Дрожжевой экстракт

Казеин гидролизат с дрожжевым экстрактом Сухая среда [c.237]

Казеин гидролизат с дрожжевым экстрактом и агаром (сухая среда) [c.642]

Получение дрожжевого экстракта. 10 г высушенных дрожжей растирают в ступке с 30 мл бидистиллированной воды до получения однородной суспензии. Суспензию переливают в мерный цилиндр объемом 100 мл и помещают его в водяной термостат при 30° С. Содержимое цилиндра время от времени перемешивают стеклянной палочкой. Цилиндр оставляют в термостате до полного прекращения брожения углеводов, содержащихся в дрожжевых клетках. Об окончании бро- [c.29]

По окончании брожения суспензию дрожжей центрифугируют с охлаждением в течение 15—20 мин при 25 ООО g. Для освобождения дрожжевого экстракта от растворенного в нем углекислого газа центрифугат помещают в колбу Бунзена, стоящую во льду, добавляют к нему [c.30]

Дрожжевой экстракт готовят непосредственно перед опытом и хранят на льду , используют как препарат пируватдекарбоксилазы. [c.30]

Фракционирование ацетоном. Стакан с центрифугатом помещают в ацетоновую баню с температурой около —6° С, добавляют предварительно охлажденный до—5° С ацетон из расчета 50 мл на каждые 100 мл дрожжевого экстракта, поддерживая температуру смеси в стакане не выше —2° С. Центрифугируют при —2° С 5 мин при 18 ООО Я и к центрифугату, как и в первый раз, добавляют ацетон в количестве 55 мл на каждые 100 мл дрожжевого экстракта. Центрифугируют 5 мин при —2° С и 40 ООО осадок суспендируют в 40 мл холодной воды и диализуют в течение 3 ч против одного литра фосфатного буфера, перемешивая и 3—4 раза меняя буфер. [c.278]

Большинство гетеротрофных микроорганизмов хорошо развивается на среде с дрожжевым экстрактом или автолизатом, которые добавляют к синтетической среде. [c.53]

Источником углерода часто бывает меласса, источником биологически активных веществ — кукурузный, дрожжевой экстракты и др. Дозировки этих природных продуктов в среду необходимо регулировать в соответствии с оптимальными границами концентраций наиболее важных активных веществ для данной культуры. [c.54]

Мелассная, 4% по сахару Этанольная (1,5%) с добавлением 0.5% дрожжевого экстракта 18-20 8—9 50—53 70-75 0,23 0,12 75—80 55-65 87 62 [c.109]

При выращивании дрожжей на этанольной среде в лабораторном ферментаторе по приточной схеме с добавкой 0,5% дрожжевого экстракта достигнута концентрация сухой биомассы 8—9 г/л при выходе 70—75% от использованного субстрата. Полученные дрожжи имеют несколько пониженную по сравнению с дрожжами, выращенными на мелассе, активность выделения углекислого газа (т. е. бродильную активность), кроме того, эта-нольные дрожжи менее устойчивы при сушке (табл. 12). [c.109]

Пропионовую кислоту получают в анаэробных условиях методом глубинного культивирования (рис. 51). Используют среду, содержащую 2% глюкозы и источник органического азота, как, например, дрожжевой экстракт, а также соли молочной кислоты. Процесс идет в нейтральной среде (pH 6,8—7,2), при температуре 30°С, длится 7—12 сут. В процессе брожения накапливается про-пионовая, уксусная кислоты (5 1) и выделяется углекислый газ. Примерно 75% сахара потребляется на образование кислот, а 20% — на образование углекислого газа. [c.147]

Состав и приготовление питательных сред. Тиогликолевая среда индивидуального приготовления Панкреатического гидролизата казеина — 15,0 г Дрожжевого экстракта (10 %) — 5,0 г [c.331]

Дрожжевой экстракт. 1 кг прессованных дрожжей разводят в 1 л воды, смесь кипятят 1 ч, трижды от-фильтровывают через бумажный фильтр и стерилизуют при 115°С 30 мин. [c.62]

Около половины изученных видов не нуждаются в каких-либо органических соединениях. Для роста многих культур в атмосфере Н2 и СО2 требуется внесение в среду органических веществ, стимулирующих рост или абсолютно для него необходимых. Это могут быть некоторые витамины группы В, ацетат, пируват, сукцинат, отдельные аминокислоты, дрожжевой экстракт или компоненты неизвестного состава, содержащиеся в природных средах обитания. Так, щтаммы, выделенные из рубца жвачных животных, нуждаются в добавках рубцовой жидкости. Сложные органические соединения метанобразующие бактерии использовать не могут. [c.425]

Агар мясо-пептонный с кровяяо-дрожжевым экстрактом [c.9]

Бульон мясо-пептонный с кровяно-дрожжевым экстрактом [c.96]

Казеин 1-идролизат с дрожжевым экстрактом и с агаром (сухая среда) [c.237]

Бульон мясо-пептонный, лиофилизированный Бульон мясо-пептонный с кровяно-дрожжевым экстрактом, лиофилизированный Желатина питательная, лиофилизированная Казеин гидролизах с дрожжевым экстрактом (сухая среда) [c.642]

Среда Чапека (смесь сахарозы и неорганических солей) Экстракт дрожжевой Экстракт кровяно-дрожжевой [c.642]

Общая экспонируемая площадь покрытия 546,4 см . В контрольной ячейке трубчатый образец подвергали воздействию среды Постгейта, где отсутствовал дрожжевой экстракт, а лактат натрия был заменен эквивалентным по Ыа количеством сульфата натрия. Продолжительность опыта составляла 300 сут [8]. [c.28]

Микроорганизмы, продуцирующие глюкозоизомеризующие ферментные препараты, культивируются на питательных средах, в состав которых обязательно должны входить ксилансодержащие материалы — солома, пшеничные отруби, кукурузная кочерыжка и др. В качестве источника азота при культивировании применяют кукурузный экстракт, пептон мясной и дрожжевой экстракт. Глюкозоизомераза — металлофермент, поэтому в состав питательной среды входят добавки солей необходимых металлов (кобальта, магния). [c.136]

Реагент ССБ (сульфид-спиртовая барда) — многотоннаж- ый отход производства целлюлозы сульфатным способом. От-jteflbHHe партии сульфнт-спиртовой барды различаются по химическому составу, так 1 ак к ССБ относят такие вещества, как сульфидный щелок, литейный концентрат, литейный крепитель, -сульфид-дрожжевой экстракт и сульфид-дрожжевая бражка. В странах — членах СЭВ выпускается хлорированная ССБ под названием хлоркалисульфитолигнин. [c.32]

Определение пировиноградной кислоты. К исследуемому раствору пировиноградной кислоты приливают 0,1 объема ацетатного буфера (pH 5,0), к которому заранее добавляют 0,1 объема 0,5 М раствора КН2РО4. Перемешивают и 2 мл этого раствора помещают в основное пространство сосудика Варбурга (ставят не менее двух параллельных проб). В другие сосудики вносят по 2 мл бидистиллированной воды, подкисленной так же, как и исследуемый раствор (контрольные пробы). В боковые реторточки всех сосудиков помещают по 0,5 мл дрожжевого экстракта. Сосудики пришлифовывают к манометрам и погружают в термостатированную баню аппарата Варбурга, предварительно отрегулированную на 26° С. Краны манометров при этом должны быть открытыми, а сосудики полностью погружены в воду. Пускают качающий механизм. Через 5 мин (время, необходимое для выравнивания температуры) его останавливают, устанавливают жидкость в обоих коленах манометра на одном уровне (например, на уровне 100). Краны манометров закрывают и продолжают встряхивание, отмечая каждые 3 мин показания манометров до тех пор, пока выделение углекислого газа, не полностью удаленного из дрожжевого экстракта, станет небольшим и одинаковым в опытных и контрольных сосудиках. [c.30]

Длительное выделение углекислого газа возможно также, если в растворе йрисутствуют кетоглутаровая или щавелевоуксусная кислоты. Эти кислоты под влия- № ем дрожжевого экстракта декарбоксилируются, но со значительно меньшей ско- ростью. Если количество этих кислот небольшое, то их декарбоксилирование можно Исключить уменьшением количества дрожжевого экстракта. [c.31]

С помощью сифона отделяют нижний слой жидкости, представляющий собой дрожжевой экстракт. Его вначале центрифугируют (5000 60 мин), а затем фильтруют на воронке Бухнера большого диаметра через плотный слой мезги. Мезгу готовят следующим образом. Мелко нарезанную фильтровальную бумагу заливают бидистиллированной водой и гомогенизируют, после чего полученную кашицу уплотняют на воронке Бухнера, отсасывая воду, а затем промывают 5 мМ раствором ЭДТА. [c.257]

Для получения высококачественной питательной среды необходимо, чтобы она была биологически активной, т. е. содержала в своем составе, кроме углеводов, азота и фосфора, биологические катализаторы (витамины и ферменты) и ряд минеральных солей. При отсутствии биокатализаторов и минеральных солей рост и размножение уксуснокислых бактерий невозможен. Вот почему для проведения биохимического окисления D-сорбита в L- op-бозу необходимо к раствору очищенного сорбита добавлять биохимически активный субстрат в виде дрожжевого автолизата богатого витаминами, ферментами и минеральными солями. Дрожжевой экстракт может быть заменен экстрактом или концентратом, полученным из кукурузы или из барды винокуренных заводов. Однако необходимо отметить, что ни один из этих экстрактов по своей биологической активности не может конкурировать с экстрактом из дрожжей. [c.258]

Опсрытне спиртового брожения в дрожжевых экстрактах, что доказало возможность ферментативных реакций без участия целостных клеток [c.775]

Аэроб На тиосульфатной среде рост хороший с осаждением серы. На среде с добавкой дрожжевого экстракта и других органических веществ -скорость роста увели-чиваетси 4 1,9—7 [c.41]

В 1916 г. в опытах на животных было показано токсичное действие сырого яичного белка употребление печени или дрожжей снимало этот эффект. Фактор, предотвращающий развитие токсикоза, был назван витамином Н. Позже было установлено, что в дрожжевом экстракте печени и желтке куриного яйца содержится пищевой фактор, отличный от всех других известных к этому времени витаминов. Этот фактор стимулирует рост дрожжей и азотфиксирующих бактерий Rhizobium, в связи с чем он и получил название биотин (от греч. bios—жизнь), или коэнзим R. В 1940 г. было установлено, что все три названия (биотин, витамин Н и коэнзим R) относятся к одному и тому же химически индивидуальному соединению. Выделенное из сырого яичного белка вещество оказалось гликопротеином—белком основного характера, названным авидином этот белок обладает высоким сродством связывания с биотином с образованием нерастворимого в воде комплекса. Комплекс не подвергается расщеплению в пищеварительном тракте, поэтому биотин не всасывается, хотя и содержится в пищевых продуктах. [c.228]

Участие малонил-КоА-основного субстрата биосинтеза жирных кислот в образовании мевалоновой кислоты и различных полиизопреноидов показано для ряда биологических объектов печени голубя и крысы, молочной железы кролика, бесклеточных дрожжевых экстрактов. Этот путь биосинтеза мевалоновой кислоты отмечен преимущественно в цитозоле клеток печени. Существенную роль в образовании мевалоната в данном случае играет ГМГ-КоА-редуктаза, обнаруженная в растворимой фракции печени крысы и неидентичная микросомному ферменту по ряду кинетических и регуляторных свойств. Регуляция второго пути биосинтеза мевалоновой кислоты при ряде воздействий (голодание, кормление холестерином, введение поверхностно-активного вещества тритона VR-1339) отличается от ре- [c.399]

Среда 1а. Капустный агар с мглом. Капустный бульои — 900 мл, дрожжевой экстракт—100 мл, пептон—10 г, глюкоза — 20 г, ацетат натрия — 3,35 г, марганец сернокислый — 0,025 г, агар — 15—20 г. [c.198]

Экстремальные галофилы имеют сложные пищевые потребности. Для роста большинства видов в состав сред должны входить дрожжевой экстракт, пептон, гидролизат казеина, набор витаминов. Высокой требовательностью к среде отличаются представители родов Haloba terium и Halo o us. Основным источником энергии и углерода служат аминокислоты и углеводы. Метаболизм глюкозы осуществляется по модифицированному пути Энтнера—Дудорова, отличающемуся тем, что глюкоза без фосфорилирования окисляется в глюконовую кислоту. Последняя превращается в 2-кето-З-дезоксиглюконовую кислоту, которая расщепляется на два Сз-фрагмента пировиноградную кислоту и глицериновый альдегид. Из глицеринового альдегида в результате нескольких ферментативных преобразований также образуется пировиноградная кислота (рис. 105). Дальнейшее ее окисление происходит в замкнутом ЦТК. [c.420]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология