Состав питательной среды

На синтез вторичных метаболитов влияет целый ряд факторов. Прежде всего выход продукта зависит от генотипа растения-до-нора. Показано, что культуры клеток, полученных от высокопродуктивных растений, продуцировали большее число метаболитов. Другой важный фактор — состав питательной среды и концентрация ее компонентов, которые должны обеспечивать, с одной стороны, увеличение количества клеток-продуцентов, с другой — [c.181]

При изучении пенициллина установлено, что среди продуктов его кислотного гидролиза всегда присутствует р-диметил-цистеин. Введением в состав питательной среды веществ с мечеными атомами N , был изучен механизм биосинтеза пенициллина. [c.187]

Производство пекарских дрожжей - сложный микробиологический процесс, конечным итогом которого является накопление биомассы. Эффективность дрожжерастильного процесса определяется высоким выходом продукта при максимальной производительности оборудования. Технология дрожжевого производства должна базироваться на точно рассчитанных режимах, начиная с приготовления питательных растворов и заканчивая выпуском готовой продукции. Однако не всегда удается точно регулировать компонентный состав питательной среды из-за смены партии мелассы как основного источника углерода для роста дрожжей, поэтому необходима корректировка по соотношению основных компонентов питательной среды, поскольку меласса также служит дополнительным источником азота и фосфора. [c.28]

Ниже в качестве примера приводится состав питательных сред (в %) для производственного культивирования трех микроорганизмов. [c.159]

Большое значение для биосинтеза антибиотика имеет подбор рационального состава питательных сред, которые определяются в соответствии со штаммом продуцента. У каждого штамма потребность в источниках питания неодинакова, поэтому состав питательных сред не может быть постоянным для всех продуцентов. [c.413]

Фенилацетамид вводят в состав питательной среды при производстве пенициллина, бензилпенициллина. [c.178]

Среди компонентов, входящих в состав питательных сред, важную роль играют ионы КН4 и N03 . Присутствие аммонийного азота важно для начала морфогенеза, а добавление нитратного азота способствует росту и развитию образовавшихся структур. Фитогормоны, используемые для стимуляции органогенеза, не ограничиваются теперь только ауксинами и цитокининами. С этой целью в питательную среду вводят другие классы фитогормонов абсцизины, гиббереллины, этилен. [c.175]

Микробиологические исследования. На первом этапе определяются микробиологические, биохимические и физико-химические характеристики процесса на микроуровне. Основная задача подобных исследований заключается в нахождении наиболее вероятного механизма протекания процесса с выбором модели кинетики и оценкой констант. На этом же этапе решаются задачи выбора эффективных культур и микроорганизмов и оптимизации питательных сред. Наиболее быстрое решение указанных задач возможно лишь с использованием вычислительной техники, с помощью которой удается быстро просматривать конкурирующие механизмы протекания процесса биосинтеза, оценивать кинетические константы и выбирать оптимальный состав питательных сред. В настоящее время использование вычислительной техники на этом этапе исследований позволяет в некоторых случаях автоматизировать эксперимент, что существенно увеличивает эффективность научных исследований. [c.44]

Регулируя состав питательной среды, условия и длительность культивирования, можно достичь превалирующей активности одного фермента в комплексе ферментов препарата. [c.89]

Для максимального накопления ферментов необходимы определенный состав питательной среды, обеспечение кислородом воздуха, своевременный отвод метаболитов и физиологического тепла, оптимальные значения pH и температуры. Важнейшим условием является также стерильность питательной среды, подаваемого воздуха, ферментаторов, трубопроводов и арматуры. [c.159]

К условиям, обеспечивающим нормальную жизнедеятельность дрожжей, относятся прежде всего температура, pH и состав питательной среды. [c.196]

Микроорганизмы, продуцирующие глюкозоизомеризующие ферментные препараты, культивируются на питательных средах, в состав которых обязательно должны входить ксилансодержащие материалы — солома, пшеничные отруби, кукурузная кочерыжка и др. В качестве источника азота при культивировании применяют кукурузный экстракт, пептон мясной и дрожжевой экстракт. Глюкозоизомераза — металлофермент, поэтому в состав питательной среды входят добавки солей необходимых металлов (кобальта, магния). [c.136]

СОСТАВ ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ [c.197]

Состав питательных сред для выращивания тест-культур, получения спор и определения активности антибиотиков [c.221]

Вследствие приспособленности к существованию в кишечнике человека кишечная палочка отличается от других представителей нетипичных молочнокислых бактерий способностью вызывать брожение при 43—45°, причем сбраживать она может не только сахара, но и спирты. Поэтому в состав питательной среды, используемой для первого этапа определения коли-титра, вводится в качестве единственного источника углерода многоатомный спирт маннит. Таким образом, сразу исключаются из учета многие, не разлагающие маннит бактерии, которые могут быть приняты за кишечную палочку при постановке анализа на лактозе или глюкозе. Посевы помещают на 24 час в термостат при температуре 44°. [c.167]

Состав питательных сред, применяемых при культивировании клеток и тканей (по Р. Г. Бутенко, 1999) [c.163]

Состав питательных сред для каждого вида используемых нами микроорганизмов неоднороден [50], следовательно, изменение концентрации нитратов и фосфатов в сточных водах, подаваемых на очистку, будет оказывать влияние на активность микроорганизмов и, в конечном счете, на степень очистки воды. [c.285]

Соли, содержащие указанные элементы, необходимы актиномицетам в концентрации 0,001—0,2% (Иерусалимский, 1963), чаще в микроколичествах. В состав питательных сред их обычно не вводят, так как они содержатся в водопроводной воде, в составе органических экстрактов, в качестве примесей — в основных солях и углеводах, вводимых в среду. [c.158]

Состав питательных сред определяет не только суммар- [c.158]

В отсутствии минеральных солей процесс размножения дрожжей прекращается. Установлено, что для нормальной жизнедеятельности дрожжей необходимы также витамины. Например, дрожжевые грибки сахаромицеты слабо размножаются на синтетических средах, не содержащих витаминов. Таким образом, состав питательной среды для дрожжей должен соответствовать указанным выше требованиям и состоять из веществ азотистых (сернокислый аммоний), фосфористых (суперфосфат) и соединений, содержащих магний, калий, железо, серу и витамины. В питательной среде сахара в количественном отношении преобладают над всеми другими составными частями. Объясняется это тем, что сахара используются дрожжевой клеткой не только как источники углерода, необходимого для построения клеток, но и как источник энергии, выделяющейся при расщеплении сахара дрожжами. [c.184]

Условия среды предопределяют скорость размножения бактерий. Состав питательной среды, pH, гНг, температура и влажность оказывают большое влияние на скорость размножения. При оптимальных условиях деление клеток наблюдается через 20—30 мин. У разных видов скорость деления различна. В полноценных средах и при оптимальных условиях скорость размножения возрастает ускоряет размножение смена питательной среды — проточное культивирование. [c.33]

Для приготовления питательных сред в микробиологической промышленности используют сырье минеральное, животного и растительного происхождения, а также синтезированное химическим путем. Эти веш,ества, входя в состав питательной среды, обеспечивают развитие культуры и биосинтез определенных продуктов. Они не должны содержать вредных примесей. При выборе сырья необходимо учитывать его влияние на себестоимость, так как в микробиологическом синтезе важное значение имеет стоимость исходных веществ и материалов. В качестве источников углерода чаще всего используют углеводы (глюкоза, сахароза, крахмал, лактоза) или богатые углеводами натуральные продукты (меласса, кукурузная мука, гидроль и др.), а также жиры и даже вещества, содержащие углеводороды (нефть, парафин, керосин, природный газ, метан и др.). Источником азота обычно бывают неорганические соли — сульфат аммония, двузамещенный фосфат аммония, аммиак, нитраты, а также мочевина или натуральные продукты — кукурузный экстракт, соевая мука, дрожжевой автолизат и т. д. [c.75]

Состав питательных сред [c.32]

Грибы . Они относятся к бес-хлорофиловьгм растениям, поэтому не нуждаются в солнечной энергии. Грибы, образующие преимущественно нитевидные формы (мицелий), называются плесенями. Плесень —это очень длинные, разветвленные, напоминающие волосы нити или гифы, которые прн росте образуют видимые невооруженным глазом массы, так называемый мицелий. Грибы, развивающиеся преимущественно в виде одноклеточных элементов, называются дрожжами. Резко разграничить дрожжи от плесени нельзя. Некоторые из них могут расти и в виде дрожжеподобных клеток, и в виде нитей с образованием мицелия. Это явление зависит от внешних условий среды. Например, низкие температуры благоприятствуют образованию плесени, тогда как некоторые вещества, входящие в состав питательных сред (кровь, глюкоза, соединения, содержащие группу —5Н), и отсутствие кислорода (анаэробиоз) благоприятствуют развитию дрожжеподобных клеток. Существуют различные вещества (сивушные масла, ионы кобальта, камфора и др.), способствующие переходу из дрожжеподобной формы в нитевидную. [c.272]

Факторы, влияющие на клональное микроразмноженне. Питательная среда. Состав питательной среды — один из наиболее важных факторов при микроразмножении. Обычно используют стандартные среды Мурасиге-Скуга, Нича и др., но с добавлением на каждом этапе различных веществ. На первом этапе в питательную среду часто вносят антиоксиданты, чтобы предотвратить гибель клеток из-за активизации гидролитических ферментов. Особое значение имеют концентрация и соотнощение фитогормонов в среде. Например, на втором этапе для усиления морфогенеза обычно добавляют цитокинины. Напротив, на третьем этапе при укоренении в питательной среде должно быть только небольшое количество ауксинов (либо используется безгормональная среда). Иногда в среду добавляют гиббереллин (ГК), который стимулирует рост сформировавшихся почек. Важным регуляторным фактором служит сахароза. Обычная концентрация ее в среде составляет 3 %. На растениях каперса было показано, что более высокая концентрация сахарозы в среде приводила к образованию пурпурных, содержащих антоциан, почек возобновления. При концентрациях сахарозы менее 3 % наблюдалось формирование зеленых почек, способных к размножению. [c.197]

Количественное определение. Для количественной оценки действия нтибиотика пользуются методом диффузии в агар (рис. 10.7), методом последовательных разведений и некоторыми другими методами. Для проведения теста с диффузией чашки заполняют до определенной высоты агаризованной средой, содержащей суспензию тест-организма. Затем в чашки вносят испытуемые растворы антибиотика. Их помещают в лунки, либо в стеклянный или металлический цилиндр, или же накладывают на агар пропитанные антибиотиком диски из фильтровальной бумаги. При положительной реакции во всех случаях после инкубации становится заметной зона подавления роста тест-организма. Диаметр этой зоны при соблюдении постоянных условий опыта (состав питательной среды, толщина слоя агара, плотность посева, время инкубации, температура и т.д.) пропорционален логарифму концентрации антибиотика (рис. 10.7). [c.339]

В качестве объекта исследований мы выбрали биомассу бактерий Е.соИ М-17, R рабоге подобраны условия культивирования биомассы E. oli М-17 на сеяенсодержащей среде и состав питательной среды, в которой от 10 до 20 мольных % серы заменяли на селен, вносимый в виде 1%-го раствора SeOj. После [c.139]

Чистую посуду, предварительно завернутую в бумагу или в фольгу, инструменты, бумагу, вату стерилизуют сухим жаром в сушильном шкафу при температуре 160 °С в течение 1,5—2 ч. Питательные среды стерилизуют в автоклаве при температуре 120 °С и повьпиен-ном давлении в течение 15 — 20 мин. Если в состав питательных сред входят вещества, разрушающиеся при автоклавировании, их следует стерилизовать путем фильтрации через бактериальный фильтр. Затем стерильные профильтрованные компоненты добавляют в проавтоклавированную среду, охлажденную до температуры 40 °С. [c.160]

Действие компонентов среды. Экзогенные гормоны и стимуляторы могут оказывать мутагенное действие. Ауксины, особенно 2,4-6, входящие в состав питательных сред, — мутагены цитокинины способствуют полиплоидизации клеток. [c.171]

Состав питательной среды для колб следующий (в г/л) меласса 104 мочевина 5 К2НРО4 0,1 MgSO 0,05 СаСЬ 0,1 pH 7,5—8. Колбы выдерживают на качалке 24 ч при 28—30°С. После 24 ч выращивания содержимое колб первой стадии в стерильных условиях переносят в качалочные колбы емкостью 750 мл, содержащие по 100 мл питательной среды указанного выше состава. [c.166]

В качестве источников азотного питания продуцентами антибиотиков могут усваиваться органические (сложные белки растительного и животного происхождения, простые белки, пептоны, аминокислоты) и неорганические (аммонийные соли и нитраты) соединения азота. Органический азот может вводиться в состав питательных сред в виде дрожжевого, солодового, кукурузного и мясного экстрактов, пептона, казеинового гидролизата, всевозможных жмыхов, шротов, соевой, гороховой, кукурузной, ячменной и рыбной муки, мицелия продуцентов антибиотиков (Иофина и др., 1967 Полатовская, 1968), содержащего 3,75—4,6% азота. В качестве нового вида сырья для биосинтеза антибиотиков предложены белково-витаминные концентраты (Сойфер и др., 1973), концентраты безбел-кового картофельного сока (Вечер и др., 1978) и др. Многие нз названных органических комплексов применяются в биосинтезе полиеновых антибиотиков (см. главу I). [c.151]

В состав питательной среды многих микроорганизмов должны входить витамины и витаминоподобные вещества, необходимые для построения ферментов источником некоторых из витаминов являются экстракты из солодовых ростков, дрожжевой автолизат и др. [c.515]

Состав питательной среды в четвертом варианте (без фосфора) такой же, как и в первом, но КН2РО4 замс няют КС1. [c.55]

Жидкие отходыв биотехнологических производствах достаточно разнообразны по своему составу. Это объясняется неполным использованием биообъектами компонентов, входящих в состав питательных сред наличием веществ (кроме целевых метаболитов), секретируемых клетками присутствием растворителей, используемых, например, для экстракции конечных продуктов, и т. д. Рассмотрим, к примеру, сульфитные щелока, образующиеся на предприятиях целлюлозно-бумажной промышленности в результате гидролиза древесины и используемые для выращивания кормовых дрожжей. Они содержат в среднем 50—60% сульфоната лигнина, 7—8% сахарных сульфокислот, около 18% различных сахаров, 10% диоксида серы, 8% солей кальция. После значительного удаления сульфита и подготовки щелока (разбавление, внесение некоторых питательных ингредиентов) его используют для выращивания адаптированной расы дрожжевых организмов. Образующаяся клеточная масса здесь является целевым продуктом, а отходом — культуральная среда после отделения дрожжей. [c.356]

Особенно ярко выраженный эффект на каротинообразование оказывает внесенный в состав питательной среды Р-ионон, это соединение не включается в молекулу Р-каротина, но служит активатором биосинтеза р-каротина и других веществ, которые усиливают биосинтез Р-каротина при глубинном культивировании микроорганизмов-продуцентов этого соединения. [c.270]

Размеры бактерий, особенно длина палочковидных форм, зависят от условий обитания. Изменения pH, консистенции среды, концентрации солей и многих питательных веществ, а также состав питательной среды оказывают прямое влияние на размеры клеток. Сказываются на размерах и экологические условия. Поэтому длина палочковидных форм без учета совокупности условий имеет лишь относительное диагностическое значение. В промышленных сточных водах и синтетических средах, содержащих в качестве единственного источника углерода синтетические соединения, такие как ла/за-нитроанилин, толуидины, дихлорбензол, пикриновая кислота, капролактам и поверхностно-активные вещества (ПАВ), мы постоянно наблюдали измельчание палочковидных бактерий родов Pseudomonas, Ba illus и itroba ter по сравнению с культурами на универсальных питательных средах. Этот факт не должен игнорироваться микробиологами в практической работе по микробиологии промышленных стоков. Образование фильтрующихся форм нами не проверялось . [c.14]

Оболочка бактериальной клетки состоит из аминокислот и полисахаридов, близких по составу к крахмалу и гемицеллюлозе, в отличие от оболочки клеток растений, состоящих из целлюлозы. На поверхности оболочки у большинства бактерий имеется тонкий слизистый слой. У некоторых бактерий этот слизистый слой оболочки достигает значительной величины и образует капсулу. Иногда размер капсулы превышает размер самой клетки. Часто при сильном. ослизнеиии отдельные капсулы сливаются в слизистую массу, в которую вкраплены бактериальные клетки. Такие слизистые группы бактерий называются зооглеями. При биологической очистке сточных вод в активном иле всегда в значительном количестве присутствуют, зооглеи. Образованию бактериальных-слизей способствует углеводный состав питательной среды. Так, известно, что при производстве сахара из свеклы большие объемы полупродуктов превращаются в слизь из-за [c.115]

Лишь спустя 34 года Шульце и Босхард [449, 450] показали, что оптически неактивные аминокислоты представляют собой смеси равных количеств право- и левовращающих форм. Эти авторы нашли, что 1) при щелочном гидролизе белков образуются оптически неактивные аминокислоты 2) такие аминокислоты отличаются по растворимости от оптически активных аминокислот, полученных при кислотном гидролизе белка, и 3) при обработке оптически активных аминокислот баритом при высокой температуре они утрачивают свою оптическую активность. Если ввести такую оптически неактивную аминокислоту в состав питательной среды для выращивания плесени, то по окончании роста микроорганизма из среды можно выделить оптически активную аминокислоту. [c.80]

Наиболее высокопродуктивные штаммы Peni illium hrysogenum на применяемых в настоящее время концентрированных (так называемых обогащенных) средах образуют 5000— 10000 ед/мл (0,3—0,6%) бензил-пенициллина за 100—140 ч ферментации. Обычно в состав питательных сред входит лактоза (3—5%), глюкоза (1—2%), кукурузный экстракт (1—4%), мел (0,5—0,8%), животные или растительные жиры (0,2—0,5%), сернокислый или сернистокислый натрий (0,2—0,3%) и небольшие количества других солей, а также соответствующий предшественник. При получении бензил-пенициллина в качестве предшественника применяют фенилуксусную кислоту и фенилацетамид, феноксиметилпенициллиаа—феноксиуксусную кислоту, [c.472]