Среда бактериологическая

Древесина обладает значительной устойчивостью ко многим химическим реагентам. На нее не действуют слабощелочные растворы, а в кислой среде древесина начинает разрушаться при pH 2 (разрушение бетона и стали начинается уже при рН 4). Эксплуатация древесины в воде нежелательна. При этом в морской воде она сохраняется хуже, чем в речной, а в среде с высокой бактериологической активностью стойкость очень незначительна, Поэтому Е1е рекомендуется использовать в канализационных сетях изделия из древесины деревянные трубы, лотки, колодцы и т. д. Для продления сроков службы древесины применяют естественную и искусственную сушку, антисептирование и пропитку каменноугольной смолой и антраценовым маслом для защиты от гниения и поражения дереворазрушающими насекомыми. [c.253]

Многие нормальные и разветвленные алканы встречаются в нефти и природном газе. С точки зрения биологии все они не имеют большого значения, за исключением метана (болотный газ), который образуется при анаэробном бактериологическом расщеплении целлюлозы. Примечательно, что, несмотря на большую инертность метана, некоторые микроорганизмы вызывают его метаболическое разложение и могут расти в отсутствие других альтернативных источников углерода. В последние годы наметился большой интерес к возможности промышленного получения микроорганизмов, использующих в качестве питательной среды нефтепродукты. [c.36]

Конечно, источники выделения многих веществ могут быть преимущественно (или исключительно) профессиональными или бытовыми. Однако по мере химизации быта и возникновения новых отраслей химической промышленности обмен веществ между различными объектами среды обитания человека увеличивается. Так, до недавнего времени естественные пищевые и грибковые токсины были преимущественно бытовыми ядами, сейчас в связи с развитием бактериологической промышленности подобные вещества должны быть отнесены к профессиональным ядам. Растворители, в том числе ароматические или хлорированные, раньше были преимущественно профессиональными веществами, теперь, несмотря на ограничения, эти соединения стали ядами сферы быта. [c.289]

Показатели качества природных вод в целом характеризуются разнообразными показателями, важнейшими из которых являются температура, реакция среды, цветность, запах и привкус, мутность, ионный состав, наличие соединений железа и марганца, жесткость, окисляемость, наличие растворенных газов, наличие соединений фтора, иода и токсичных соединений, санитарно-бактериологические и гидробиологические показатели. Показатели качества воды регламентируются ГОСТами. [c.26]

Из полученных разведений проводят посев на плотных и жидких средах. Набор этих сред зависит от задач, которые ставят перед собой исследователи при бактериологическом анализе почвы. [c.148]

Далее стерильным пинцетом помещают клубеньки в стерильную чашку Петри и стерильным ножом разрезают на части. Из содержимого клубенька берут бактериологической петлей небольшое количество взвеси, переносят в каплю стерильной воды на поверхность агаровой питательной среды в чашке Петри и размазывают шпателем. Этим же шпателем делают посев последовательно еще на двух пластинах. [c.182]

Бактериологическое исследование основано на культивировании бактерий на питательных средах, выделении чистой культуры возбудителя и ее идентификации. Чистой культурой называют популяцию микроорганизмов одного вида, как правило выращенную из изолированной колонии на плотной питательной среде. Разрешающая способность метода составляет в среднем 1000 клеток в 1 мл. [c.25]

Аэробные и факультативно-анаэробные бактерии. На первом этапе из исследуемого материала готовят мазки, микроскопируют их, затем сеют материал на плотную среду в чашки Петри шпателем или бактериологической петлей (см. цв. вклейку, рис. 6). При этом достигается механическое разъединение микроорганизмов на поверхности питательной среды, что позволяет получить их рост в виде изолированных колоний. В отдельных случаях исследуемый материал вначале сеют в жидкую среду накопления, а [c.30]

Бактериологическое исследование. В 1 -й день исследования петлей или шпателем материал засевают в чашки с 5%-м кровяным, а также желточно- или молочно-солевым агаром, которые инкубируют 18 — 24 ч при 37 °С и столько же на свету при комнатной температуре (для более четкого пигментирования колоний). Солевые среды ввиду высокого содержания хлорида натрия являются селективными для стафилококков, рост большинства сопутствующих микроорганизмов на них подавляется. [c.105]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистой культуры 5 — 10 мл крови сеют в сывороточный бульон (1 часть сыворотки + 3 части МПБ, pH 7,2 —7,4), в сахарный бульон или в специальную среду с дефибринированной кровью лошади и дрожжевым экстрактом. После 18 —24-часовой инкубации материал пересевают на 10%-й кровяной агар в чашку. Спинномозговую жидкость центрифугируют и осадок сеют на кровяной агар. [c.114]

Биологический и бактериологический методы. Материалом для исследования от больных, в зависимости от клинической формы туляремии, может быть кровь, пунктат из бубона, соскоб из язвы, отделяемое конъюнктивы, налет из зева, мокрота и др. Исследуют также органы павших и больных животных, переносчиков (слепни, клещи, комары), объекты внешней среды (вода, пищевые продукты, воздух). [c.125]

Бактериологическое исследование является основным методом лабораторной диагностики холеры. Его проводят не только для подтверждения диагноза заболевания, но и для выявления бактерионосителей, для контроля эффективности лечения, контроля за объектами внешней среды. [c.164]

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал — мокроту, кровь, спинномозговую жидкость, серозную жидкость — засевают на питательные среды не позднее чем через 2 —3 ч после взятия. В качестве среды используют питательный агар с б — 10 % нативной крови или шоколадный агар с прогретой или кипяченой кровью на простых питательных средах гемофильные бактерии не растут. Если нет возможности немедленно посеять материал на плотные среды, используют транспортную полужидкую среду с активированным углем и ниацином. [c.175]

Бактериологическое исследование. Биопсийный и другой материал засевают на кровяной агар или основные среды, которые инкубируют при 37 °С в аэробных условиях или в атмосфере с 10 % углекислого газа. В течение 1 — 3 дней на плотных средах появляются мелкие колонии (диаметром 0,1 —0,5 мм). На кровяном агаре они более крупные и диссоциируют на У- и Л-форму типичный гемолиз отсутствует. [c.182]

Бактериологическое исследование. Материал засевают на специальные плотные среды непосредственно или из транспортной, накопительной среды. Для выделения чистых культур используют анаэробный кровяной агар, обогащенные среды с настоем мозга и факторами роста и/или селективные среды (анаэробный кровяной агар с желчью и канамицином). Посевы инкубируют при 37 °С [c.183]

Основным методом лабораторной диагностики дифтерии является бактериологический. Диагноз дифтерии ставят при обнаружении возбудителя. Бактериологическое исследование проводят в обязательном порядке у лиц с острыми воспалительными процессами в области зева, носа и носоглотки, а также по эпидемиологическим показаниям у лиц, находившихся в контакте с больными, у лиц, вновь поступающих в детские дома, ясли, школы-интернаты и некоторые другие специальные учреждения, с целью выявления среди них бактерионосителей. [c.200]

Ни одна из указанных питательных сред не является универсальной для роста возбудителя туберкулеза, поэтому для увеличения результативности бактериологического метода рекомендуется применять посев патологического материала на 2 — 3 различные питательные среды. [c.211]

Ускоренный метод бактериологической диагностики туберкулеза (метод микрокультур Прайса). Мокроту, гной, осадок мочи или другой материал наносят толстым слоем на несколько стерильных узких (1 см) предметных стекол. Высушенный препарат берут стерильным пинцетом и погружают на 15 мин в 2%-ю серную кислоту, а затем — в стерильный раствор ИХН для промывания с целью удаления кислоты. После этого препараты помещают во флаконы с цитратной кровью, стараясь полностью погрузить мазок с материалом в среду. [c.213]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистых культур материал засевают на селективные плотные среды (с кровью, факторами роста и антибиотиками) или используют для выделения метод фильтрации (см. ниже). Параллельно с прямым посевом на плотные среды материал засевают на среду обогаш ения (например, Бруцелла-бульон, содержащий пептоны, дрожжевой экстракт, глюкозу и в качестве редуцента гидросульфит натрия). [c.219]

Важной частью любого исследования чистой культуры является состав среды, в которой происходит рост организмов. Сложная питательная среда типа питательного бульона, часто используемая в бактериологических лабораториях, непригодна для проведения работ с битумами. Такие среды состоят из органических материалов типа пептонов или мясных экстрактов и углеводов в качестве источника углерода и энергии для роста микроорганизмов. В такой среде организмы, которые могут разрушать битум или углеводород, как правило, отдают предпочтение углеводу, а не углеводороду. Поэтому для исследования действия микроорганизмов на битумы нужно получить химически определенную среду, содержащую азот, фосфор, серу и ионы металлов, необходимые для роста, но не содержащую углеводов или каких-либо других легко ассимилирующихся форм углерода. Такой средой является состав, предложенный Филлипсом и Трекслером [20]. Выбор правильного сочетания ингредиентов усложняется тем, что у различных организмов требования к пище неодинаковы. В табл. 5.1 приводится состав среды, использованной для роста организмов класса Pseudomonas на углеводородах. Часто такие среды способствуют также росту организмов других видов. Чтобы установить, будет ли эта среда поддерживать рост организмов определенного вида, следует ввести глюкозу и привить организм. Если будет наблюдаться рост, то среда,, вероятно, может быть пригодна для роста микроорганизмов данного вида при использовании углеводорода или битума в качестве источника углерода вместо глюкозы. [c.179]

Для приготовления пищи и в качестве питьевой может быть использована природная вода, если она не содержит вредных микроорганизмов, а также вредных минеральных и органических примесей, если она прозрачна, бесцветна и не имеет привкуса и запаха. В соответствии с Государственным стандартом содержание минеральных примесей не должно превышать 1 г/л. Кислотность воды в единицах pH должна быть в пределах 6,5—9,5. Концентрация нитратного иона не должна превышать 50 мг/л. Естественно, что она должна также отвечать бактериологическим требованиям и иметь допустимые показатели на токсичные химические соединения. Этим требованиям наиболее часто удовлетворяет колодезная и родниковая вода. Однако в больших количествах найти воду, отвечающую Государственному стандарту, трудно. Поэтому ее приходится очищать на специальных станциях. Основными стадиями очистки являются фильтрование (через слой песка) и обработка окислителями (хлором или озоном). В некоторых случаях приходится применять коагуляцию. Для этого используют сульфат алюминия АЬ (804)3. В слабощелочной среде, создаваемой карбонатами кальция, под действием воды эта соль гидролизуется и из нее получается хлопьевидный осадок гидроксида алюминия А1(0Н)з, а также сульфат кальция Са304 в соответствии с уравнением [c.13]

Сахар — это традиционный материал, используемый в пищевой и кондитерской промышленности. Для консервировав ння требуются бактериологически чистые продукты, и рас творы с 60%-ным содержанием сахара защищают среду от действия бактерий. Однако известно, что и на кристаллическом сахаре размножаются термофильные бактерии и существуют дрожжи 08асскаготусе , которые вызывают брожение сиропов и других продуктов (отсыревший мед) с со держанием сахара более 70 %. [c.47]

Стрептомицина сульфат вступает во взаимодействие с натрия-КМЦ, аравийской камедью, натрия альтинатом, бентонитом и другами ВВ, в результате чего его активность значительно снижается. Сила взаимодействия зависит от рн среды, наличия электролитов и концентрации антибиотика. Результаты бактериологических испытаний показали, что катионные антибиотические вещества сильно инактивируются водными суспензиями бентонита, тогда как анионные и неионные вещества не инактивируются. Инактивация объясняется адсорбцией активных веществ на бентоните. [c.396]

Бактериологическое исследование. Гной, отделяемое слизистой оболочки, мочу, мокроту, спинномозговую жидкость сеют в чашку Петри с 5%-м кровяным агаром (лучше использовать дефибрини-рованную баранью кровь) и в пробирку с сахарным бульоном. Для выделения стрептококков из контаминированного материала используют селективные среды (в кровяной агар и среду накопления вводят антибиотики — колистин, налидиксовую кислоту, которые подавляют рост сопутствующих микроорганизмов). Хотя стрептококки дают рост на воздухе, посевы лучше инкубировать в анаэробной атмосфере при 37 °С. Инкубация в атмосфере СО2 стимулирует рост бета-гемолитических стрептококков, не относящихся к группе А. С этими целями применяют анаэростат или эксикатор с горящей свечой. [c.110]

Бактериологическое исследование. Для выделения энтерококков применяют посевы на 5%-й кровяной агар, а для материалов, контаминированных сопутствующей микрофлорой, — на селективные среды, содержащие азид натрия или антибиотики (колистин, налидиксовую кислоту, цефалексин, азтреонам). Для обогащения материала применяют посев на сахарный бульон (МПБ + + 0,2 % глюкозы). Посевы инкубируют на воздухе при 37 °С 24 — 48 ч. На кровяных средах энтерококки образуют мелкие или средних размеров округлые колонии серо-белого цвета с ровным краем, иногда с зоной р-гемолиза Е. fae alis) или а-гемолиза. На жидкой среде дают диффузное помутнение. [c.115]

Бактериологическое исследование. Менингококк растет на специальных питательных средах с нативным белком (бульон или агар с сывороткой, асцитической жидкостью или кровью). Для исследования материала, обильно контаминированного нормофлорой (мазки из носоглотки), применяют посев на плотные селективные среды с антибиотиками (ристомицином, ванкомицином, ко-листином и нистатином). Спинномозговую жидкость лучше сеять после центрифугирования (3000 об/мин в течение 5 мин). Засевают 2— 3 капли полученного осадка на поверхность подогретой пи- [c.117]

Если нет ьо можмости Р1ачать бактериологическое исследование на месте, для сохранения жизнеспособности гонококков материал после взятия помещают и транспортные среды, хранят при [c.122]

Бактериологическое исследование. Взятый материал засевают на МПА, кровяной агар, МПБ с 3 — 5 % глицерина. Для подавления роста сопутствующей микрофлоры используют селективные среды, содержащие красители — кристаллический фиолетовый (1 200 000), бриллиантовый зеленый (1 1 000 000) и др., а также антибиотики (гентамицин, колистин и др.). Для выделения возбудителя мелиоидоза можно использовать среду МакКонки с добавлением колистина или без него. [c.132]

Бактериологическое исследование. При бактериологической диагностике коклюша и паракоклюша производят посев мокроты методом кашлевых пластинок . Для этого в момент приступа кашля перед ртом больного на расстоянии 8—12 см помещают открытую чашку Петри с питательной средой (картофельно-глицериновый агар по Борде, молочно-кровяной или казеиновоугольный агар) и выдерживают в течение 6 — 8 кашлевых толчков. Чашку закрывают и помещают в термостат при 37 °С. Если кашель отсутствует, отделяемое слизистой оболочки с задней стенки глотки собирают клювовидным тампоном через рот или тампоном через нижние носовые ходы и сеют на чашки с указанными выше питательными средами. При взятии материала следует избегать попадания на тампон материала (микрофлоры) со слизистой оболочки щек, языка, миндалин (для этого используют шпатель). Следует учитывать также, что на сухом ватном тампоне бордетеллы быстро отмирают в результате высушивания и действия токсичных для них компонентов ваты. Если нет возможности немедленно посеять материал, его берут тампоном, смоченным в ИХН. Материал доставляют в лабораторию как можно быстрее и засевают на селективные среды в течение 2 ч после взятия. При посеве взятый тампоном материал тщательно растирают по поверхности агара (от периферии к центру чашки) для получения хорошо изолированных колоний. Такое исследование проводят дваж- [c.134]

Бактериологическое исследование. Биопсийный и другой материал засевают на специальные среды (например, угольно-дрожжевой агар с -цистеином и пирофосфатом железа, селективные среды с антибиотиками, шоколадный агар и др.). Питательной основой этих сред, как правило, является дрожжевой экстракт и а-кетоглютарат. Активированный уголь необходим для связывания токсических продуктов, образующихся в процессе роста культур, и оптимизации показателя поверхностного натяжения. Для придания селективных свойств в состав сред для легионелл обычно вводят 3 антибиотика (полимиксин В, анизомицин и ванко-мицин или цефомандол), которые задерживают рост грамположительных бактерий, грибов и грамотрицательных бактерий соответственно. Посев желательно делать одновременно на селективную и неселективную среду, так как встречаются чувствительные к антибиотикам штаммы возбудителя. [c.137]

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал сеют в чашки с висмут-сульфитным агаром и в среды накопления (магниевую, селенитовую), из которых через 6 — 10 ч делают пересев на висмут-сульфитный агар. Посевы инкубируют при 37 °С, на второй день их изучают, отбирают колонии черного цвета и пересевают на полиуглеводную среду (Олькеницкого или подобную) для накопления и первичной идентификации чистой культуры (см. цв. вклейку, рис. 8, г). На 3-й день исследования выделенные чистые культуры для окончательной идентификации сеют в среды пестрого ряда и ставят РА с адсорбированными сальмонел-лезными сыворотками (поливалентными и групповыми Л, В, С, [c.152]

Материалом для выделения возбудителей дизентерии служат испражнения больных, реконвалесцентов, носителей, реже — рвотные массы и промывные воды желудка и кишечника. Шигел-лы могут быть обнаружены в смывах с рук, посуды, различных предметов (игрушки, дверные ручки и др.), в молоке и других пищевых продуктах. Результаты микробиологического исследования во многом зависят от правильности взятия материала. Пробы кала (в первую очередь слизистые примеси) из судна (горшка) или тампоном (петлей) непосредственно из прямой кишки стараются отбирать до начала этиотропной терапии в посуду без следов дезинфицирующих средств. Если невозможно сразу произвести посев на плотные дифференциальные среды, взятый материал немедленно засевают на среды обогащения, помещают в термостат или хранят в глицериновом консерванте на холоде до отправки в лабораторию. Ввиду морфологического сходства шигелл с другими энтеробактериями световая микроскопия не применяется, основным методом диагностики является бактериологический. [c.153]

Бактериологическое исследование. Испражнения засевают на среды Плоскирева и Эндо в чашках, а также для накопления на селенитовую среду (в соотношении 1 5). Со среды накопления материал высевают через 16 — 18 ч на те же плотные среды. Посевы помещают в термостат при 37 °С на 18 — 24 ч. [c.153]

Бактериологическое исследование. Материал для выделения возбудителя — фекалии, кишечные биоптаты, лимфоузлы или ткань удаленного аппендикса, кровь, слизь из ротоглотки — отбирают в соответствии с клинической формой и фазой патогенеза заболевания. Для первичного посева материал, контаминиро-ванный сопутствующей микрофлорой, подвергают щелочной обработке. С этой целью используют 0,5%-й раствор гидроксида калия в 0,5%-м хлориде натрия, куда помещают бактериологическую петлю с материалом на 1 мин и затем этой же петлей делают посев на плотную среду. В качестве селективных используют агары IN, Серова или среду Эндо, которые после посева инкубируют при 32 °С в течение 24 — 48 ч или 24 ч при 37 °С и столько же при комнатной температуре. Одновременно материал помещают в среду накопления для холодового обогащения . Иерсинии в отличие от многих сопутствующих микроорганизмов хорошо растут при низких температурах в голодных средах, поэтому материал помещают в забуференный ИХН (pH 7,6) и выдерживают при температуре бытового холодильника (4... 10 °С). Высевы со среды накопления (из верхней части пробирки) делают на 3, 5, 10, 15-е сут на те же плотные среды. [c.155]

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал засевают в соответствующие питательные среды кровь в объеме 5 — 10 мл — в 100 мл МПБ (во флаконах) содержимое бубона, отделяемое язвы, мокроту и другой материал — в чашки с МПА (pH 7,2 — 7,3). Для стимуляции роста чумных бактерий к МПА прибав- [c.172]

Бактериологическое исследование. Выделение чистой культуры и ее идентификация необходимы для подтверждения диагноза листериоза. Листерии растут на простых питательных средах, но более интенсивный рост отмечается на кровяном агаре или средах, обогащенных глюкозой, глицерином, дрожжевым экстрактом, сывороткой, печеночной тканью. Материал засевают на плотные среды. Для подавления роста сопутствующих микроорганизмов используют специально разработанные селективные среды с антибиотиками и/или красителями, хлоридом лития, фенилэтано-лом (агары Оксфордский, PAL САМ яла др.). Те же добавки используют в составе бульонных сред для обогащения исследуемого материала (накопление листерий ведут при 30 °С в течение 24 — 48 ч). Иногда используется также метод холодового обогащения (материал выдерживают при 4 °С в течение 10 — 50 сут). Посевы на плотных средах инкубируют при 37 С до 7 сут. [c.179]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистых культур материал засевают на плотные среды для анаэробов (непосредственно или из транспортной, накопительной среды). На кровяном анаэробном агаре (с кроличьей кровью) превотеллы образуют сухие или блестящие колонии, которые дают красное свечение при УФО, а с 5 —7-го дня у них появляется пигментирован-ность (от светло-коричневого до черного цвета). Коричнево-чер- [c.185]

Бактериологический и биологический методы исследования. Для окончательного подтверждения диагноза производят посев на питательные среды и заражение животных. Материал сеют в чашки с МПА, в пробирки с МПБ (pH 7,2 —7,6), кровяной агар и помещают в термостат при 37 °С. Контаминированные образцы (материал из внешней среды, от животных, из старых трупов) подвергают обработке для уничтожения вегетативных форм микроорганизмов одним из способов а) прогревают при 63 °С в течение 15 мин б) заливают 95%-м этанолом 1 1 и обрабатывают при комнатной температуре 30 — 60 мин (плотные материалы предварительно эмульгируют в деионизированной воде 1 2). В качестве селективной среды для исследования контаминированных проб можно использовать питательный агар с полимиксином В, лизо-цимом, ЭДТА и ацетатом таллия РЬЕТ-атар). Одновременно с посевами материалом заражают путем подкожного введения двух белых мышей. [c.187]

Бактериологическое и биологическое исследование. После микроскопии материал засевают на специальные жидкие и плотные среды (анаэробный кровяной агар, среда Вильсона —Блера, среда Китта—Тароцци, желточная среда). Для приготовления неселективной среды для клостридий используют в качестве основы агар для бруцелл с 5 % бараньей крови, колумбийский или сердечно-мозговой агары, в которые добавляют дрожжевой экстракт, витамин К и гемин. В качестве селективных сред (для контаминированных образцов) можно использовать анаэробный кровяной агар с добавлением неомицина или фенилэтилового спирта. Перед посевом плотные материал гомогенизируют (растирают в стерильной ступке со средой накопления) и делят на две части, одну из которых прогревают в водяной бане при 80 °С в течение 10 мин (для уничтожения вегетативных клеток сопутствующих микроорганизмов). Обе части материала исследуют одновременно. В качестве альтернативного метода (особенно при подозрении на присутствие термочувствительных штаммов С. perfringens) используют обработку материала этиловым спиртом, к 1,0 мл исследуемого гомогената или экссудата добавляют такое же количество 95%-го этанола и перемешивают их при комнатной температуре в течение 1 ч, после чего этим материалом засевают указанные выше питательные среды. [c.191]

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал засевают на фруктозный агар с лошадиной кровью и антибиотиками (циклосерином и цефокситином). Циклосерин (500 мкг/мл) подавляет рост эшерихий и других грамотрицательных бактерий, цефокситин является антибиотиком широкого спектра действия. Засеянные чашки инкубируют при 37 °С в анаэробных условиях в течение 24 ч. Выросшие колонии клостридий и среда вокруг них окрашиваются индикатором нейтральным красным в желтый цвет. Посев издает запах крезола или конского навоза. Колонии могут иметь правильную или неправильную форму, плоские с фестончатым краем и матовой поверхностью. При облучении их длинноволновым ультрафиолетом колонии дают золотисто-желтую флюоресценцию. [c.195]

Бактериологическое исследование. Перед посевом исследуемый материал предварительно растирают в фарфоровой ступке. Засевают 10—12 мл материала в среду накопления (Китта —Тароцци или др.). Одну пробу засевают в 4 флакона, два из которых прогревают один при 60 °С в течение 15 мин (для селекции С. botulinum типа Е), другой — при 80 °С в течение 20 мин. Накопление культур клостридий ботулизма типов Е и F происходит при 28 °С, а для выращивания клостридий типа Л и В посевы культивируют при 35 °С в течение 48 ч. Для активации токсина Е (из протоксина) к питательной среде добавляют трипсин (до конечной концентрации 0,1 %). Остатки образцов исследуемого материала сохраняют в холодильнике до окончания анализа. [c.197]

Столбняк — острая инфекционная болезнь, вызываемая lostridium tetani (бактериями 3-й группы патогенности) и сопровождающаяся интоксикацией, тоническими и клоническими сокращениями мышц. Клиническая картина столбняка настолько типична, что, как правило, бактериологическое исследование с целью диагностики заболевания является излишним. Для обнаружения возбудителя столбняка обычно исследуют перевязочный и шовный хирургический материал, а также различные препараты, предназначенные для парентерального введения, чтобы проверить правильность стерилизации иногда исследуют воздух, пыль и другие объекты внешней среды. [c.198]

Бактериологическое и биологическое исследование. Исследуемый материал засевают на среду накопления (Китта—Тароцци или др.), выдерживают в анаэробных условиях в термостате в те- [c.198]

Техника безопасности. Ввиду того что возбудители туберкулеза обладают высокой контагиозностью (инфицирующая доза составляет менее 10 клеток) и устойчивостью к действию факторов внещ-ней среды, при работе с материалом, содержащим микобактерии, и чистыми культурами существует опасность лабораторного заражения и распространения возбудителя. Поэтому необходимо выполнять исследование с особой предосторожностью. Пробирки и другую посуду тщательно укупоривают. Все манипуляции, при которых может образоваться аэрозоль, содержащий туберкулезные бактерии (открывание емкостей с материалом и культурами, прожигание бактериологических петель, пипетирование, центрифугирование жидкостей и др.), надо проводить по возможности в ламинарном боксе (при отрицательном давлении), использовать спецодежду и средства защиты органов дыхания (например, респиратор). Поверхности в лаборатории обрабатывают дезинфицирующим раствором и ультрафиолетом. Предпочтительно использовать одноразовые инструменты, петли прокаливать в специаль- [c.207]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология