денитрификацией его соединений, вызываемой особыми бактериями, находящимися в почве. Часть связанного азота вымывается из почвы водой и уносится в моря. Значительное количество азота, усваиваемого сельскохозяйственными растениями, вообще не возвращается в почву. Все это, а также необходимость повышения урожайности сельскохозяйственных Культур требует непрерывного внесения в почву большого количества соединений азота. [c.10]

Способ непрерывного выращивания позволяет поддерживать культуру в одном и том же состоянии неограниченно долгое время. Это доказано многими замечательными экспериментами. Так, в лаборатории акад. Н. Д. Иерусалимского культура ацетонобутиловых бактерий поддерживалась в состоянии непрерывного размножения около 200 дней, дав за это время более 4300 поколений. Когда после этого бактерии были переведены в условия непроточных сред, то оказалось, что все их особенности и признаки остались без изменений. Интересно, что после нескольких пересевов в вегетативном состоянии эти бактерии вырождаются, утрачивают способность вызывать брожение. Вырождение обусловлено тем, что при выращивании на непроточных (обычных) средах создаются условия, отрицательно влияющие на клетки. В проточных средах этого не происходит. Подобные наблюдения имеются и не только для бактериальных клеток. Удавалось, например, парамеций поддерживать в состоянии непрерывного размножения свыше 20 лет (7883 клеточных поколения). В других [c.134]

МОЖНО удалить путем обработки полимера щавелевой или трифторуксусной кислотой. Существуют также мутанты, образующие ксантаыы, лишенные остатков пирувата или ацетильных групп, а в остальном имеющие неизмененную углеводную структуру и более низкую вязкость. Однако отбор таких мутантов затруднен тем, что модифицированные продукты часто неотличимы от исходных полисахаридов, хотя колонии и могут различаться по внешнему виду и иметь тенденцию к прикреплению к поверхности культуральной среды. Другие способы решения данной проблемы предусматривают выращивание бактерий дикого типа в присутствии ингибиторов ацилирования или при недостатке калия либо магния. Можно также выделить мутанты, образующие полисахариды с большей молекулярной массой и, следовательно, с большей вязкостью, но в остальном не отличающиеся от обычных по химическому составу. Длина полимерных цепей иногда зависит от условий роста. Наприм рл в непрерывных культурах Xanthomonas juglandis при малом разведении образуются более длинные неразветвленные молекулы. [c.233]

Один из таких подходов к проблеме флокулообразования, который применим как к периодической, так и к непрерывной культуре, был предложен Чараклисом [148], который из-за отсутствия данных о равновесном распределении флокул по их размерам предложил решать вопрос об общем росте и утилизации субстрата в бактериальных флокулах на основе предположений об одномерном переносе и последовательном поглощении субстрата на поверхности бактерий с помощью уравнений кинетики насыщения типа уравнения Моно. Более распространенным подходом к этой проблеме явилась модификация кинетического уравнения, используемого для вычисления диффузионного торможения, но при этом происходила подмена скорости реакции скоростью массопереноса. Используя прежний подход и обозначив концентрацию лимитирующего субстрата на поверхности бактериальной клетки как с можно выразить скорость потребления субстрата как [c.99]

Жданова Л. Г. Непрерывные культуры как физиологические системы для изучения антигенных и иммуногенных свойств тифозных бактерий, Докт. дисс, М,, 1974, [c.111]

Именно способность бактерий к быстрому размножению обеспечивает их численный перевес среди живых форм. Тем не менее имеются естественные причины, препятствующие взрывам численности в бактериальных культурах. Независимо от размера сосуда бактериальная культура не может очень долго продолжать расти экспоненциально с периодом генерации 20 мин. Если бы такой рост был возможен, то одна-единственная бактерия Е. соИ через 24 ч образовала бы 2 , или около 10 , потомков, суммарный вес которых составил бы несколько десятков тысяч тонн. Еще через 24 ч экспоненциального роста вес потомков этой бактерии превысил бы в несколько раз вес земного шара. Наша планета, как известно, не превратилась в сплошную массу микробов. И это не только потому, что бактерии исчерпывают питательные вещества, поддерживающие их рост, но и потому, что при росте бактерии непрерывно отравляют окружающую среду, выделяя все большее количество продуктов, токсичных для них самих. Как в природе, так и в лаборатории это отравление среды вызывает вскоре замедление роста — от максимального (наблюдаемого при наиболее благоприятных условиях) вплоть до полной его остановки (когда способность репродукции падает наконец до нуля). На этой стадии, когда не происходит дальнейшего увеличения числа клеток, культура достигает стационарной фазы (фиг. 26). Культуры Е. oli, растущие как Б простой синтетической среде, так и в питательном бульоне, вступают в стационарную фазу, когда концентрация бактерий составляет примерно от 2-10 до 5-10 клеток в 1 мл. [c.56]

Непрерывная культура А. eutrophus имеет две специфические особенности. Во-первых, штаммы этого вида не выделяют в среду тормозящие их рост продукты, т. е. кр = О, и, во-вторых, лимитирующие рост компоненты, как правило, поступают из газовой фазы, и, следовательно, на весь процесс влияет массопередача через поверхность раздела газ — жидкость. Таким образом, систему уравнения для водородокисляющих бактерий MOHUIO представить в виде [c.50]

Калачева Г. С., Трубачев И. Н. Липиды водородных бактерий.— В кн. Хемосинтез в непрерывной культуре. Новосибирск, 1978, с. 89-96. [c.139]

Кеслер Т. Г., Вебер М. И., Войтович Я. В. Потребности водородных бактерий в биогенных элементах.— В кн. Непрерывная культура водородных бактерий как средство биосинтеза белка. Красноярск, 1974а, с. 38-45. [c.139]

Кеслер Т. Г., Вебер М. И., Трубачев И. H., Сидько Ф. Я. Влияние режима минерального питания на биосинтез водородных бактерий в непрерывной культуре.— В кн. Непрерывная культура водородных бактерий как средство биосинтеза белка. Красноярск, 19746, с. 45—52. [c.139]

Кеслер Т. Г., Шапорева Л. В., Лещева А. П. Биосинтез водородных бактерий на различных источниках азота.— В кн. Непрерывная культура водородных бактерий как средство биосинтеза белка. Красноярск, [c.139]

Ковров Б. Г., Денисов В. Г., Секачева Л. Г., Белый А. В. Культиватор для выращивания бактерий Thioha illus ferrooxidas сопряженно С электрохимическим восстановлением энергетического субстрата.— В кн. Хемосинтез в непрерывной культуре. Новосибирск, 1978, с. 34—40. [c.140]

Ксенжек О. С., Серебритский В. М., Вечерова В. В. Особенности культивирования водородных бактерий с внутренним электролизом.— В кн. Хемосинтез в непрерывной культуре. Новосибирск, 1978, с. 55—64. [c.140]

Полонская Д. В. О микрофлоре, сопутствующей водородным бактериям в непрерывной культуре.— В кн. Непрерывная культура водородокисляющих бактерий как средство биосинтеза белка. Красноярск, 1974, с. 77-82. [c.142]

Пономарев П. И., Рубцов И. Д., Сальников М. В., Безруких В. И. Установка для непрерывного культивирования водородных бактерий.— В кн. Непрерывная культура водородокисляющих бактерий как средство биосинтеза белка. Красноярск, 1974, с. 26—38. [c.142]

Терсков И. А., Кондратьев Р. Б., Сидько Ф. Я. и др. Исследование роста и развития мясных цыплят (бройлеров) при замене в рационе животного белка белком водородных бактерий.— В кн. Хемосинтез в непрерывной культуре. Новосибирск, 1978, с. 20—26. [c.144]

Трубачев И. И., Андреева Р. И. Аминокислотный состав водородных бактерий в непрерывной культуре.— Информ. бюл. Иркутск, 1969, вып. 5, с. 119-120. [c.144]

Для образования 1 г сухой биомассы даже при 100% КПД биосинтеза эта бактерия должна окислить около 26 г двухвалентного железа в трех-валетное. Реально КПД для этой бактерии в лучшем случае составляет 25—30% [18]. Это значит, что для синтеза 1 г биомассы нужно окислить около 100 г восстановленного железа. Количество биомассы, которое может быть выращено в единице объема питательной среды составляет согласно модели Моно-Иерусалимского для непрерывной культуры [c.125]

Наиболее удобными в эксплуатации, сравнительно легко управляемыми сооружениями биохимической очистки служат аэротенки. Это — железобетонные резервуары (длина 30—100 м, ширина 3—10 м, высота 3—5 м), в которые непрерывно подается воздух. Для диспергирования воздуха служат различные устройства — перфорированные пластины, дырчатые трубки, форсунки, аэраторы со съемными диффузорами из пористого пластика и др. Перемешивание фаз достигается иногда механическими способами при помощи мешалок, а также различным направлением движения и разными местами ввода потоков жидкости. Источником биохимического окисления в аэротенке служит активный ил , т. е. скопление аэробных бактерий в видё хлопьев, образующихся при смешении культуры бактерий с очищаемой сточной водой. Активный ил сохраняется в аппарате во взвешенном состоянии. Интенсивная [c.250]

Масляная кислота получается из крахмала, сахара, глицерина и молочнокислых солей при различных бактериальных процессах брожения. Эти процессы используются также для получения масляной кислоты в промышленных масштабах. Прн этом целесообразно, насколько это возможно, работать с чистыми культурами маслянокислых бактерий (Вас. butyli us, Granuloba ter и др.), чтобы исключить побочные процессы брожения, приводящие к образованию других продуктов. Прибавлением карбоната кальция создают условия непрерывной нейтрализации образующейся масляной кислоты. С аналогичными процессами связано присутствие масляной кислоты в некоторых продуктах питания (лимбургский сыр, кислая капуста и др.). [c.251]

В начале производства культуру метанобразующих бактерий размножают, используя в качестве посевного материала метановую бражку (примерно 200 м ) от предыдущего производственного сезона. Размножение бактерий до полезного объема одного метантенка (3600 м ) продолжается 30 сут. После накопления необходимого объема культуры переходят на непрерывный процесс метанового брожения при постоянном притоке в метантенки барды и одновременном отборе метановой бражки. [c.390]

Непрерывный процесс проводят в каскаде ферментеров 4, каждый из которых отвечает за определенную стадию процесса - быстрое размножение культуры бактерий и наращивание биомассы, активное окисление спирта, замедление роста биомассы с накоплением продукта (автоингибирование), истощение популяции бактерий и их гибель. В соответствие со стадиями процесса в каждом ферментаторе поддерживаются заданные условия культивирования (концентрации спирта и кислоты, температура, степень аэрации). Подаваемый в ферментеры [c.428]

Подготовленное сырье освобождают в декантаторе от взвешенных частиц и непрерывно подают в нижнюю часть ферментера (метантенка) емкостью 4200 м . Одновременно в ферментер поступает посевной материал культуры микроорганизмов, предварительно выращенный в специальных аппаратах. Для выращивания продуцента требуются облигатно анаэробные условия, ибо даже следы кислорода подавляют рост бактерий. При создании анаэробных условий в среду подают диоксид углерода или газы, вьщеляющиеся в процессе ферментации. Ежедневно из метантенка отбирают 25 — 30 % объема среды. Продукт ферментации стабилизируют, подкисляя соляной или фосфорной кислотой до pH 6,3 —6,5 и добавляя 0,2—0,25 % сульфита натрия, что предотвращает разрушение витамина при тепловой обработке, особенно существенное в щелочной среде. В дальнейшем отобранная часть культуральной жидкости дегазируется, упаривается в вакууме кон- [c.56]

Ферментацию G.oxydans проводят на средах, содержащих сорбит (20%), кукурузный или дрожжевой экстракт, при интенсивной аэрации (8—10 г Ог/л/ч). Выход L-сорбозы может достичь 98% за одни-двое суток. При достижении культурой log-фазы можно дополнительно внести в среду сорбит, доводя его концентрацию до 25%. Также установлено, что G.oxydans может окислять и более высокие концентрации полиспирта (30—50%), создаваемые на последних стадиях процесса. Это происходит благодаря полиолде-гидрогеназы, содержащейся в клеточной биомассе. Ферментацию бактерий проводят в периодическом или непрерывном режиме. Принципиально доказана возможность получения L-сорбозы из сорбита с помощью иммобилизованных клеток в ПААГ. [c.454]

Приспособление культуры для усвоения фгнола осуществляли непрерывным добавлением небольшого количества технических кре-золов. Первые добавки крезолов вызывали массовую гибель бактерий. Однако со временем при постепенном повышении содержания крезолов удалось вывести штамм бактерий, способных усваивать фгнолы. Применяемый в настоящее время штамм переносит концентрацию фэнола до 40 мг л. [c.257]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология