Лактоза рост соИ

Культуральные и физиологические признаки характер роста на мясо-пептонном бульоне, рост на косом мясо-пептонном агаре и специальном агаре, рост на мясо-пептонной желатине при посеве уколом на молочных и картофельных средах способность образовывать индол тип колоний (окраска, контуры, строение края и др.) отнощение бактерий к различным источникам углерода (глюкозе, лактозе, мальтозе, сахарозе, манниту, крахмалу, фенолу, различным альдегидам, спиртам и другим органическим соединениям), к различным источникам азота (пептону, аспарагину, мочевине, азоту аммонийному, нитратному) определяется также денитрифицирующая активность (восстановление нитратов до нитритов или молекулярного азота) отнощение к кислороду. [c.66]

В качестве углеводного или углеводородного сырья — субстрата для роста микроорганизмов — используют растительные, пищевые, непищевые (природные) и синтетические соединения углерода. В том числе углеводы — глюкозу, лактозу, крахмал, сахарозу содержащие углеводы вещества — отходы растительного сырья (кукурузная кочерыжка, подсолнечная лузга, виноградная лоза, рисовая, хлопковая шелуха и др.) отходы пищевых производств — мелассу, последрожжевую барду спиртового производства, молочную сыворотку и др. этиловый, метиловый спирты, природный газ, метан, жидкие углеводороды нефти, фракций Сю — Сгз, нефтяные дистилляты с температурой кипения 300—380 °С. [c.45]

Особенностями конструктивного метаболизма гомоферментативных молочнокислых бактерий являются слабо развитые биосинтетические способности, что выражается в большой зависимости их роста от наличия в питательной среде готовых органических веществ (аминокислоты, витамины группы В, пурины, пиримидины). В качестве источника углерода молочнокислые бактерии используют лактозу (молочный сахар) или мальтозу (растительный сахар, образующийся при гидролизе крахмала). Могут они также использовать некоторые пентозы, сахароспирты и органические кислоты. Из всех известных непатогенных прокариот молочнокислые бактерии отличаются наибольшей требовательностью к субстрату. Зависимость этих бактерий от наличия готовых органических веществ среды указывает на примитивность в целом их конструктивного метаболизма. [c.217]

Микробы, разлагающие мочевину (протей, палочка Моргана, некоторые виды кишечной и паракишечной палочки), создают щелочную реакцию и нейтрализуют кислоту, образующуюся при расщеплении глюкозы, и как скошенная поверхность, так и столбик среды окрашиваются в красно-оранжевый или оранжевый цвет. При росте микробов, разлагающих лактозу и глюкозу (кишечная палочка), образуется кислая реакция, и вся среда (столбик и скошенная поверхность) окрашивается в синий цвет. [c.189]

Убедиться в снособности бактерий ферментировать лактозу до кислоты и газа при 37°С путем посева в полужидкую среду с лактозой необходимо в следующих случаях 1) если колонии не имеют типичного вида (слишком густой посев, ползучий рост распространяется Г1Н всю поверхность фильтра, мешают близко расположенные колонии посторонних бактерий) 2) при отсутствии достаточного опыта работы 3) при арбитражных обстоятельствах. [c.134]

Лактоза [268] в фосфатно-цитратных буферных растворах с pH 5,45 дает волну, 1пр которой повышается с ростом pH, а ./, [c.202]

Проведем другой опыт. Поместим те же бактерии в питательный раствор, содержащий и лактозу, и глюкозу. Теперь рост начинается незамедлительно (рис. 132) сначала разлагается глюкоза, поскольку потребные для этого ферменты (конститутивные ) уже имелись заранее. После того как будет потреблена вся глюкоза, на кривой роста появится плато. Корепрессор теперь исчез, начинает действовать индуктор (лактоза). Инактивированный репрессор освобождает оперон, синтезируются ферменты, они начинают разлагать лактозу в связи с этим наблюдается новый цикл роста. Таким образом, и здесь есть латентный период, который наступает после истощения в среде запасов глюкозы. [c.284]

Известно большое количество видов дрожжей, усваивающих лактозу различными путями и вовсе не усваивающих лактозу, но дающих обильный рост на молочной сыворотке. [c.224]

Состав питательной среды. У различных микроорганизмов, способных расти на молочной сыворотке, наблюдаются различные пути усвоения питательных веществ. Часть микроорганизмов ассимилируют лактозу окислением, другие — окислением и брожением. Часто встречаются микроорганизмы, дающие хороший рост на сыворотке, но не усваивающие лактозу. Такие различия в обмене веществ у микроорганизмов на молочной сыворотке связаны с различными ферментными системами у них. [c.224]

Увеличение содержания в среде лактозы (до 12—13%) вызывает пропорциональное повышение концентрации биомассы в среде, но если концентрация лактозы достигает 15—18%, то наблюдается торможение прироста дрожжей, а при содержании лактозы 20% рост дрожжей полностью прекращается. [c.225]

Изучение индукции р-галактозидазы у Е. соИ позволило установить, что рост клеток на среде с лактозой происходит не в результате отбора мутантов, у которых способность использовать лактозу есть следствие мутации. Способностью синтезировать этот фермент обладают все клетки. Было также показано, что в процессе индукции происходит не активирование уже имеющегося в клетках фермента Р-галактозидазы, а его синтез de novo из аминокислот. [c.121]

Так как антибиотические вещества являются вторичными ме-тоболитами, то биосинтез их сопряжен с переходом культуры продуцента в идиофазу. Следовательно, здесь целесообразно лимитирование роста продуцента. Таким лимитирующим ингредиентом (фактором) при биосинтезе пенициллина выступает глюкоза, тогда как при биосинтезе антибиотиков стрептомицетами — фосфаты. Все это важно при "компановке" питательных сред, подкормке штамма - продуцента в процессе биосинтеза антибиотика. Так, среда для продукции пенициллина (она же пригодна для накопления инокулюма) включает глюкозу — 1,5%, лактозу — 5% (лактоза снимает катаболитную репрессию глюкозы), аммония сульфат и фосфаты — 0,5—1%, кукурузный экстракт — 2—3%, предшественники антибиотика — фенокси- или фенилуксусная кислота — 0,3—0,6%, мел — 0,5-1%, пеногаситель — 0,5—1% температуру ферментации поддерживают на уровне 22—26°С при pH от 5,0 до 7,5 и аэрации 1 м воздуха на 1 м среды в 1 минуту продолжительность ферментации — 4 суток. [c.441]

Внешне блочность проявляется в образовании сростков двух и более кристаллов, несколько разориентированых друг относительно друга. В качестве примеров кристаллов, поражаемых этим дефектом, можно назвать кроме желтой кровяной соли (рис. 1-35) хлористый натрий, сорбитгексаацетат. У кристаллов без центра симметрии (кварц, лактоза) блокование сопровождается своеобразным закручиванием кристаллов. Как уже говорилось ( 1.8), расщепляться при росте могут при неблагоприятных условиях любые вещества, однако склонность к расщеплению тем выше, чем ближе к кинетическому режиму рост данного вещества. [c.129]

На 3-й день исследования для идентификации чистой культуры у нее выявляют оксидазную активность и делают посев на среды с углеводами (табл. 2.4). Менингококки обладают оксидазой, ферментируют глюкозу и мальтозу с образованием кислоты, лактозу, сахарозу и фруктозу не ферментируют, полисахарид из сахарозы не образуют, не растут в присутствии 0,2 % желчи. Для выявления оксидазной активности на кусочек фильтровальной бумаги, смоченной каплей свежеприготовленного 1%-го раствора солянокислого парадиэтилфенилендиамина, петлей наносят культуру менингококков. Культуры, обладающие оксидазной активностью, в течение 30 — 60 с вызывают вначале порозовение, а затем почернение бумаги с реактивом. Для определения способности образовывать полисахарид культуры нейссерий засевают на бескрахмальную среду с 1 % сахарозы и инкубируют при 37 °С в течение 24 — 48 ч, после чего на рост наносят каплю йодного раствора Люголя. В случае образования полисахарида сразу развивается буро-лиловое окрашивание. [c.118]

Бактерия встречается в кишечнике больных личинок пчел в виде палочки длиной 0,5—2 мк. Спор не образует. Растет на обычных бактериологических средах, образуя плотные, с трудом суспендируемые в воде, серые, просвечивающиеся колонии. Растет также на среде, применяемой для культивирования S. pluton. На мясопептонном агаре образует мелкие, гладкие, сероватые колонии, вокруг которых позднее появляется более светлая зона. В бульоне слабый рост наблюдается через 4 дня в виде легкого помутнения и осадка. Желатин не разжижает, лакмусовое молоко не изменяет, образует кислоту из глюкозы, а фруктозу и лактозу не использует. Кровяной агар не гемолизирует. Реакция на катал азу отрицательная или очень слабая. Реакция с метиленовой красной, Воже—Проскауера и индоловый тест — отрицательные. [c.244]

Характерными признаками возбудителя сапа являются потребность в присутствии глицерина для роста, отсутствие подвижности, способности расти при 42 °С и разжижать желатину, для возбудителя мелиоидоза — биполярность при окраске методом Грама и другими антилиновыми красителями, гемолиз кроличьих эритроцитов на 2%-м кровяном агаре, свертывание молока, окисление лактозы, мальтозы, ксилозы и других сахаров. [c.133]

На 2-й день исследования материал со среды накопления пересевают на чащки с плотными средами (Плоскирева, Эндо, МакКонки) для выделения чистой культуры. На дифференциальнодиагностических средах через 18 —24 ч инкубации обнаруживают бесцветные колонии, так как сальмонеллы не ферментируют лактозу (см. цв. вклейку, рис. 1,6). После учета характера роста на чашках делают пересев на комбинированную полиуглеводную среду. [c.147]

Колиформная группа бактерий определяется как совокупность аэробных и факультативно-анаэробных, неспорообразующих, грамотри-цательных палочек, вызывающих брожение лактозы с образованием газа в течение 48-часовой инкубации при 35°С. Первоначальный анализ на колиформы — предположительный, он основан на выделении газа из лактозы. Десятимиллилитровые порции водной пробы переносят с помощью стерильных пипеток в подготовленные бродильные трубки. Трубки содержат лактозу или лауриновую триптозу, бульон и перевернутые ампулы (сборники газа). Инокулированные трубки помещают в термостат с температурой 35 0,5°С. Рост бактерий с выделением газа, обнаруживаемого по появлению пузырьков в перевернутой ампуле, считается положительным анализом, показывающим, что колиформные бактерии могут присутствовать. Отрицательная реакция (отсутствие роста или рост без газа) исключает присутствие бактерий колиформной группы. [c.66]

Так называемый подтверждающий анализ проводят для подтверждения или отрицания присутствия колиформ в пробе, предварительный анализ которой дал положительный результат. При этом используют одну из двух процедур, показанных на схеме на рис. 3.5. Проволочную петлю применяют для пересева колоний из лактозной трубки с положительным результатом после 24- или 48-часовой инкубации в бродильную трубку, содержащую бульон из бриллиантовой зелени, лактозы и желчи. Если рост бактерий с выделением газа происходит в пределах 48 ч при 35°С, присутствие колиформ подтверждено. Если газ не выделяется, анализ считается отрицательньш. Другая методика проведения подтверждающего анализа заключается в штриховом посеве культуры из пробы с положительным предположительным анализом на среду Эндо или ЭМГ в чашках Петри с помощью стерильной проволочной петли. Инокулированные чашки подвергают инкубации в течение 24 ч при 35°С. Колонии бактерий, развивающиеся на поверхности твердых сред и отличающиеся зеленым блеском, считаются типичными колиформными ко- [c.66]

Рис. 3.6, Предположите.аьный и подтверждающий анализы на колиформную труппу. Показаны бродильные трубки (слева направо) трубки со стерильнЫ(М ла1Ктозным бульоном рост с выделением газа (положительный анализ) трубки со стерильным бульоном из бриллиантовой зелени, лактозы и желчи рост без выделения газа (отрицательный анализ). В чашке Петри (слева)—стерильный Эндо-агар в чашке справа видны типичные колонии колиформ

Методику анализа, схематически показанную на рис. 3.7, нельзя использовать для непосредственной изоляции колиформ из воды, но ее применяют как подтверждающую после предположительного анализа. Сначала лроязводят посев замеренного объема пробы в бродильные трубки, содержащие лактозу или лауриново-триптозный бульон. Трубки, в которых наблюдается рост бактерий с выделением газа спустя 24 или 48 ч, используют для инокуляции культуры в среду, содержащую бульон ЕС. В этой среде пробу подвергают инкубации в водяной ванне при температуре 44,5 0,2°С, погружая трубку до верхнего уровня среды. Из-за жестких требований к температурному режиму, необходимому для проведения анализа на фекальные колиформы, стандартные термостаты, обычно используемые в бактериологических анализах, неприемлемы. Рост с выделением газа говорит о присутствии фекальной колиформной группы если же газ не выделяется, то это свидетельствует об отсутствии последней. [c.69]

Питательный агар с концентрацией ТТХ 0,06% и лактозы 0,5 7о, pH 6,2—6,4 является хорошей средой для роста БГКП и обладает удовлетворительным ингибирующим действием на микрофлору воды. Эти свойства позволяют использовать ТТХ агар в качестве элективной среды для выделения БГКП из воды. [c.152]

Определение сахаролитической активности. Характер ферментации углеводов имеет большое значение в ряду таксономических признаков. Сбраживание глюкозы или лактозы с образованием кислоты и газа является основным дифференциальным свойством санитарно-показательных БГКП. Разложение углеводов начинается с развития популяции и интенсивно протекает в фазе логарифмического роста. Поэтому уже через 2—3 ч после начала инкубации в среду начинают поступать продукты распада. При использовании жидких сред газообразные продукты сначала растворяются в среде и только после полного насыщения начинают выделяться в виде пены на поверхности или скапливаются в бродильных трубках. Классические методы определения сахаролитической активности занимают 18—24 ч, а в отношении лактозы — 24—48 ч. В ускоренных методах используют различные способы улавливания газообразных продуктов с момента начала их выделения. [c.199]

Исследования заключались в выделении чистых культур бактерий из различных водоемов ускоренным методом с последующим определением их видовой принадлежности по следующим общепринятым тестам оксидазная активность, характер роста колоний на среде Эндо, микроскопия, ферментация глюкозы и лактозы пр г 37 и 43°С, способность образовывать ацетилметплкарбинол, реакция с метиловым красным, усвоение цитратных солей как единственного источника углерода. [c.211]

Таким образом, молочнокислые бактерии-это своего рода метаболические инвалиды , которые, вероятно в результате своей специализации (рост в молоке и других средах, богатых питательными и ростовыми веществами), утратили способность к синтезу многих метаболитов. С другой стороны, многие из них обладают способностью, которой нет у большинства других микроорганизмов они могут использовать молочный сахар (лактозу). В этом они сходны с многими кишечными бактериями (например, Es heri hia oli). Лактоза в растительном царстве, по-видимому, не встречается она образуется у млекопитающих, выделяется с молоком и соответственно с ним же поглощается. Таким образом, способность использовать лактозу можно считать приспособлением к среде, характерной для кишечника млекопитающих. Лактоза-дисахарид, который, прежде чем вступить на путь катаболизма гексоз, должен быть расщеплен [c.273]

Е. oli хорошо растет на средах, содержащих глюкозу или лактозу и пептон. Для того чтобы создать условия, при которых рост других бактерий сводился бы к минимуму, пользуются лактозой. На средах с лактозой могут расти только те бактерии, которые способны ее расщеплять с помощью -галактозидазы. Этот фермент синтезируют бактерии группы кишечной палочки и молочнокислые бактерии, тогда как многие почвенные и водные бактерии его лишены. [c.285]

Мутанты, конститутивно образующие катаболические ферменты. Накопительные культуры такого рода мутантов можно получить путем частой смены субстратов. Если клетки конститутивно образуют ферменты, необходимые для использования субстрата А, то после переноса клеточной популяции с субстрата В на субстрат А они точас начинают расти с максимальной скоростью клеткам же индуцибельного дикого типа для достижения максимальной скорости роста необходима определенная лаг-фаза (чтобы синтезировать ферменты для роста на субстрате А). После ряда генераций клетки снова переносят на среду с субстратом В и дают им расти до тех пор, пока ферменты, участвующие в использовании субстрата А, не будут достаточно сильно разбавлены . После многократного повторения такой процедуры конститутивные мутанты сильно обгоняют в росте клетки дикого типа с индуцибельными ферментами. Таким путем были выделены, например, мутанты Е. соН, конститутивно образующие ферменты, необходимые для использования Лактозы. В других методах отбора пользуются таким приемом, как подавление индукции при помощи структурных аналогов субстрата. Метилтио алактозид может, например, подавить у Es heri hia oli индукцию й(а/ Оперона, вызываемую галактозой. [c.498]

То, что эта несколько усложненная регуляторная система функционирует очень четко, можно проследить даже во времени. Возьмем бактерии, которые прежде никогда не приходили в соприкосновение с лактозой, т. е., как говорят микробиологи, не адаптированы к лактозе. Если поместить такие не адаптированные к лактозе бактерии в питательный раствор, содержащий в качестве источника энергии одну только лактозу, и измерять прирост числа клеток, то окажется, что рост начинается не сразу — ему предшествует определенный латентный период. Ведь сначала должен дерепрессироваться оперон, должны синтезироваться нужные ферменты. Лишь после этого число клеток начинает неуклонно возрастать вплоть до того момента, когда вся лактоза будет исчерпана тогда рост и [c.283]

Рис. 65. Влияние на относительную скорость роста А Т. andida ФК концентрации лактозы (в %)

Смотреть страницы где упоминается термин Лактоза рост соИ: [c.177] [c.96] [c.323] [c.66] [c.472] [c.327] [c.145] [c.126] [c.65] [c.134] [c.148] [c.166] [c.217] [c.99] [c.281] [c.65] [c.65] [c.30] [c.194] [c.80] [c.315] [c.225]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология