Липиды выделение неполярных липидов

Фосс-лет и др.). При исследовании указанных методов извлекаются главным образом свободные липиды. Прочносвязанные липиды не экстрагируются как из продуктов растительного, так и животного происхождения. В связи с этим, а также ввиду значительного окисления липидов во время выделения были предприняты поиски более эффективных способов экстракции. Установили, что достаточно полная экстракция липидов может быть осуществлена, если применять смесь полярного растворителя и неполярного или слабополярного. Обычно используемый в качестве полярного компонента спирт ослабляет прочность комплекса липиды — белки, что обеспечивает полноту экстракции неполярным растворителем. Эффективность экстракции в значительной мере зависит от степени разрушения клеточной структуры исследуемых объектов. Используют гидролиз, разрушение в кавитационной мельнице, измельчение продуктов, предварительно замороженных жидким азотом. [c.212]

Для исследовательских и практических целей липиды обычно получают путем выделения из доступных природных источников. Одиако во многих случаях целесообразным илн необходимым оказывается химический сиитез. Прежде всего, именно синтез обеспечивает окончательное доказательство строения новых типов липидных веществ, изолируемых из животных, растительных или микробных организмов. Дал , развитие мембранных исследований, и в особенности физико-химии мембран, поставило иа повестку дня проблемы препаративного получения многих мембранных липидов с заранее заданной структурой полярных и неполярных участков молекулы. И иакоиец, для изучения тонких механизмов функционирования мембранных систем с помощью молекуляриых зондов понадобились разнообразные модифицированные липиды, содержащие изотопные, спиновые и флуоресцентные метки, а также различные фотоактивируемые группировки. Все это привело к тому, что в настоящее время химический синтез липидов является хорошо разработанной областью биоорганической химии. [c.540]

Выделение неполярных липидов различных классов [c.137]

Технологический процесс получения микробных липидов в отличие от получения белковых веществ обязательно включает стадию выделения липидов из клеточной биомассы методом экстракции в неполярном растворителе (обычно бензине или эфире). При этом одновременно получаются два готовых продукта микробный жир (биожир) и обезжиренный белковый препарат (биошрот). [c.100]

И неполярные липиды (содержание последних довольно велико). Далее эфиром и смесями эфира с ацетоном (с возрастающей долей ацетона) вымывают гликозиды каротиноидов. В этих условиях фосфолипиды остаются адсорбированными в колонке. Гликозиды каротиноидов, выделенные из микобактерий, обычна этерифицируются различными жирными кислотами по одной из гидроксильных групп ГЛЮКОЗЫ. Поэтому эти эфиры необходимо омылить этанольным раствором гидроксида калия. Очень важной стадией является ацетилирование гликозидов уксусным ан-гидридом и пиридином. При этом сахарная, т. е. гидрофильная, часть молекулы становится липофильной и образующиеся ацетилированные гликозиды лучше поддаются дальнейшему разделению. Выделенные фракции повторно хроматографируют на силикагеле, однако полученные в результате фракции все-таки представляют собой смеси трех или более компонентов. Получить фракции индивидуальных компонентов можно, хроматографируя эти смеси на оксиде магния (колоночная или тонкослойная хроматография). В табл. 4.12 приведены все идентифицированные гликозиды каротиноидов, выделенные из микобактерий, а также их величины полученные на тонких слоях оксида магния элюированием смесью петролейный эфир (т. кип. 60—70 °С)—бензол — метанол (40 10 1). Подобную же смесь используют и в колоночной хроматографии. Колонку заполняют смесью (1 1) оксида магния и кизельгура (фирмы Мегск, Дармштадт, ФРГ). Как видно из табл. 4.12, каждая дополнительная сопряженная двойная связь в молекуле уменьшает Я), а циклизация молекулы увеличивает ее. Соединения В, Д и 3, перемещающиеся при хроматографии на силикагеле, как одна зона, легко разделяются этим методом. Различные типы ацетилированных гидроксильных групп (в соединениях А, В, Г я Ж) или карбонильная группа приводят к различному по величине замедлению движения хроматографируемого вещества. Очевидно, характер гликозидной связи также существенно влияет на величину [c.209]

Упрощенный метод выделения цереброзидов из плазмы крови [10] включает хроматографию на колонках с кремневой кислотой, активированной по меньшей мере в течение 12 ч при 80 °С. Разделяемую смесь наносят на колонку в виде раствора в хлороформе. Неполярные липиды элюируются хлороформом, цереброзиды — смесью ацетон — метанол (9 1 по объему), а фосфолипиды — метанолом. [c.345]

Такой способ фракционирования можно сочетать с выделением пробы. Например, при исследовании липидных фракций одноклеточных организмов первой стадией является деструкция клетки, обычно выполняемая под давлением или с помощью ультразвука. В любом случае разрушаемые клетки помещают в метанольный или водный раствор. Раствор сильно подщелачивают (10%-ный раствор гидроксида натрия) и оставляют на ночь. На этой стадии большинство эфирных связей (триглицериды) гидролизуются, а свободные кислоты, конечно, полностью нейтрализуются сильным основанием. Экстракция таким неполярным растворителем, как -гептан, приводит к удалению только так называемых не омыляемых липидов (стеринов), не затрагивая заметную часть основы клеточного вещества. Большие массы остатков органического вещества клетки могут создавать затруднения при экстракции, особенно после гидролиза. Поэтому перед экстракцией удобно проводить чисто механическое разделение — удалять остатки органических веществ центрифугированием. Фракция, содержащая жирные кислоты, может быть получена подкислением водной фазы с последующей второй экстракцией гептаном. [c.516]

Вейрман [1] опубликовал хороший обзор классических методик выделения и концентрирования летучих компонентов. Несмотря на то что" в этом обзоре основное внимание он уделил веществам, определяющим запах пищевых продуктов, многие из высказанных им идей применимы и к другим системам как биологической, так и небиологической природы. Он считает, что полное содержание летучих веществ в материале связано с составом выделяющихся из него летучих веществ, который зависит от распределения этих веществ внутри материала и от его физического состояния. Этот вывод иллюстрирует рис. 11.1. В верхней части схемы, приведенной на этом рисунке, показаны две водные пробы биологического происхождения, которые содержат полярные и неполярные летучие компоненты, нелетучие нерастворимые липиды, а также нелетучие вещества, среди которых могут быть сахара, соли, аминокислоты и белки. Кроме того, продукт, приведенный в левой части рис. 11.1, содержит частицы твердого нерастворимого материала, и, как показано на рисунке, некоторые компоненты летучие и нелетучие) адсорбированы на этих частицах. В том случае, когда имеется избыток липидов, как, например, в продукте в правой части рисунка, считают, что все неполярные летучие вещества растворены в липидных шариках. С другой стороны, в продукте в левой части рисунка имеется ограниченное количество липидов, и некоторое количество неполяр [c.137]

Липиды (от греч. lipos — жир) — соединения, имеющие длинные углеводородные цепи или бензольные кольца, т. е. неполярные и гидрофобные структуры. Поэтому липиды нерастворимы в воде. Функции липидов разнообразны. Многие из них используются в организме для накопления энергии. К таковым относятся жиры, т. е. соединения трехатомного спирта (глицерина) и жирных кислот. Организмы могут переводить углеводы в жиры и накапливать в этой форме запасный энергетический материал. При окислении жиров образуются углекислый газ и вода с выделением 9,5 большой калории на 1 г жира. [c.41]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология