Цитратно-фосфатные буферные растворы

Цитратно-фосфатные буферные растворы (pH=2,2-8,0) [c.134]

Таблица 13 Фосфатно-цитратные буферные растворы Мак-Ильвена

Цитратно-фосфатный буферный раствор [c.208]

Рис. 11. Влияние концентрации бензолсульфоната тетраэтиламмония на отношение кинетического тока восстановления малеиновой кислоты к диффузионному току в цитратно-фосфатном буферном растворе с pH 5,0

Каждая среда готовилась на воде и цитратно-фосфатном буферном растворе по Мак Ильвейну с pH 5,8 5,0 4,8 и 4 и со- [c.333]

Фосфатно-цитратные буферные растворы [c.93]

Из буферных смесей лучше пользоваться фосфатно-цитратной буферной смесью. Для приготовления окрашенных буферных растворов в сухие чистые пробирки одинакового диаметра помещают по 10. ил фосфатно-цитратной смеси. В каждую пробирку приливают по 0,6 мл комбинированного индикатора и полученную окра- [c.289]

Цитратно-фосфатный буферный раствор готовят из двух растворов 21,008 г лимонной кислоты (СеНаО НгО) растворяют в [c.208]

Сычужные ферменты элюируют цитратно-фосфатным буферным раствором с pH 6,0. [c.116]

Многие органические вещества имеют различные потенциалы восстановления при разных значениях pH раствора, так как ионы водорода принимают участие в электродной реакции. В приэлектродном слое во время процесса восстановления значительно меняется величина pH раствора и получается растянутая волна или даже образуются две волны. Следовательно, в таких случаях необходимо применять буферные растворы. С другой стороны, буферные растворы одновременно являются фоном. В качестве буферных растворов применяются ацетатные, боратные, фосфатные, цитратные смеси и другие вещества. [c.433]

Рис, 15. Зависимость высоты полярографических волн фенилглиоксиловой кислоты от высоты резервуара со ртутью (обозначена Н см) в4,7-10 Л1 растворе в цитратно-фосфатной буферной смеси Мак-Ильвейна с рН=8. [c.26]

Фосфатно-цитратный буферный раствор, pH 4,5, ИР. [c.356]

В качестве подвижной фазы используют смесь 8 объемов ацетонитрила Р и 92 объемов фосфатно-цитратного буферного раствора, pH 6,0 ИР. [c.202]

В сильнощелочных растворах большинство металлов осаждается в виде гидроокисей поэтому буферную среду подбирают так, чтобы она действовала как дополнительный комплексообразующий агент, предотвращающий выпадение гидроокиси в осадок. Обычно применяют аммиачные, фосфатные и цитратные буферные растворы. Это приводит к появлению дополнительных равновесий и к необходимости учета их при расчетах. [c.322]

Буферный раствор (НС1—КС1) pH = 1,1 Буферный раствор (НС1—КС1-лимонная кислота) pH = 1,2 pH = 1,7 pH = 1,9 Фосфатно-цитратный буфер pH = 2,4 pH = 3,8 pH = 4,7 рН= 5,8 Аммиачно-аммонийный буфер pH =6,7 pH = 7,8 pH = 8,6 Фосфатный буфер pH = 10,5 pH = 11,8 [c.101]

Высота волны глюкозы в фосфатно-цитратных буферных растворах растет с увеличением pH, причем этот рост заметно ускоряется при переходе к щелочным растворам [268], что, очевидно, обусловлено основным катализом при образовании ациклической формы со свободной альдегидной группой i/j волны с ростом pH становится отрицательнее при pH 4,8 Еч, = —1,42 В, а при pH 9,98 , = —1,81 В (90 X) [268]. [c.201]

Лактоза [268] в фосфатно-цитратных буферных растворах с pH 5,45 дает волну, 1пр которой повышается с ростом pH, а ./, [c.202]

В ионообменной хроматографии на катионитах в Н+-форме в большинстве случаев используют разбавленные водные растворы кислот (хлороводородной, муравьиной и др.) или кислотные буферные растворы (фосфатные, ацетатные, цитратные). Удерживание веществ при этом понижается с уменьшением pH подвижной фазы. В хроматографии на ионитах в ОН-форме, наоборот с возрастанием pH понижается удерживание подвижная фаза содержит основные буферы (фосфатные, боратные и т. п.). Если иониты используют в форме соли, что при аналитической ионообменной хроматографии бывает часто, то удерживание зависит от концентрации противоиона в подвижной фазе. Кроме буфера подвижная фаза содержит в этом случае и добавки нейтральной соли, в частности хлорида натрия или хлорида калия. Для подавления неионогенных взаимодействий разделяемых веществ с матрицей ионита иногда в подвижную фазу добавляют органические растворители, чаще всего алифатические спирты. [c.249]

Рассмотрим некоторые другие процессы с предшествуюш,ей поверхностной нротонизацией. На рис. 36 точками показаны кинетические поверхностные токи восстановления 1,46 мМ раствора оксима фенилацетальдегида в цитратно-фосфатном буферном растворе с pH 6,4 в присутствии 10% этилового спирта (харак- [c.172]

Все нитроалканы сравнительно легко восстанавливаются на р. к. э. [1—5]. В водных и водно-органических средах в кислых растворах на полярограммах нитроалканов наблюдается обычно одна диффузионная волна, которая с ростом pH сдвигается к отрицательным потенциалам. В цитратно-фосфатном буферном растворе (с добавлением Na l до концентрации до 0.2 н.) при pH 4 величины 1/2 для нитрометана, нитроэтана, 1-нитропропана и 2-нитропропана равны соответственно —0,67 —0,71 —0,65 и —0,58 В (н. к. э.). [2]. идпако величина Еу, зависит как от концентрации деполяризатора — с ростом ее Е становится отрицательнее [3], так и от протонодонорных свойств буферного раствора (т. е. от при-)0ды компонентов буфера и буферной емкости при постоянном эН) — с ростом последних Еч становятся менее отрицательными. 6]. [c.226]

Предложен метод определения ртути с применением раствора гексаметилентетрамина и ксиленолового оранжевого в присутствии цитратно-фосфатной буферной смеси ир11рИ7,5. Определяемый интервал концентраций составляет соответственно 6—И и 2— мкг мл Яg [544]. [c.120]

Из органических соединений, помимо давно применяемых водных растворов глицерина, широко используют (особенно для солюбилизации) слабые растворы сахарозы. На растворимость белков при экстракции большое влияние оказывает pH среды, поэтому в белковой химии применяют фосфатные, цитратные, боратные буферные смеси со значениями pH от кислых до слабощелочных, которые способствуют как растворению, так и стабилизации белков. Особенно широкое распространение получили трис-буферные системы, представляющие собой смеси 0,2 М раствора трис-(оксиметил)-аминометана (НОСН,)зСКН, (сокращенно обозначают трис ) с 0,1 М раствором хлороводородной кислоты в разных соотношениях. Для выделения белков сыворотки крови используют способы их осаждения этанолом (см. метод Кона), ацетоном, бутанолом и 1гх комбинации. Почти все органические растворители разрывают белок-липидные связи, способствуя лучшей экстракции белков. [c.24]

В сообщении о результатах тщательного изучения второй ступени диссоциации фосфорной кислоты в воде и в растворах, содержащих 10 и 20 вес. % метанола с помощью гальванического элемента без переноса, составленного из водородного и хлорсеребряного электродов, Эндер, Телчик и Шефер [30] высказали мнение, что активность ионов водорода является общей мерой кислотности. Однако они не предложили способа ее оценки в неводных и смешанных среда . Аналогичного вида гальванический элемент был применен Парксом, Крокфордом и Найтом [31] для определения величины раН цитратных и фосфатных буферных растворов в водно-метанольном растворителе, содержащем 10 и 20 вес. % метанола. Величина раН была определена как отрицательный логарифм активности ионов водорода (молярная шкала). Коэффициент активности ионов водорода принимает значение, равное 1, при бесконечном разбавлении в каждом из смешанных растворителей. Поэтому рйН = —lg( H-si/H) (где коэффициент активности у выражен в шкале молярности с). [c.196]

Последовательность определений, предусмотренная уравнениями (II.2Г) и (IV. И), была осуществлена Парксом, Крокфордом и Найтом [31] при нахождении ра в некоторых цитратных и фосфатных буферных растворах (с добавками хлорида) с 10и2С вес. % метанола. Аналогичным образом де Линьи с сотрудниками определяли ра оксалатных и янтарнокислых буферных растворов в водно-метанольной среде (во всей области составов растворителя) и салицилатного буфера в чистом метаноле [27, 67]. Для всех трех буферов в безводном метаноле значения ра , полученные с водородно-хлорсеребряными и водородно-бромсеребря-ными элементами, хорошо согласуются друг с другом. Среднее расхождение составляет менее 0,01 ед. pH. [c.204]

Универсальная буферная смесь (количества мл 0,1 н. раствора НС на 20 мл основного цитратно-фосфатно-боратного раствора-(-дисгиллирован-ная вода до объема 100 мл) [c.458]

В ионообменной хроматографии применяют следующие буферные растворы ацетатный, фосфатный, цитратный, формиатный, аммиачный, боратный. Селективность разделения в ионообменной хроматографии зависит от концентрации и вида буферных ионов и органических растворителей, а также от pH среды. Ионообменное разделение проходит в пределах температур от комнатной до 60°С. Чем выше температура, тем меньше вязкость подвижной фазы и тем эффективнее разделение. Однако при высокой температуре стабильность колонки или образца может быть нарушена. Многие ионообменники выдерживают температуру до 60 °С, а некоторые полимерные катионообменники — даже до 80°С. Биохимические пробы принято разделять при низких температурах, часто при 4°С, хотя в современной ВЭЖХ при быстрых разделениях вероятность разрушения образца при 20-30°С резко снижается. Повышение температуры может привести к снижению к для всех компонентов образца, а снижение ионной силы подвижной фазы может привести к обратному явлению. [c.36]

При создании назальных капель для растворения действующих веществ рекомендуется применять буферные растворы, которые способствуют увеличению химической стабильности путем подбора определенного значения pH - повышению терапевтической активности некоторых лекарственных компонентов, а также уменьшению чувства дискомфорта, связанного с осмолярностью, при введении препаратов в носовую полость. Чаще всего применяются борно-боратный, цитратный и фосфатный буферы. Однако следует отметить, что растворы борной кислоты в концентрации выше 1 % замедляют движение ресничек мерцательного эпителия, то есть влияют на его транспортную функцию. Если применяемые буферные компоненты не обеспечивают должное осмотическое давление, в раствор добавляют изотонирующие агенты в требуемом количестве. [c.403]

Методика определения в цитратном растворе сводится к следующему [1037]. Анализируемый раствор, содержащий от 1 до 10 жкг Со, должен быть почти нейтральным и иметь объем около 5 мл. Минеральные кислоты предварительно удаляют выпариванием. Прибавляют 10 мл 0,2 М раствора ли.чон-ной кислоты и 1,2 мл фосфатно-боратного буферного раствора. Последний готовят растворением 6,2 г борной кислоты и 35,6 г двузамещенного фосфата натрия в 500 мл 1 N раствора гидроокиси натрия и разбавлением полученного раствора до 1 л. pH после прибавления буферного раствора должно быть около 8 (контроль по крезолово.му красному). Далее прибавляют точно 0,5 мл раствора нитрозо-К-соли и хорошо перемешивают. Кипятят 1 мин., прибавляют 1 мл концентрированной азотной кислоты и снова кипятят 1 мин. Раствор охлаждают в темном месте и разбавляют до 10 мл, после чего измеряют оптическую плотность при 420. имк. Если предполагают пользоваться при сравнении окрасок колориметром, тогда лучше удалить избыток реагента окислением бромной водой. Для этого после прибавления азотной кислоты приливают к раствору 0,5 мл бромной ьоды, оставляют на 5 мин. и удаляют затем избыток брома кипячением раствора. Не мешают 10 мг железа и меди и 0,1—0,2 мг никеля. [c.140]

Рис, 8. Зависимость потенциала полуволны восстановления радикалов N-окиси тетраметилпипери-дона (7) и N-окиси тетраметил-пиперидина (2) от pH (в цитратно-фосфатных и боратных буферных растворах) [c.104]

О влиянии других буферных растворов, как, например, би-фталатного, цитратного, фосфатного, на экстракцию дитизоната кадмия хлороформом имеются сведеппя, полученные радиометрнче-скими (Сс1 =) опытами [56 ]. [c.260]

Для хроматографии на целлюлозах-катионитах рекомендуется использовать анионные буерные растворы (фосфатные, ацетатные, цитратные, глициновые) с pH приблизительно на единицу ниже ИЭТ поглощаемого вещества, а на целлюлозах-анионитах — катионные буферные растворы (трис-НС1, пиперазин-НС1, этиленднаминовые, пиридиновые, имидазоловые) с pH на единицу выше ИЭТ [c.159]

Фосфатный буфер в 1%-ном этаноле, pH 12 Цитратный буфер в 1%-ном этаноле, pH 6,0 Боратный буфер в 1%-ном этаноле, pH 11,0 Аммонийный буфер в 1%-ном этаноле, pH 10,0 Тартратный буфер в 1%-ном этаноле, pH 11,0 Буферный раствор в 75% -ном этаноле, pH 1,25 0,1 в диметилформамиде 10%-ная H2SO4 в уксусной кислоте Буферный раствор в 75%-ном этаноле, pH 1,25 Фосфатный или боратный буфер в 1%-ном этаноле, pH 7,0 [c.186]

Оптимальные значения pH для физической адсорбции антигенов на ВАС в 0,15М фосфатно-цитратных буферных растворах (табл. 7.4) определены Робинсом и сотр. [79]. Антиген (300— 500 мг) растворяют в таком буферном растворе, в котором адсорбция оптимальна, и к полученному раствору добавляют 1 г (сухая масса) ВАС. Суспензию интенсивно перемешивают 30 мин магнитной мешалкой при комнатной температуре. После центрифугирования (10 мин при 1000 ) реакционную массу суспендируют в 30 мл 0,1М натрийбикарбонатного буфера, pH 8,9, и оставляют при 4 °С на 24 ч, периодически перемешивая. При этом значении pH происходит химическое связывание антигена и ВАС. Суспензию вновь центрифугируют 10 мин при 10 000 g [c.39]

Фосфатно-цитратные буферные растворы приготовляют смешением 0,2 молярного раствора двузамещенного фосфорнокислого натрия, содержащего 35,61 г Ыа2НР04-2Н20 в 1 л и 0,1 молярного раствора лимонной [c.41]

Особенно сильное влияние pH среды наблюдается при полярографировании сложных молекул типа фталимида, изатина, нин-гидрина и т. п., способных вступать в различное взаимодействие с растворителем в зависимости от pH среды. Влечек, Спалек и Крат-кий исследовали полярографическое поведение нингидрина в смесях уксусной, фосфорной или борной кислот с едким натром (буферные растворы Бриттона—Робинсона, пределы рН=2—12), фосфатных буферах (Зёренсена) и цитратно-фосфатных буферах (Мак-Ильвейна, пределы рН==2,2—8) с добавкой 0,4 М сульфата натрия. Водные растворы нингидрина в присутствии буфера Бриттона—Робинсона дают три полярографические волны. Первая волна А нечеткая и появляется только в кислых средах (при pH менее 3) Ei этой волны меняется от —0,97 до —0,93 (от рН= 1 до рН==3). Вторая волна В имеет Er от —0,805 до —1,415 в при изменении pH от 1,7 до 9,5. Третья волна С меняет Eij в пределах от —0,690 до —0,880 в (рН=1,7—7,6), постепенно уменьшаясь в размерах и исчезая при рН=8,2. В фосфатных буферах в кислых средах появляются все три волны А, В и С, причем при pH выше 3 волна А исчезает. В нейтральных и щелочных средах, кроме волн В и С, появляются новые волны D и Е при более положительных потенциалах, чем В и С. Изменения высот всех волн за исключением Е пропорциональны концентрации нингидрина. Высота волны Е не зависит от концентрации нингидрина. Сложное поведение нингидрина авторы объясняют существованием четы- [c.23]

В водных растворах ЫС1 и в щелочном хлоридно-аммиачном буферном растворе гексаметилениминная соль тиокарбаминовой кислоты дает волну восстановления с —0.4 в. В кислом цитратно-фосфатном буфере с pH 5 промежуточная соль дает волну с Е з--1,6 в. [c.203]

Зависимость скорости окисления о-аминофенола от pH раствора для разных катализаторов показана на рис. 11. Кислотность среды создавали с помощью ацетатного (для Ре, Си, Т1, Мо), фосфатного или уротропи-нового (Сг), ацетатно-оксалатного ( У), цитратно-тар-тратного (ЫЬ, Та), тартратного (Мп) буферных растворов. [c.30]

Разделение белков на катионообменниках проводят в 1— 10 мМ ацетатном, цитратном или глициновом буфере либо в растворе ацетата аммония (летучая соль). Если же разделение ведется на анионообменниках, используют трис-НС1, трис-фос-фатный и фосфатный буферы, а также раствор карбоната аммония (летучая соль). Для получения градиента ионной силы к буферным растворам добавляют соля, например ЫаС1 или КС1, не обладающие буферной емкостью. Если хроматографию проводят в градиенте pH, то при разделении на анионообменяи-ках pH уменьшают, а при разделении на катионообменниках — увеличивают. В обоих случаях ионная сила возрастает. [c.109]

Хорошие результаты (незначительный фоновый ток) дают такие буферные растворы, как фосфатные, цитратные и ацетатные. Широко используются в качестве электролитов перхлораты. Для обращенно-фазной хроматографии применяются такие типичные растворители, как спирты, ацетонитрил, тетрагидрофуран. Для стабильной работы колонки необходимо соблюдать требования к ограничению pH (обычно от 2 до 7,5) и концентрации ионов ((5 — 10) 10 моль/л) желательно, чтобы вода была деионизована. По составу элюент обычно представляет собой смесь водного буферного раствора (pH 2-7,5) и органического модификанта в соотношении от 10 до 90%. Пригото-вле1шый буферный раствор в течение 5 мин дегазируют. Затем готовят смесь буферного раствора с органическим растворителем в нужном соотношении, смесь фильтруют через фильтр Шотта и вновь дегазируют в течение 1 мин. [c.206]

Описан метод определения 4-метилэскулетин-6,7-дисульфокислоты (растворимого в воде витамина Р) в фармацевтических препаратах. Исследования проводили на фоне фосфатно-цитратного буферного раствора Мк-Эльвайна (pH = 5,3—8,1). Установлено, что оптимальными являются растворы с рН=6,1—6,9. При рН=6,5 наблюдается волна с 1/2= —1,54 в (относительно Ag/Ag l-электрода), высота которой пропорциональна концентрации. [c.198]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология