Рибонуклеозид трифосфаты

ТРАНС-ИЗОМЕРЫ, см. Геометрическая изомерия. ТРАНСКРИПЦИЯ, перенос генетич. информации, с помощью к-рого нуклеотидная последовательность ДНК определяет порядок расположения нуклеотидов в РНК. Осуществляется путем матричного синтеза РНК, последовательность рибонуклеотидов в к-рой комплементарна (см. Нуклеиновые кислоты) последовательности дезоксирибо-нуклеотидов в одной из двух цепей ДНК и гомологична (подобна) их последовательности во второй цепи ДНК. Синтезируется РНК с помощью фермента РНК-полимера-зы из рибонуклеозид-5 -трифосфатов последоват. наращиванием цепи РНК в направлении от 5 - к З -концу. Известна также обратная Т. (синтез ДНК на матрице РНК) — один из этапов репликации РНК-содержащих вирусов. Осуществляется фермеетом РНК-зависимой ДНК-полимеразой (обратная транскриптаза). За открытие обратной Т. Д. Балтимор и X. Темин в 1975 удостоены Нобелевской премии. ТРАНСЛЯЦИЯ, процесс, с помощью к-рого нуклеотидная последовательность матричной РНК (мРНК) определяет расположение аминокислот в синтезируемом белке. Заключит. стадия реализации генетич. кода — перевод 4-буквен- [c.587]

РНК-полимераза катализирует синтез РНК из рибонуклеозид-трифосфатов АТФ, УТФ, ГТФ и ЦТФ в присутствии ДНК матрицы АТФ + УТФ ГТФ + ЦТФ РНК + пирофосфат. [c.49]

Аденозинтрифосфат ТР). Рибонуклеозид-5 -трифосфат, участвующий в энергетическом цикле клетки в качестве донора фосфатной группы. [c.1007]

Другая группа ферментов катализирует образование олиго- или полинуклеотидов с 3 - 5 -фосфодиэфирными связями из рибо- или дезоксирибонуклеозид-5 -трифосфатов иля рибонуклеозид-5 -дифос-фатов. Протекающие при этом реакции могут быть схематически представлены уравнениями [c.97]

Субстратами реакции служат трифосфаты рибонуклеозидов. Реакция идет только в присутствии ДНК, выполняющей роль матрицы. Матрицей служит одна из цепей ДНК, называемая матричной (а также кодирующей, значащей) цепью. Все синтезированные молекулы РНК имеют структуру, комплементарную матрице, т. е. одной из цепей ДНК. Поскольку РНК представляет собой одноцепочечную [c.126]

Субстратами для синтеза ДНК являются дезоксирибонуклеозид-трифосфаты, а для синтеза РНК — рибонуклеозид-трифосфаты. Аминокислоты, соединенные с тРНК, служат субстратами для синтеза белка. [c.450]

Однако остается открытым вопрос, достаточно ли простого связывания РНК-полимеразы с промотором для локального расхождения цепей вблизи сайта инициации синтеза РНК или РНК-полимераза расплетает спираль в стартовом сайте. Независимо от механизма образование открытого промотор-ного комплекса позволяет РНК-полимеразе осуше-ствить спаривание первого и второго рибонуклеозид-трифосфатов с матричной цепью и катализировать образование первой фосфодиэфирной связи. [c.123]

Тремя главными матричными процессами, присущими всем без исключения живым организмам, являются репликация ДНК, транскрипция и трансляция. Репликация ДНК происходит с участием ферментов ДНК-полимераз. Роль матриц играют разделенные цепи двунитевой материнской ДНК. Субстратами являются дезоксирибонуклеозид-5 -трифосфаты. Транскрипция осуществляется с помощью ферментов РНК-полимераз. Матрицей служит одна из нитей двунитевой ДНК, а субстратами — рибонуклеозид-5 -трифосфаты. Трансляция происходит на рибосомах с участием информационной РНК (мРНК) в качестве матрицы и аминоз1Ц1л-тРНК в качестве субстратов. Кроме того, при заражении клеток вирусами, у которых наследственная информация содержится в молекулах вирусных РНК, в клетках начинается запрограммированный этими РНК синтез ферментов, называемых обычно РНК-репликазами, которые катализируют биосинтез РНК, используя в качестве матриц молекулы РНК. Некоторые вирусы, вызывающие злокачественные новообразования, содержат ферменты, катализирующие обратную транскрипцию — синтез ДНК с использованием в качестве матриц молекул РНК. Эти ферменты часто называют обратными транскриптазами или ревертазами. Более строгие названия двух последних групп ферментов соответственно — РНК-зависимая РНК-полимераза и РНК-зависимая ДНК полимераза. [c.174]

Матричный биосинтез РНК осуществляется с помощыо ферментов, называемых РНК-полимеразами или, более развернуто, ДНК-зависимыми РНК- юлимера-зами. Эти ферменты катализируют реакщ1Ю, соверщенно аналогичную реакции (V.2), катализируемой ДНК-полимеразами, с той лишь разницей, что ее участниками являются четыре рибонуклеозид-5 -трифосфата, три из которых содержат те же гетероциклы, что и субстраты синтеза ДНК, а один — уридин-5 -трифосфат, выступающий в качестве рибоаналога дезокситимидин-5 -трифосфата, используемого в процессах репарации и репликации, вместо тимина содержит урацил [c.183]

РНК-репликаза, вьщеленная из клеток Е.соН, зараженных вирусом Qp, катализирует образование РНК, комплементарной вирусной РНК, из рибонуклеозид-5 -трифосфатов. Уравнеш1е этой реакции аналогично уравнению реакции, катализируемой ДНК-зависимой РНК-полиме-разой [c.921]

Ввиду биологической важности производных адениловой кислоты основное внимание было сосредоточено на ацил- и аминоацил-ангидридах аденозин-5 -фосфата. Однако в клетках асцитной карциномы Эрлиха было обнаружено производное аспарагиновой кислоты и уридин-5 -фосфата [306], а в экстрактах из дрожжей (Гоги1ор815 ШШз) отмечено также присутствие аспарагинового, глутаминового, аргининового и аланинового производных уридин-5 -пирофосфата [307]. Из печени и лактирующих млечных желез выделены производные глутаминовой и аспарагиновой кислот и аденозин-5 -пирофосфата [308]. В связи с рассмотрением такого рода соединений интересно отметить, что в пекарских дрожжах обнаружена обусловленная нуклеозид-5 -трифосфатом активация пептидов, которая связана с протеолитическими процессами (поскольку к диализированной неочищенной фракции белка не было добавлено никаких аминокислот или пептидов). На 1 моль образовавшегося (из активированного пептида) гидроксамата приходилось стехио-метрическое количество освобожденного неорганического фосфата. Та же ферментативная фракция катализирует обмен радиоактивного фосфата с каждым из четырех рибонуклеозид-5 -трифосфатов [309]. [c.231]

NMP) +1 - удлиненный полинуклеотид, а Pj-отцепившийся фосфат. Ферменту необходимы 5 -дифосфаты рибонуклео-зидов с рибонуклеозид-5 -трифосфата-ми, с дезоксирибонуклеозид-5 -дифосфа- [c.922]

В кислых экстрактах из зобной железы [43] и других тканей [51] обнаружены моно-, ди- и трифосфаты пиримидиновых дезокси-рибонуклеозидов. Ди- и трифосфаты всех 4 дезоксирибонуклеози-дов образуются из соответствующих монофосфатов в результате биологического фосфорилирования [53]. [c.25]

В опытах с асцитной карциномой Лапдшутца было показано, что в микросомной фракции осуществляется РНК-зависимое включение АТФ, ГТФ, ЦТФ и УТФ. Эта система не реагирует на ДНК-затравку, не зависит от актиномицина D или ДНК-азы, ингибируется РНК-азой и стимулируется в присутствии всех четырех рибонуклеозид-5 -трифосфатов [138]. [c.247]

Превращение нуклеозид-5 -трифосфата под действием водной гидроокиси бария — сложный процесс, в результате которого образуется ряд продуктов [144], в том числе и нуклеозид-3, 5 -циклофосфат [76]. Как рибонуклеозид-3, 5 -циклофосфаты, так и аналогичные дезоксппроизБодные можно получать непосредственно нагреванием три-н-бутиламмониевой солн нуклеозид-5 -фосфата и ди-циклогексилкарбодинмида в пиридине [76—78]. [c.150]

Описано несколько других систем, которые катализируют включение концевых рибонуклеотидов в РНК- Они, возможно, и не имеют отношения к специфическому синтезу РНК de novo, так как рибонуклеиновые кислоты, вероятно, образуются путем постепенного присоединения нуклеотидов и концевые фрагменты, по-видимому, должны быть более чувствительны к обратимому пирофосфоро-лизу, чем внутренние нуклеотиды. Однако важным фактором при включении в концевые группы может быть отсутствие подходящего рибонуклеозид-5 -трифосфата. В различных рибонуклеиновых кислотах было идентифицировано около тринадцати различных нуклеозидов при попытке вызвать ферментативную полимеризацию-четырех основных нуклеотидов встретились затруднения, препятствующие образованию полинуклеотида с достаточно высокой длиной цепи. Тем не менее существуют прямые доказательства синтеза полирибонуклеотидов из рибонуклеозид-5 -трифосфатов в животных системах. Например, экстракты из ядер зобной железы теленка после фракционирования дают ферментные препараты, которые катализируют образование полиадениловой кислоты (длиной 25—100 нуклеотидов) из аденозин-5 -трифосфатов. В присутствии затравочной РНК цитидин-5 -трифосфат превращается в по-лицитидиловую кислоту частично очищенным ферментом (в отличие от фермента, специфичного для АТФ) из того же самого источника. В случае других систем животных (ядра печени крысы) моно-нуклеотидный остаток цитидин-5 -трифосфата (а-Р ) включается во внутренние участки, а не в конец цепи. Включение заметно стимулируется АТФ, ГТФ и УТФ, в то время как рибонуклеаза и дезоксирибонуклеаза заметно понижают включение. [c.318]

Определение соотношения оснований в полученной РНК путем анализа ближайшего соседа (меченные Р субстраты) при использовании ДНК-затравки с резко отличающимся нуклеотидным составом показало, что образующаяся РНК комплементарна затравочной ДНК- При использовании олиготимидиловой кислоты в качестве затравки из смеси рибонуклеозид-5 -трифосфатов в реакции участвует лишь аденозин-5 -трифосфат с образованием полиадениловой кислоты. Аналогичным образом при использовании ферментативно синтезированного сополимера тимидиловой и дезоксиадениловой кислот (с прямо противоположной последовательностью оснований) в качестве затравки для РНК-полимеразы из Е. oli был получен продукт, содержащий лишь адениловую и уридиловую кислоты (даже в присутствии других нуклеотидов). Щелочной гидролиз (сопровождающийся переносом Р ) показал, что адениловые и урациловые остатки противостоят друг другу, а отсюда затравка определяет как состав, так и последовательность оснований в продукте. (Для частично очищенной бактериальной РНК-полимеразы затравкой могут служить полирибонуклеотиды возможно, при этом функционирует не ДНК-зависимая полимераза, а какой-то другой фермент.) [c.319]

Подобно описанным рибонуклеозидфосфатам образуются моно-, ди- и трифосфаты дезоксирибонуклеозидов, с тем лишь отличием, что остаток дезоксирибозы в последних содержит на одну спиртовую группу меньше, чем рибоза В рибонуклеозидах. [c.64]

К настоящему времени синтезировано значительное число негидролизуемых аналогов ди- и трифос-фатов пуриновых и пиримидиновых рибонуклеозидов. Такие аналоги позволяют исследователю ответить на вопрос связан ли наблюдаемый биохимический эффект ди- и трифосфатов нуклеозидов с их гидролизом или же он является результатом взаимодействия со специфическими нуклеотид-свя-зывающими центрами ферментов или регуляторных белков. На рис. 34. 22 представлены два негид- [c.14]

Хотя АТФ непременный участник всех главных энергетических превращений в клетке, связанных с переносом фосфатных групп, в этом процессе могут принимать участие 5 -трифосфаты и других рибонуклеозидов и 2-дезоксирибонуклеозидов. Они не только являются предшественниками нуклеиновых кислот, но и служат донорами энергии для некоторых специфических реакций биосинтеза. Все они связаны с АТФ через фермент нуклеозид-дифосфокиназу, который катализирует реакции [c.47]

Нуклеотидными предшественниками для синтеза РНК являются четыре рибонуклеозид-5 -трифосфа-та АТР, GTP, UTP и СТР (рис. 3.2). Многие РНК содержат модифицированные нуклеотиды, но изменения в основаниях и рибозных остатках происходят после полимеризации, т.е. посттранскрипционно. Тем не менее РНК-полимеразы могут использовать рибонуклеозид-5 -трифосфаты, отличные от указанных четырех, при условии, что модифицированные основания обладают способностью к спариванию, сравнимой с таковой для аденина, гуанина, цитозина и урацила. [c.118]

РНК-полимеразы катализируют реакцию присоединения З -ОН-группы нуклеотида, находящегося на растущем конце цепи, к а-фосфату следующего рибонуклеозид-5 -трифосфата (рис. 3.3). Многократное повторение этой реакции приводит к постепенному удлинению цепи РНК. Образование каждой новой фосфодиэфирной связи сопровождается высвобождением неорганического пирофосфата быстрый гидролиз пирофосфата до неорганического фосфата in vivo делает реакцию образования фосфодиэфирной связи энергетически выгодной. [c.118]

Четыре наиболее распространенных рибонуклеозид-5 -трифосфата АТР, СТР, GTP и DTP. Рибозилтрифосфат-ные остатки и соответствующие химические связи во всех случаях идентичны. [c.119]

Нри репликапии ДНК две пепи двойной спирали расплетаются и расходятся по мере того, как синтезируются новые пепи. Каждая родительская пепь служит матрицей для образования новой комплементарной цепи. Таким образом, репликация ДНК полуконсервативна - каждая дочерняя молекула получает одну цепь родительской молекулы ДНК. Репликация ДНК-сложный процесс, в осуществлении которого участвует много белков, в том числе ДНК-полимеразы трех типов и ДНК-лигаза. Активированные предшественники синтеза ДНК-четыре дезокси-рибонуклеозид-5 -трифосфаты. Новая цепь синтезируется в направлении 5 —>3. Этот синтез осуществляется путем нуклеофильной атаки внутреннего атома фосфора очередного дезоксинуклеозидтрифосфата 3 -гидроксильным концом цепи затравки. Самое важное состоит в том, что ДНК-по-лимераза катализирует образование фосфодиэфирной связи только в том случае, если основание очередного нуклеотида комплементарно основанию матричной цепи. Другими словами, ДНК-полимеразы — ферменты, направляемые матрицами. ДНК-полимеразы I, II и III обладают также 3 —>5 -экзонуклеазной активностью, которая увеличивает надежность репликации путем удаления не комплементарных остатков. ДНК-полимеразам I и Ш присуща, кроме того, 5 —>3 -нуклеазная активность, играющая важную роль в механизмах репликации и репарации ДНК. [c.43]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология