Иод, окрашивание липидов

Применение. В качестве красителя для флуоресцентной микроскопии для окрашивания липидов. [c.405]

В гистохимии для выявления липидов [3] и дегенерирующего миелина [4] и в электронной, микроскопии в качестве фиксатора [5—7] и для дополнитель ного окрашивания с целью контрастирования исследуемых липидных компонентов [8]. В аналитической химии в качестве реактива на адреналин и индикан и как окислитель в органическом синтезе. [c.303]

Применение. В микроскопии в качестве жирорастворимого красителя для окрашивания и выявления липидов для выявления связанных и маскированных липидов в мазках крови [2] при электрофорезе. Среди аналогичных красителей Судан черный С дает наилучшие результаты при выявлении фосфолипидов [Пирс, 275]. [c.375]

Применение. В микроскопии совместно с гематоксилином для окрашивания соединительной ткани в гистохимии для выявления методом хроматографии на бумаге липидов, содержащих холин [1] в электронной микроскопии в виде [c.424]

КРАХМАЛ — смесь полисахаридов, встречающихся в растениях в виде зерен с иодом дает характерное синее окрашивание белый порошок. К. — самый распространенный запасной углевод растений образуется в листьях в результате фотосинтеза и откладывается в корнях, клубнях и семенах в виде зорен, имеющих величину, форму и внутреннее строение, характерные для каждого вида растения. Крахмальные зерна неоднородны, помимо полисахаридов они содержат воду (10—20%) и в очень небольших количествах фосфаты, кремнезем, жирные к-ты, липиды и др. Полисахариды К. состоят, из остатков D-глюкозы в ее a-D-глюкопиранозной форме и отличаются степенью полимеризации и характером связей а-О-глюкопиранозных единиц. Полисахариды К. можно разделить па 2 главные фракции амилозу и амилопектин. (Схему строения их макромолекул см. иа рис. 1). [c.381]

По элюирующей способности растворители располагаются в следующем возрастающем порядке петролейный эфир, цикло-гексан, четыреххлористый углерод, толуол, бензол, хлороформ, диэтиловый эфир, этилацетат, ацетон, н-пропанол, этанол, метанол, вода. После пропускания растворителей пластинку высушивают на воздухе и идентифицируют липиды с помощью окрашивания специфическими реагентами. Для количественного определения фосфолипидов, разделенных тонкослойной хроматографией, используют спектрофотометрические методы. [c.228]

Липиды Окрашивание Суданом черным В [c.57]

Выявляемый липид Фиксация Тип среза Реакция Результаты (окрашивание) Специфичность Примечание [c.155]

Фосфолипиды окрашиваются в темно-синий цвет. Их можно идентифицировать, лишь сравнив с окрашиванием срезов, экстрагированных ацетоном и хлороформ — метанолом, последние не должны давать окрашивания, обусловленного присутствием липидов. [c.167]

С помощью жировых красителей выявляются только липиды. Окрашивание липидов так называемыми жировыми красителями, согласно Михаэлесу, представляет собой обычный процесс растворения, т. е. процесс физический, а не химический. В конечном счете окрашивание липидов обусловлено лучшей растворимостью красителя в липидах по сравнению с его растворимостью в исходном растворителе. Поскольку окрашивание жиров представляет собой физический процесс, избирательное окрашивание отдельных липидов в соответствии с их химическим составом лрактически невозможно. Для всех жировых красите- [c.149]

Липиды с эфирной связью по структуре очень сходны с триглицеридами и фосфолипидами. Различие заключается только в том, что рассматриваемая группа соединений вместо одной из ацильных групп содержит алкильную (—ОН) или алкенильную (—О—СН = СН—Н) группу [65]. Плазмалогены — липиды, содержащие алк-1-енольную группу, — были впервые обнаружены Фельгеном и Войтом в 1924 г. Разрабатывая методы гистологического окрашивания, эти авторы обнаружили, что при обработке срезов ткани кислотой происходит освобождение альдегидов. Последующие исследования показали, что альдегиды образуются в результате расщепления липидов, содержащих алкенильную группу [c.558]

В основе текстурирования белков посредством образования пленок, которое изучали Ву и Бэйтс [96], лежит способ изготовления продукта под названием юба. Молекулярные механизмы, участвующие в образовании белковой сети, те же, что и в случае текстурирования замораживанием. Когда воду удаляют с поверхности жидкости путем прогревания, то концентрация белков увеличивается локально и молекулы, денатурированные под действием температуры, могут взаимодействовать через гидрофобные участки и сульфгидрильные группы [39]. Таким путем на поверхности жидкости белки образуют сеть с включением капелек липидов и теряют способность к растворению. Эти регенерирующие пленки высушивают, затем соединяют вместе различными способами, получая куски продукта, которые после ароматизации и окрашивания можно вводить в пищевые полуфабрикаты и кулинарные изделия. Этот технологический процесс, первона-ально применявшийся к соевым белкам, распространили и на елки арахиса, семян хлопчатника и белки молока [95]. [c.559]

Неспецифическое связывание красителя при определении свободных фосфатных групп РНК замеряют на параллельных препаратах, обработанных перед окрашиванием РНК-азой. При определении фосфатных групп РНК, связанных с липидами, оно учитывается в препаратах, обработанных сначала липидорастворителями, затем РНК-азой (табл. 6). [c.171]

Применение. В микроскопии для окрашивания соединительной ткани [1] в виде .Э Уо-ного раствора в физиологическом растворе для непрямого прижизненного окрашивания по Карчагу и Паунцу [2] в гистохимии для окраски липидов по Лилли и Ласки [3], В микробиологии и бактериологии в качестве добавки к питательным средам. [c.42]

Применение. В микроскопии для прижизненного окрашивания, жира. В rtf- стологии и гистохимии в качестве жирорастворимого красителя для окраски липидов, в смеси с судаком III при последующем окрашивании гематоксилином Эрлиха для выявления липидов (нейтральных жиров, принимающих различные оттенки от оранжево-красного до оранжевого цвета, при этом ядра окрашиваются в синий цвет [1]. [c.374]

Араки [33] проводил денситометрию пятен липидов, опрысканных 5 %-ным этанольным раствором фосфомолибдата и прогретых в течение 5 мин при 180°С после такой обработки пятна можно наблюдать визуально. Несковиц [286] полностью минерализовал фосфолипиды, проводя опрыскивание смесью 1 мл 5 %-ного раствора молибдата аммония, 3 мл концентрированной азотной кислоты и 16 мл 65 %-ной хлорной кислоты, затем прокаливал накрытую стеклом пластинку в течение часа в печи, где за полчаса температура поднималась со 120 до 160°С. В последние 10 мин покровное стекло снимали. После прокаливания слой на пластинках опрыскивали смесью 2 мл 5 %-ного раствора молибдата аммония, 3 мл 65 %-ной хлорной кислоты и 5 мл 1 %-ного раствора аскорбиновой кислоты, и выдерживали час при 50°С под покровным стеклом. Далее пластинки промывали смесью парафинового углеводорода и эфира (1 1), слои при этом становились прозрачными, и их можно было фотометриро-вать. Ганглиозиды определяли [287] денситометрически окрашивание появлялось после опрыскивания слоя смесью резорцина и соляной кислоты. [c.101]

Липиды. Растереть материал, перенести в пробирку и вскипятить. Липиды отделяются в виде капелек масла. Провести окрашивание Суданом П1. Можно вместо этого приготовить эмульсию из тонко наструганного ядра ореха или других пищевых продуктов (которые могут быгь и окрашенными) и провести эмульсионную пробу. [c.151]

Рис. 8, Изучение распределения в культурах клеток СД-ТИОТ 1/2, обработанных (1 С)-ацегатом в течение 20 ч с помощью тонкослойной хроматографии. Fla 7—Ю-й день в культуры добавлялся 1 мкКи ацетата (43 Р и/моль), через 20 ч культуры промывались и фиксировались формалином. Липиды экстрагировались смесью метанол хлороформ вода (2 1 0,8) (Kates, 1972) и хроматографировались па силикагеле, как описано на рис. 7. Триглицеридный стандарт (оливковое масло) определялся с помощью окрашивания в парах Jj. определялся в сегментах i см, в результате чего выявлены два основных пика при значениях lij. 0,35 и 0,58 (0,55—0,60). Только фракция при 0,58 окрашивалась масляным краевым О.

Количество антисыворотки, вносимой. в канавки, следует подбирать таким образом, чтобы получались четкие дуги преципитации, не выходящие за пределы геля. Рисунок дуг зависит от соотношения концентраций антигена и антитела в геле. Если специфичность антисыворотки высока, для достижения удовлетворительных результато1В достаточно внести в каждую канавку по 150 мкл неразведенной антисыворотки. В некоторых случаях необходимо через несколько часов после начала реакции вновь наполнить канавку антнсывороткой. Другой способ — уменьшить антигенную нагрузку, если только это не отразится на образовании дуг преципитации. Использование цельной сывароики, особенно если она содержит гемоглобин или большое количество липидов, может затруднить отмывание геля от фонового окрашивания. Поэтому лучше использовать IgG-фракции сывороток. [c.221]

Пластину для ВЭТСХ с алюминиевой или, что предпочтительнее, стеклянной подложкой размечают карандашом образцы (минимальное количество 1 мкг) наносят на пластину, как описано выше. После хроматографии и высушивания пластину подвергают действию паров иода в течение 5 мин. При этой обработке все нейтральные липиды, фосфолипиды и гликолипиды окрашиваются в цвета от желтого до темно-коричневого. Приобретаемая окраска нестабильна. Хроматограмму можно также опрыскать под тягой реагентом А, высушить и опрыскать реагентом Б. При нагревании хроматограммы при 100 °С в течение 5 мин развивается окраска от розовой до пурпурной. Этот метод окрашивания весьма чувствителен при его использовании выявляются все углеводы. Ганглизоиды, содержащие сиаловую кислоту, окрашиваются в голубой цвет, после того как опрысканную реагентом В хроматограмму выдерживают 5 мин при 110°С. При нагревании хроматограмму следует накрыть стеклянной пластиной, для того чтобы соляная кислота не испарилась полностью. Нейтральные гликолипиды окрашиваются этим реагентом в светло-серый цвет. [c.171]

Для выявления липидов в клетках и тканях наиболее пригодны окрашивание Суданом черным В и флуоресцентный метод с бензпиреном. Материал, дающий положительную реакцию в любой из этих проб, содержит липиды. Для выделения фосфолипидов рекомендуется проба с кислым гематеином в сочетании, с бромированием. [c.62]

Об этих трудностях надо помнить при использовании методов экстракции для гистохимического изучшия отдельных липидов. Методы экстракции липидов в сочетании с окрапшванием липидов преследуют две цели а) контроль специфичности окрашивания, б) изучение свойств жировых веществ на основании различий в их растворимости. В гистохимической практике выявление липидов проводится после обработки нативного материала (в лучшем случае это криостатные срезы) различными жировыми растворителями. Экстракцию следует проводить в горячем растворителе в колбе с обратным холодильником или в аппарате Сокслета. [c.147]

К этой категории принадлежит метод выявления нейтральных и кислых липидов с использованием нильского синего. Двойственное его поведение при окрашивании водными растворами объясняется следующим образом не-диссоциировщшый краситель (нильский красный) растворяется в липидах, а диссоциированный (нильский синий), наоборот, в липидах не растворяется, но связывается с кислыми группами липидов и различными друпши компонентами ткани посредством электростатических сил. Метод окрашивания нильским синим обладает низкой чувствительностью, причем особенно синий компонент его склонен к неспецифическим реакциям. [c.151]

Срезы, не обработанные раствором сулемы, должны оставаться неокрашенными. Появление красноватого окрашивания—признак псевдоплазмалевой реакции, обусловленной окислением ненасьпценных липидов. Выс-во ождаемые в результате гидролиза липиды блокируются при помощи соответствующих реакций сочетания. Реак-тта Шиффа можно заменить фенилгидразином. [c.171]

На основании данных электронной микроскопии высокого разрешения, негативного окрашивания внутренней мембраны митохондрии и последующей их реконструкции, дифракции рентгеновских лучей на липидах со сравнительно большим содержанием воды в 60-х годах появился ряд моделей, таких, как модель миелиновой оболочки Дж. Фине-ана, модели Ф. Шестранда, Дж. Лаци, Д. Грина и Дж. Пердью, в которых предполагалось субъединичное строение мембран (см. рис. 1). Эти модели представляют интерес только с точки зрения истории развития идей о структуре мембраны. [c.36]

Второй способ определения количества липидов основан на использовании фосфованилинового реактива. Принцип метода основан на том, что липиды после гидролиза серной кислоты взаимодействуют с фосфованилиновым реактивом с образованием красного окрашивания. Для этого к 0,02 мл раствора липидов добавляют 1,5 мл концентрированной серной кислоты, такое же количество кислоты приливают к 0,02 мл эталонного раствора. Содержимое пробирок выдерживают иа кипящей водяной бане 15 мин. Потом содержимое пробирок охлаждают в токе холодной воды и отмеривают в другие сухие пробирки гидролизат и проводят определение [c.277]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология