Культура микроорганизмов

Разнообразие родов и видов бактерий обусловливает разнообразие путей метаболизма утилизируемых веществ. Определение какого-либо соединения в качестве неразлагаемого подразумевает прежде всего недостаток информации о микроорганизмах, способных использовать это соединение. Для повышения эффективности биодеградации целесообразно использовать смещанные культуры микроорганизмов. В то же время один и тот же организм способен деградировать сразу несколько близкородственных соединений. Процесс природной селекции подходящих микроорганизмов может быть дополнен искусственной селекцией, например, с использованием селекционного реактора. Эта система в процессе своего функционирования создает благоприятные условия для роста культуры, обладающей нужным набором метаболических активностей. Посевным материалом для реактора может быть биомасса активного ила с заводов по переработке городских отходов [21]. [c.133]

Крахмал, растворенный при разваривании зерна и картофеля, гидролизуют (осахаривают) амилолитическими ферментами зернового солода или культур микроорганизмов, преимущественно плесневых грибов. [c.113]

ВЫРАЩИВАНИЕ КУЛЬТУР МИКРООРГАНИЗМОВ-ПРОДУЦЕНТОВ ФЕРМЕНТОВ — ПОВЕРХНОСТНЫМ СПОСОБОМ [c.77]

Составы аминокислот, полученных в результате жизнедеятельности дрожжевых грибов, развивающихся на нормальных алканах нефтяного происхождения и на сахарах [22], а также на другом сырье, содержащем нормальные алканы, оказались близкими, а экономика прессов сопоставима [22]. В настоящее время основным сырьем служат нефтяные нормальные алканы. Процессы ферментации могут различаться по используемой культуре микроорганизмов, аппаратурному оформлению, режиму, хотя принципиально они близки. Так, во Франции работает промышленная установка производительностью 50 т биомассы в сутки с использованием в качестве сырья тяжелого газойля, содержащего 10 % алканов [23, 24]. Английская фирма Бритиш Петролеум использовала две схемы производства кормовых протеинов из очищенных нормальных алканов и из алканов нефтяного газойля [26]. [c.326]

КУЛЬТУРА МИКРООРГАНИЗМОВ — микроорганизмы, выращиваемые искусственно на специальной питательной среде. [c.401]

Вслед за работа.ми Пастера появились труды немецкого ученого микробиолога Роберта Коха (1843—1910). Ему окончательно удалось доказать, что заразные болезни вызываются различными болезнетворными бактериями. Кроме того, он указал приемы борьбы с распространением этих бактерий, которые легли в основу так называемой дезинфекции. Кохом были открыты возбудители туберкулеза, холеры, введены в практику микробиологических исследований плотные питательные среды, при помощи которых можно получать чистые культуры микроорганизмов. [c.240]

Глубинную культуру микроорганизмов выращивают на жидкой питательной среде при энергичной аэрации в герметически закрытых аппаратах и в стерильных условиях. Процесс полностью механизирован. Стерильность глубинной культуры микроорганизма — продуцента ферментов положительно отражается на результатах сбраживания сусла дрожжами. [c.152]

Способность ПАВ к биологическому разложению в значительной степени зависит от их химической структуры. На практике степень разложения ПАВ определяют как в природных, так и в экспериментальных условиях. В последнем случае (биоразложение ПАВ в сточных водах), как правило, источником микроорганизмов служит активный ил. Большой интерес представляют исследования разложения ПАВ чистыми культурами микроорганизмов. При этом разложение П.- В идет по типу с/.- н Р- окисления, деструкции бензольного кольца. Серосодержащие ПАВ могут разрушаться микроорганизмами путе.м разрыва связи С-5 или сульфатно-эфирной связи. [c.93]

Величину разности (С —С ) фактически равной = 1,, учитывая, что поступающий в реактор жидкостный поток предварительно неаэрирован. Уравнения модели описывают процесс ферментации аэробной культуры микроорганизмов в реакторе идеального перемешивания, когда концентрация растворенного в среде кислорода влияет на скорость роста клеток. [c.140]

Пример расчета. Определить расход сырья на 1000 дал спирта, еслн перерабатывается пшеница крахмалистостью 50% по непрерывной схеме с непрерывно-поточным брожением для осахаривания с охлаждением массы под вакуумом используется глубинная культура микроорганизмов. [c.154]

Степанова Н. В. Математические модели непрерывной культуры микроорганизмов, распределенных по возрастам и размерам,— В кн, Математические модели в экологии. Горький, 1980, с, 95—113, [c.275]

Расход глубинной культуры микроорганизмов, а также концентрированных препаратов на осахаривание исчисляется из их активности. [c.170]

В качестве тест-культур микроорганизмов нужно выбирать штаммы с высокой ферментативной активностью, способные расщеплять соответствующий субстрат с минимальной антагонистической активностью в отношении сочетаемых видов. Виды, специфичные для конкретного материала, нужно применять в виде чистых культур [32, с. 181]. [c.75]

Микробиологи выращивают культуру микроорганизмов на агаровых средах. Практически это застывшая при комнатной температуре вода — твердый агаровый гель можно получить из 1 л воды и всего 1 г агара. При всей гигантской всеядности микроорганизмов в целом (некоторые из них разрушают бетон и резину, утилизируют молекулярный водород, живут в серной кислоте и т. д.) лишь немногие из них способны переваривать агар. Агар — тоже полисахарид. Его выделяют из морских водорослей, которым он и подобные ему полисахариды обеспечивают чрезвычайно прихотливый набор физико-ме-ханических и фи-зико-химических характеристик, необходимых растению для выживания в столь своеобразной среде, как прибойная зона Мирового океана. [c.5]

Иэ испарительных камер масса с температурой 60—61° С по спускным трубам поступает в осахариватели 34. Высота спускной трубы над поверхностью охлажденной массы в осахаривателях должна быть не менее 9,5—10,0 м. Одновременно в осахариватели из сборников 32 через дозаторы поступает осахаривающий материал солодовое молоко, суспензия поверхностных культур плесневых грибов, препараты глубинных культур микроорганизмов. При двухпоточном осахаривании /з осахаривающего материала подается, например, иа поток № 1 через один осахариватель 34, а /з — на пото № 2 через второй осахариватель 34. Продолжительность осахаривания в каждом осахаривателе при температуре 56—59° С составляет не менее 10—15 мин. [c.116]

Глубинные культуры микроорганизмов и концентрированные ферментные препараты [c.155]

При переработке крахмалсодержащего сырья норма расхода глубинных культур микроорганизмов или концентрированных ферментных препаратов исчисляется в единицах АС (активности а-амилазы) и ГлА (глюкоамилазной активности), затрачиваемых на осахаривание 1 т перерабатываемого крахмала, включая крахмал осахаривающих материалов. Норма расхода ОМ устанавливается в зависимости от выбранной продолжительности брожения (табл. 48— 50), при этом даже в случае ее сокращения (48 ч и менее) сохраняются все технико-экономические показатели процесса, включая надбавку на выход спирта (0,8 дал из 1 т крахмала при трехсуточном брожении), и величина остаточных несброженных углеводов бражки. [c.155]

В настоящее время наиболее прогрессивным признан проточный метод культивирования микроорганизмов, который обеспечивает непрерывную подачу в ферментер как питательной среды, так и посевного материала. Размножение микроорганизмов и биосинтез фермента регулируют при использовании этого метода по мере поступления питательной смеси в ферментер. Такой ферментер представляет собой вращающийся трубкообразный реактор, через один конец которого в него поступает питательная среда и культура микроорганизмов, а из другого — выводятся ферменты, продукты жизнедеятельности и бактериальная масса. Основное достоинство метода — возможность длительное время поддерживать в автоматическом режиме рост культуры микроорганизма. Например, культура ацетонобутиловых бактерий находилась в таком реакторе в состоянии непрерывного размножения в течение 200 суток (И.Д. Иерусалимский с сотр., 1986). [c.78]

Ниже представлены опытные данные [I, с. 18] по ультрафнльтрации культуры микроорганизмов, выращенной при глубинном способе культивирования [c.287]

Поскольку в процессе биодеградации происходит исчезновение главным образом реликтовых углеводородов, то особо следует обсудить неизменность состава стеранов и гопанов в этих условиях. По этому вопросу в литературе пока еще нет единого мнения. Ясно только одно, что углеводороды эти достаточно устойчивы к биологическому воздействию. Так, в работах [16, 20, 22] было найдено, что стераны и гопаны в процессе биологического воздействия не меняются и что молекулярно-массовое распределение этих углеводородов в нефтях различного химического типа может служить дополнительным критерием генетического единства данных нефтей. С другой стороны, Зейферт на основании геохимических исследований природных нефтей утверждал [25], что стераны и гопаны подвержены биологическим воздействиям. В одном из докладов состоявшегося в 1981 г. 10-го Международного конгресса по органической геохимии показано, что существуют особо активные культуры микроорганизмов, которые уничтожают также стераны и гопаны [27]. [c.245]

Рост произ-ва ПАВ привел к появлению крупных предприятий, являющихся локальными источниками загрязнения воды. Высококонцентрир. сточные воды этих предприятий м. б. очищены микробиол. методом, основанным на использовании высокоактивных культур микроорганизмов. Получены штаммы бактерий, разрушающих алкилсульфаты, алкилсульфонаты, алкилбензолсульфонаты, сульфоэтоксилаты и др. Идентифицированы промежут. продукты распада, к-рые являются аналогами прир. в-в, нетоксичны и не оказывают неблагоприятного воздействия на окружающую среду. Один из важных результатов бактериального расщепления-отсутствие среди промежут. продуктов распада в-в с явно выраженной дифильностью молекул. Метод дал положит. результаты для сточных вод, содержащих 500 мг/л ПАВ. Эффективность очистки составила 95-97% за время не более 12 ч. Среди грамотрицат. бактерий обнаружены микроорганизмы (деструкторы), к-рые усваивают ПАВ как питат. субстрат. [c.589]

Несмотря на плохую биоразлагаемость ПХД и их производных, ведутся работы по биологическому обезвреживанию высокотоксичных ОСМ. При инкубации в культуре микроорганизмов биоразложение смесей MOHO-, ди- и тетрахлордифенилов происходит по реакции 1-го порядка. Ее скорость зависит от источника углерода, используемого для поддержания жизнедеятельности культуры. [c.362]

СМС очень медленно разлагаются, вредные результаты их воздействия на природу и живые организмы непредсказуемы. Перевод ПАВ в пену, адсобция активным углем, использованием ионообменных смол, нейтрализация катионактивными веществами и др. недостаточно эффективны и очень дороги. Поэтому предпочтительна очистка сточных вод от ПАВ в отстойниках и в естественных условиях (в водоемах) путем биологического окисления под действием гетеротрофных бактерий, которые входят в состав активного ила. Процесс идет до превращения органических веществ в углекислый газ и воду. При биохимической очистке окисление ведется в присутствии ферментов. Микробиологический метод основан на использовании высокоактивных культур микроорганизмов. Получены штаммы бактерий, разрушающих алкилсульфаты, алкилсульфонаты, алкилбензолсульфо-наты и др. [c.605]

Стадия подготовки засевной биомассы I обеспечивает подачу в производственные биореакторы необходимого количества посевного материала — активной культуры микроорганизмов, выращенной в периодически или непрерывно работающих инокуляторах. На стадии подготовки минеральной питательной среды а осуществляется растворение минеральных солей, фильтрация растворов и доведение концентраций элементов в них до заданных соотношений. В качестве минеральных источников питания используют сернокислые соли калия, магния, железа, аммофос, сульфат аммония, а также микроэлементы — соли марганца, цинка, железа и меди. Подготовка углеводородного субстрата (стадия III) включает процессы подогрева, перемешивания жидких парафинов и их дозированной подачи в производственные биореакторы. [c.14]

Подготовленное сырье освобождают в декантаторе от взвешенных частиц и непрерывно подают в нижнюю часть ферментера (метантенка) емкостью 4200 м . Одновременно в ферментер поступает посевной материал культуры микроорганизмов, предварительно выращенный в специальных аппаратах. Для выращивания продуцента требуются облигатно анаэробные условия, ибо даже следы кислорода подавляют рост бактерий. При создании анаэробных условий в среду подают диоксид углерода или газы, вьщеляющиеся в процессе ферментации. Ежедневно из метантенка отбирают 25 — 30 % объема среды. Продукт ферментации стабилизируют, подкисляя соляной или фосфорной кислотой до pH 6,3 —6,5 и добавляя 0,2—0,25 % сульфита натрия, что предотвращает разрушение витамина при тепловой обработке, особенно существенное в щелочной среде. В дальнейшем отобранная часть культуральной жидкости дегазируется, упаривается в вакууме кон- [c.56]

Группа жирных кислот охватывает моно-, поли- и оксикарбоновые кислоты, обладающие антибиотическим действием. Группа полиацетилено-вых антибиотиков выделена из культур микроорганизмов и из высших растений интересным является тот факт, что подобные (ацетиленовые) соединения ранее не были обнаружены в растениях и получались лишь син- [c.687]

Вьщеление и очистка фермента как из культуры микроорганизма (выращенного любьпл способом), так и из других природных источников весьма трудоемкая и дорогостоящая процедура, поэтому, если фермент можно использовать в виде неочищенно- [c.78]

Из глубинных культур микроорганизмов, применяемых в спиртовом производстве в настоящее время, в основном используются Глюкаваморин Гх-466 в качестве источника глюкоамилазы и Амило-мезентерин Гх-467 в качестве источника а-амилазы. [c.18]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология