Питательный раствор для водной

ВОЙ системы обычно недостаточна. Трудности закрепления растений при выращивании по этому методу остаются и в том случае, когда корни развиваются не в водной среде, а в толще инертного материала (например, песка, гравия или пемзы), смачиваемого питательным раствором за счет капиллярных сил. При таком культивировании условия выращивания очень близки к таковым для почв и обладают всеми свойственными им недостатками. [c.353]

Основой технологии производства растений без почвы является правильное составление питательного раствора — водного раствора минеральных солей или кислот и щелочей, содержащих ионы, необходимые для нормального питания растений. Весьма важно поддерживать общую концентрацию, pH, состав и соотношение питательных ионов — наиболее продуктивные химические и физиологические свойства питательного раствора. [c.278]

Физиологическими опытами, поставленными в лаборатории Прянишникова, доказана возможность роста различных культур даже при содержании только 0,01 —0,03 мг РаОд в 1 л питательного раствора (водные культуры). Но обязательное условие питания при столь слабых концентрациях фосфатов — увеличение объема сосуда до таких размеров, чтобы общее количество фосфора было достаточным для удовлетворения потребностей растения. [c.26]

Таким образом, при испытании токсичности промышленных сточных вод и различных ядовитых веществ для одноклеточных зеленых водорослей необходимо в первую очередь подобрать, такую питательную среду, рост и развитие водорослей на которой отвечали бы задачам исследования. Применение культуральных сред, используемых для получения интенсивных культур водорослей, в токсикологических экспериментах нежелательно. Используемые в лаборатории водной токсикологии МГУ" питательные растворы Успенского № 1, модифицированная среда Успенского, предложенная нами при работе с непроточными [c.222]

Еще в конце прошлого века агрохимики подметили, что недостаток питательных веществ в почве приводит к образованию относительно большей массы корней у растений, чем при хорошей обеспеченности их всеми факторами роста. Например, на солевом питательном растворе в водных культурах корневая система развивается гораздо слабее, чем в поле. Впоследствии, однако, отмечали, что нередко минеральные удобрения в небольших дозах не повышают урожая не потому, что растения не могут их использовать, а вследствие исправления соотношения между надземной частью и корнями, так как развитие последних из-за недостатка питательных веществ было слабым и подавлялось сильнее, чем надземной массы. [c.54]

Вопрос о влиянии концентрации питательного раствора на рост и развитие растений в разные фазы жизни изучался при выращивании растений в водных культурах. В почве, в связи с присущей ей поглотительной способностью, в результате адсорбционных процессов концентрация внесенных удобрений не является строго определенной. Соли, растворенные в воде, имеют более определенную концентрацию. В тесной связи со сказанным стоит вопрос об изучении влияния на растения различного соотношения отдельных питательных элементов. Только постановкой опытов в песчаной культуре, исключая воздействие почвы, можно установить влияние корневых выделений различных растений на усвоение труднодоступных питательных веществ. Это было блестяще показано работами Д. Н. Прянишникова по изучению доступности фосфорита для разных растений. [c.550]

Системное действие соединений исследовали на очень молодых проростках, посаженных в стеклянные банки емкостью 150 мл, наполненные влажным песком и водным питательным раствором. Для того чтобы избежать проникновения вещества через поврежденные участки, которые могут появиться на корнях при пересадке растений, обработку проводили через 3 дня после пересадки. [c.234]

Вливают в колбу 500 мл водного раствора сахара и для ускорения процесса брожения прибавляют 250 мл питательного раствора, содержащего указанные количества азотнокислого калия, хлористого магния, азотнокислого кальция и кислого фосфорнокислого калия. [c.116]

Наши опыты были проведены с фасолью, ячменем, подорожником и снытью. Корни этих растений помещались как в газообразную (1% СОз), так и водную среду. В одном из вариантов таких опытов углекислота вводилась только в корневую камеру. Рис. 30 показывает, что корневая система растений, находящаяся в воздухе, поглощает из него углекислоту. Скорость поглощения увеличивается при освещении листьев этих растепий. Аналогичные результаты были получены в опытах с растениями, заключенными в камеру с питательным раствором. [c.59]

Осмотическое давление играет большую роль в процессах жизнедеятельности животных и растений. Процессы усвоения пищи, обмена веществ и т. д. тесно связаны с различной проницаемостью тканей для воды и тех или иных растворенных веществ. Типичные клетки образованы из протоплазменных мешочков, наполненных водными растворами разных веществ (клеточный сок), осмотическое давление которых на границе с водой обыкновенно лежит в пределах 4—20 атм. Если эти клетки погружены в воду или в раствор меньшей концентрации, чем их содержимое, то вода проникает в клетки, создавая в них гидростатическое давление, называемое тургором. Это давление создает прочесть и устойчивость живых тканей растений и животных. Осмотическое давление играет роль механизма, подающего клеткам питательные растворы и воду в высоких деревьях они поднимаются на десятки метров вверх от корней, что отвечает осмотическому давлению в несколько десятков атмосфер. [c.110]

Растворы питательных солей, водная вытяжка суперфосфата и растворы кислот готовят в отдельных емкостях и подают в определенном количестве к охлажденной барде. [c.217]

В дальнейшем было обращено внимание на содержание в почве алюминия, которое оказалось далеко не одинаковым при тех же значениях pH (в кислом интервале) различных почв. В водных культурах при pH около 4 даже в концентрации 2 мг на 1 л питательного раствора алюминий угнетает развитие большинства культурных растений (сахарной свеклы, льна, яровой пшеницы, ячменя, гороха и др.). Люпин, озимая рожь, картофель и некоторые другие культуры отличаются устойчивостью к алюминию в питательном растворе. Следовательно, отношение различных растений к кислой реакции и содер канию в растворе алюминия довольно хорошо коррелирует. [c.61]

В условиях водных культур труднорастворимые соединения оседают на дно сосуда, и питание ими идет менее интенсивно поэтому в случае, когда изучаются труднорастворимые соединения или возможно их образование при изменении состава питательной среды во время вегетации растений, предпочтительнее проводить опыт в песчаной культуре. По этой же причине в водных культурах растения часто страдают от хлороза вследствие гидролиза солей железа и выпадения гидрата окиси железа или же вследствие образования малорастворимых соединений железа. Учитывая существующие различия между песчаной и водной культурой, экспериментатор может выбрать ту или иную модификацию в зависимости от темы и схемы опыта. Постановка опыта в водной культуре предпочтительна в тех случаях, когда по характеру исследования нужна более гарантированная чистая среда, когда требуется полная смена питательного раствора во время вегетации когда в процессе вегетации необходимо временное помещение растений в иной питательный раствор, также удобно применять водные культуры. [c.503]

Водные культуры (рис. 81) более трудоемкие, чем песчаные или почвенные культуры. Сосуды для постановки водных культур представляют собой широкогорлые банки емкостью от 4 до 8 л. В некоторых случаях при постановке опытов с такими культурами, как кукуруза, подсолнечник, клещевина, табак, сахарная свекла, используют обычные стеклянные вегетационные сосуды большого объема. Сверху сосуды закрывают деревянными пробками, у которых нижний диаметр равен точно диаметру сосуда или горлу банки, а верхний диаметр на 0,5 см шире и примерно равен внешнему диаметру сосуда. В пробке делают ряд отверстий диаметром 1,5—2 см, а иногда и шире для помещения в них стебля растения. Одно отверстие в центре пробки слу жит для закрепления каркаса и другое отверстие используют для стеклянной трубки, через которую продувают воздух. На сосуды надевают двойные чехлы, сшитые из белой хлопчатобумажной ткани с черной подкладкой. Это делают с целью уменьшения нагревания от солнца, а также чтобы в питательный раствор не проникал свет и в нем не развивались водоросли. [c.506]

Установка для вегетационного опыта в текучих растворах показана на рисунке 82. Из особого резервуара нри помощи сифона в сосуды, наполненные песком, непрерывно подается питательный раствор нужного состава. В сосудах, на дне имеется отверстие, сквозь которое вытекает жидкость, просочившаяся через весь слой песка в сосуде. Имея запас свежего питательного раствора в бутыли и регулируя скорость притока раствора в сосуд, а следовательно, и оттока, можно в песке осуществлять постоянное возобновление питательной смеси с постоянной концентрацией и реакцией. Кроме песчаных текучих культур, применяются также водные текучие культуры, но методика их проведения сложнее. [c.508]

Во многих случаях требуется умение приготовить буферный раствор на заданное значение pH (например, питательный раствор для выращивания водных сельскохозяйственных культур и т. д.). [c.207]

На четвертый день наблюдалась, собственно, та же самая картина, что и на третий день. Таким образом четырехдневное пребывание растений ячменя в питательных растворах - , содержащих различное количество радиоактивного стронция 8г , показало, что его депрессивное действие на рост и развитие растений (в условиях водных культур) наступает тогда, когда концентрация этого изотопа достигает порядка 0,8 микрокюри. Концентрации, превышающие эту величину, вызывают вначале повреждение растений, а затем — его гибель. [c.116]

Изучая интенсивность восстановления нитратов при различных условиях питания растений, мы установили, что восстановление нитратов происходит более энергично в момент.их поступления в растение и неизмеримо слабее тогда, когда нитраты уже более йли менее продолжительное время находились в тканях растений. Это удалось показать таким образом растения до экспозиции их на N 5 выращивались в водных культурах на нитратном (немеченом) источнике азота, и в этих условиях в тканях растений накапливались в значительных количествах нитраты. Затем растения переносились на питательный раствор, азот в котором был представлен меченным по N азотнокислым кальцием. Одновременно на такой же раствор переносились и растения, которым до этого давался не нитратный, а аммиачный азот. [c.240]

По данным исследований водных культур, поглощение магния ячменем начиналось с первых моментов его развития и прекращалось в фазе полной зрелости. Максимум поглощения приходился на период от выхода в трубку до начала созревания. Использование магния ячменем было невысоким и составляло от 6 до 15%, в то время как использование кальция было в 2 раза больше. В другом опыте [86] полное исключение магния из питательного раствора в различные фазы развития оказывало сильное отрицательное влияние на урожай ячменя, особенно в начале кущения и стеблевания. Выключение магния и в поздние сроки (в начале восковой спелости) заметно снижало урожай. [c.28]

Какие же свойства питательных растворов заслуживают особого внимания агронома Можно прежде всего назвать следующие состав и формы соединений, концентрация и уравновешенность, реакция и ее стабильность, осмотическое давление. В настоящее время известны многие десятки питательных растворов, предложенных и испытанных для выращивания основных культур. Мы рассмотрим только две питательные смеси Гельригеля для водных и песчаных культур и Прянишникова для песчаных культур (обе должны дополняться микроэлементами). [c.43]

Интересно, что в работах авторов того времени отмечалось в виде отдельного тезиса, что растения водных культур достигли полного развития, не имея другого источника углерода, кроме углекислоты атмосферы. Следовательно, еще в 60-х годах считалось нужным окончательно констатировать эту независимость питания растений от углерода почвы. Еще в 1861 г. Сакс вводил в питательный раствор экстракт гумуса и убедился, что это не содействовало росту. [c.39]

Водная культура растений (или собственно гидропоника). Плоский водонепроницаемый бак различной величины в зависимости от особенностей выращиваемого растения покрывают специальной сеткой или крышкой с отверстиями. На сетку помещают слой подстилки (стружка, мох, торф, пемзовая крошка, рисовая шелуха, солома и пр.), в которую высевают семена и.т1и сажают рассаду. В случае применения крышки с отверстиями рассаду или молодые растения укрепляют в отверстиях с помощью ватной пробки. В бак подают раствор с таким расчетом, чтобы между сеткой (или крышкой), из которой свисают корни растений, и поверхностью питательного раствора осталось свободное пространство — влажная воздушная зона высотой от 1,5 до 10 см, в зависимости от возраста растений и величины корневой системы. Корни укрепленных на крышке бака растений находятся, таким образом, в трех слоях среды верхнем — подстилке среднем — воздушном, обеспечивающем их кислородное питание нижнем — водном растворе, откуда растения поглощают воду и питательные соединения. Систематически в раствор вдувают воздух и периодически меняют питательный раствор. [c.273]

Основой взаимодействия являются вещества, образуемые в различных органах растений и выделяемые в окружающую среду. Например, губительное действие, оказываемое молочайником и осотом полевым на свекловичные растения, зависит от веществ, заключающихся в подземных органах этих сорняков. Высоцкий (1957) показал, что прибавление водной вытяжки из корневищ молочайника (250 г л) к питательному раствору, в котором выращиваются проростки сахарной свеклы, приводило последние к гибели. Аналогичное, но несколько более слабое действие оказывала водная вытяжка из корневищ осота. [c.11]

Тщательно отмытые от питательного раствора водоросли помещают в сосудик с 5—7 мл 0,1 М карбонатно-бикарбонатного буфера, который создает в манометрическом сосудике насыщающую фотосинтез концентрацию углекислоты 78,7X10 жл в водной фазе и около 0,3% в воздушной. Известно, что насыщающей для большинства растений является концентрация СО2, равная 0,3%, и что pH 9,4 и осмотическая сила буфера не изменяют интенсивности фотосинтеза (Рабинович, 1953). Таким образом, буфер представляет собой достаточно благоприятную среду для того, чтобы на время опыта помещать водоросли непосредственно в буфер. Плотность суспензии водорослей не должна превышать 20 млн. кл/мл при толщине слоя 1,0 см. Испытываемые вещества вносятся или непосредственно перед измерением в сосудик, или в опытные колбы с водорослями, откуда отбирается определенное количество водорослевых клеток, которые отмываются от питательного раствора и помещаются в буфер. Для установления темнературного равновесия, т. е. [c.229]

Твердые среды. Для приготовления твердых сред к жидким питательным растворам добавляют особые вещества, которые придают им желеобразную консистенцию. Желатину применяют для этой цели лишь в отдельных случаях, так как она имеет слишком низкую точку плавления (26-30° С) и, кроме того, разжижается многими микроорганизмами. Почти идеальным средством для получения твердых сред служит агар, который Гессе, сотрудник Р, Коха, ввел в бактериологическую практику в 1883 г. Агар-полисахарид сложного состава из морских водорослей, в сильной степени поперечносшитый. Его добавляют к водным растворам в концентрации 15-20 г/л. Плавится агар только при 100°С, но при охлаждении остается жидким вплоть до 45 С. Разлагать его способны лишь немногие бактерии. В тех случаях, когда требуются твердые среды, не содержащие органических компонентов, применяют силикагель. [c.179]

Опыты с кукурузой в водной культуре при возрастающей концентрации алюминия [на каждый литр питательного раствора от 10 до 100 мг А12(804)з-I8H2O] показали, что рост и урожайность кукурузы значительно снизились, за исключением концентраций 10 и 10 , нри которых наблюдалось небольшое повышение урожайности однако росту корней причиняла вред любая концентрация. [c.583]

Растения. Медь вызывает более интенсивное развитие как корней, так и наземной части растений, чем в нормальных условиях. В питательном растворе концентрация 10 лег/л СиО действует вредно, концентрация 5,0 лег/л вредит только определенным видам растений [62]. При опытах в водной среде с горохом 0,000000249% USO4 оказывает вредное действие, в почве же, наоборот, стимулирует рост растений и в больших концентрациях [63]. [c.602]

Заключения Эмерсона и Льюиса согласуются с данными Даниэльса и сотрудников [20], которые выращивали hlorella, добавляя к озерной, водопроводной или дестиллированной воде водные вытяжки из почвы, питательный раствор из 28 элементов или морскую воду во всех с.чучаях ке наблюдалось заметных изменений квантового выхода. [c.528]

Опыты проводились в вегетационном домике МГУ летом 1967 г. Объектом опытов был подсолнечник Саратовский 169 , выращиваемый в водных культурах в трехлитровых стеклянных сосудах на смеси Прянишникова при различных дозах азота половина сосудов в течение всего опыта получала 7г нормы азота (7г N), а другая половина — 5 норм (5 N). pH питательного раствора все время поддерживался около 6,2. Растения были высажены на питательную смесь в начале июня (13.VI), а убирались во время цветения (варианты с 5 N — 8.VIII, а варианты с 7г N — 21.VHI, соответственно цветению в разное время). [c.18]

Важной особенностью корневой системы является ее избирательная способность, т. е. способность растений концентрировать в своем организме необходимые питательные вещества в большем количестве, чем они находятся в питательном растворе. Например, в питательной среде находится соль МН4С1, которая в водном растворе диссоциирует с образованием ионов ЫН4+ и ионов С1 . Азот нужен растениям в несравненно большем количестве, чем хлор. Азот используется для образования аминокислот, аспарагина, белков и других сложАлх органических соединений. В этом процессе он как бы выходит из реак- [c.16]

Для изучения роли калия в использовании растениями аммиачного азота были проведены опыты с использованием меченного изотополмг N 5 сульфата аммония. Растения овса предварительно выращивали в условиях водных культур на растворах с очень низким содержанием калия — 0,05 г К2О на сосуд емкостью 5 л и на растворах с нормальным содержанием калия— 0,50 г К2О на сосуд. И в том и в другом случае в качестве источника азота вносили кальциевую селитру из расчета 0,3 г на сосуд, а также все другие необходимые для растений макро- и микроэлементы в оптимальных дозах. Через 3 недели после закладки опыта растения пересаживались на новые питательные растворы, азот в которых был представлен в форме меченого сульфата аммония с содержанием 12,5% избытка атомов N 5. Во время опыта реакция раствора поддер- [c.151]

Опыты были поставлены в водной культуре на питательной смеси Гельригеля. Деятельность корневой системы оценивалась по поглощению воды и минеральных соединений (фосфора и азота нитратов) из наружного питательного раствора через сутки после впрыскивания. Содержание фосфора в среде определялось методом Труога-Мейера, азота нитратов ди-сульфофеноловым методом. Опыты проводились в условиях нормальной естественной освещенности (весенне-летний и начало осеннего периоды). [c.262]

Циклическая гидроксамовая кислота XXII была выделена из высших растений [58], но ее биологическая роль неизвестна. Однако по биопробе с Arthroba ter JG-9 была обнаружена сидеро-хромная активность в водных экстрактах из листьев томата, латука, цветной капусты, лука-порея и капусты и в экстрактах корней моркови [59]. Ферриоксамии В переходит в листья томата при выращивании в питательном растворе [78]. [c.241]

Первый опыт в этом направлении проводился с кукурузой, которая выращивалась в водной культуре при искусственном освещении лампами дневного света иа питательной смеси Гельригеля. На 15-й день после посева группа проростков (50 шт.) помещалась на четыре дня в сосуды, содержащие радиофосфор в форме фосфорнокислого натрия в количестве 100 (хС иа сосуд. Через четыре дня корни растений были отмыты, и они до месячного возраста выращивались на обычной питательной смеси.. Р , поступивший в растения в течение четырех дней, в последующие 11 дне11 подвергался в составе клеток растения использованию и перегруппировке и несомненно вошел в состав всех фосфорных фракций. Вторая группа растений убиралась одновременно с первой, однако срок внесения Р был иным радиофосфор вносился в питательный раствор этих растений лишь за 30 часов до их уборки и входил, таким образом, в состав только тех веществ и соединений, которые синтезировались в предшествовавший уборке период. [c.62]

Результаты ряда исследований показывают, что Ы-деметили-рование гербицидных мочевин может протекать в листьях, корнях и даже стеблях растений. К- Свенсон и Г. Свенсон [85] инкубировали кусочки листьев хлопчатника, подорожника, сои и кукурузы в водных растворах меченных по углероду монурона и диурона. Листья всех видов растений, за исключением кукурузы, полностью или частично деметилировали гербицидные соединения. Гайссбюлер [87] инкубировал изолированные корни вики в стерильных условиях в питательном растворе, содержащем хлороксурон- С, и обнаружил значительные количества частично и полностью деметилированных метаболитов как в корнях, так и в питательной среде. Срезанные надземные части конских бобов и фасоли поглощают в тех же условиях только небольшие количества гербицида и в дальнейшем менее активно его метаболизируют. Присутствие метаболитов в стеблях срезанных растений указывает, что даже клетки стебля способны в ограниченной степени метаболизировать хлороксурон, если считать, что базальное передвижение продуктов метаболизма из листьев отсутствует. [c.106]

I—5 мкл 96%-пого основного раствора далапона-2- С 2 — 5 лкл неочищенного 2,2,3-трихлор-пропионата-2-> С (ТХП) 3 — 5 л/сл далапона + 5 л(сл ТХП 4-водный экстракт корней хлоп-чатника, обработанного далапоном 5 —экстракт 4 + далапон б —водная капля (из эфирного экстракта) питательного раствора, на котором рос обработанный далапоном хлопчатник 7-экстракт +далапон 5 —водный экстракт листьев сорго, обработанных далапоном [c.210]

Задачи, которые решаются при помощи вегетационных опытов в водных культурах, в общем те же, что и в песчаных. Проводятся эти опыты в специальных широкогор-лых банках или обычных стеклянных вегетационных сосудах. В горлышко банки вставляются деревянные крышки с отверстиями, число которых соответствует числу растений. Для защиты корневых систем растений от повреждающего действия света и перегрева, на сосуды натягиваются двойные чехлы — белые снаружи и черные внутри. В банки наливается вода (водопроводная или дистиллированная), в которую вносится питательная смесь. На протяжении опыта производится регулярная смена растворов ежедневно питательный раствор продувается для обеспечения корней кислородом. [c.397]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология