Фенолиндофенол

В 2—3 большие пробирки (длина 150 мм, диаметр 20 25 мм) пипеткой вносят по 5 -10 мл окрашенной вытяжки, добавляют по 5- 6 мл чистого хлороформа или дихлорэтана, после чего титруют раствором 2,6-дихлор-фенолиндофенола, геремеп1ивая жидкость стеклянной палочкой с загнутым концом. Титрование заканчивают при появлении розового ократииания слоя органического растворителя. [c.91]

Как и пеницилловая кислота, характеризующаяся наличием легко раскрывающегося лактонного цикла, так и аскорбиновая кислота не содержат свободной карбоксильной группы. Однако наличие двух энольных гидроксилов обусловливает кислотные свойства аскорбиновой кислоты. Аскорбиновая кислота характеризуется способностью к обратимому окислению в дегидроаскорбиновую кислоту либо при титровании в кислом растворе таким реагентом,, как фенолиндофенол, либо в кислом или нейтральном растворах—иодом. Окисление может быть проведено также кислородом в присутствии следов меди в водном растворе при физиологическом pH. Однако в этих условиях окисление происходит более глубоко и в конечном счете приводит к разрушению соединения. Дегидроаскорбиновая кислота может быть восстановлена сероводородом или иодистоводородной кислотой в аскорбиновую кислоту. [c.151]

Последний дает с кислотами и щелочами соли, в которых молекула фенолин-дофенола становится соответственно катионом или анионом. Эти, также хиноид-ные ионы, окрашивают раствор в синий или зеленый цвет. При разбавлении кислого раствора водой в результате гидролиза образуется свободный фенолиндофенол красного цвета (ср. опыт 221). [c.240]

Путем измерения окраски образующегося индофенолята при помощи спектрофотометра или электрофотоколориметра можно определять активность фермента. В дальнейшем был описан синтез большого ряда эфиров замещенных фенолиндофенолов, исследованы их строение и каталитическая активность холинэстераз в реакциях гидролиза этих эфиров [64—66]. При этом установлено, что незамещенный индофенилацетат гидролизуется как холинэстеразой, так и ацетилхолинэстеразой примерно с одинаковой скоростью. [c.155]

Крамер [13, 17] наблюдал, что красители малахитовый, зеленый, кристаллический фиолетовый, метиленовый голубой и дихлор-фенолиндофенол — в растворе Р-циклодекстрина дают более интенсивный голубой цвет, чем в воде или глюкозе, при той же концентрации красителя. В спектрах поглощения этих красителей в (0,5 1)%-ном растворе Р-циклодекстрипа усиливается максимум поглощения в области 600 ммп и в случае кристаллического фиолетового или дихлорфенолиндофенола сдвигается на 10—20 ммп в сторону длинных волн. Крамер приписывает все изменения спектра высокой плотности электронов на внутренней стороне кольца молекулы декстрина, которая действует на включенные молекулы красителя как основание Льюиса. Рассмотрение молекулярных структур этих красителей позволяет считать, что в циклодекстрипо-вое кольцо может войти только часть молекулы красителя. Молекула кристаллического фио.четового, например, имеет структуру [c.554]

Работа № 36. Восстановление аскорбиновой кислото феррицианида калия, метиленовой сини, 2,6-дихлор фенолиндофенола и молекулярного йода. [c.337]

Индикаторы для биологических систем. [9]. Было проведено большое число исследований веществ, обладающих свойствами, необходимыми для того, чтобы они могли служить удовлетворительными окислительно-восстановительными индикаторами. Эти работы показали, что для практических целей целесообразно подразделить такие индикаторы на две группы 1) индикаторы с относительно низким потенциалом, например от — 0,5 до-Ь 0,3 в в нейтральных растворах, которые особенно пригодны для изучения биологических систем, и 2) индикаторы с более положительным стандартным потенциалом, которые применяются в объемном анализе. Большинство соединений, предложенных в качестве окислительно-восстановительных индикаторов для биологических целей, являются одновременно кислотно-щелочными индикаторами, обладающими различной окраской в кислотном и щелочном растворах. Они часто имеют красновато-коричневую окраску в кислой среде, т. е. при высоких концентрациях водородных ионов, и синюю в щелочных растворах, т. е. при низких концентрациях водородных ионов. Поскольку первая окраска менее интенсивна, чем последняя, предпочтительно пользоваться индикатором в состоянии, отвечающем его синей окраске. В биологических системах обычно не представляется возможным изменять концентрацию водородных ионов далеко в сторону от нейтральной точки, т. е. pH = 7, и поэтому требуются индикаторы с относительно сильными кислотными или слабыми основными группами с тем, чтобы их щелочная окраска могла сохраняться при относительно высокой концентрации водородных ионов (см. гл. X). Большое число подобных индикаторов было синтезировано Кларком с сотрудниками путем введения атомов галоидов в одну из фенольных групп фенолиндофенола, например 2,6-ди-хлорфенолиндофенол. Кроме соединений этого ряда, другими индикаторами, представляющими интерес при биологических исследованиях, являются родамины, например зеленый Бинд-шедлера и толуиленовый синий тиазины, например фиолетовый Лаута оксазины, например крезиловый синий и этиловый [c.388]

Роль кислорода в позеленении исследовали Гортикова и Любименко [190] и Гортикова и Сапожников [215], исходя в своих исследованиях из теории Любименко, считающего позеленение окислительным процессом. Они обнаружили, что позеленение этиолированных проростков пшеницы не происходит в отсутствие окисления, но что молекулярный кислород можно заменить, например, 2-6-дихлор-фенолиндофенолом. Гортикова и Сапожников [218] исследовали влияние воды на этот процесс. [c.432]

Соответствующее влияние растворителя не обнаружено у сходных по строению Биншедлеровского зеленого XXXI и фенолиндофенола XXXII, в которых наиболее существенным является резонанс между равноценными или почти равноценными структурами без разделения зарядов. [c.226]

Материалы витаминный препарат (драже) индикатор — 2,6-дихлор-фенолиндофенол 0,01 н. раствор йода 1-процентный раствор крахмала (приготовляется на насыщенном растворе поваренной соли). [c.69]

В качестве окисляемого субстрата берут янтарную кислоту, а в качестве акцептора водорода краситель синего цвета 2,6-дихлор-фенолиндофенол, который восстанавливается в бесцветную лейко-форму. Конкурентное торможение фермента вызывает структурный аналог янтарной кислоты — малоновая кислота. [c.146]

Рис. 2. Изометрический график поверхности, описывающий систему, состоящую из 2,6-дибром-фенолиндофенола и его восстановителя и [Н ] при различных pH.

Первые наблюдения в этой области принадлежат Р. Хиллу (1940 г.). Внося во взвесь хлоропластов соль КзРе(Сг04)з, содержащую трехвалентное железо, автор показал, что под влиянием освещения эта смесь выделяет кислород и одновременно происходит восстановление Ре + и Ре +. Позднее выяснилось, что в качестве окислителя в реакции Хилла могут быть использованы хиноны, фенолиндофенол, 2,6-дихлорфенолиндофенол и др. [c.161]

Краситети. Для редокс-систем, имеющих достаточно отрйца-тельный редокс-потенциал, в качестве окислителей можно с успехом применять Г-формы устойчивых красителей с достаточно высокими положительными редокс-нотенциалами. Автор особенно рекомендует фенолиндофенол. Последнего нет в продаже, но е о легко приготовить [40]. Другие красители класса индофенола, нмеющиеся в продаже, должны быть проверены по стандартным веществам, так как продажные препараты редко представляют собой чистые соединения. [c.435]

Из громадного числа предложенных в разное время химических методов определения витамина С наиболее достоверным является определение витамина при помощи титрования раствором 2,6-дихлор-фенолиндофенола. Однако в том виде, как он предложен Тильман-сом (41), метод этот не может быть применен для точных определений. Дело в том, что многие вещества, находящиеся в естественных продуктах (глютатион, цистеин, танниды, некоторые углеводы и соли и т. п.), так же восстанавливают 2,6-дихлорфенолиндофе-нол, как и аскорбиновая кислота. Поэтому нужны определенные условия, исключающие влияние этих веществ, чтобы результаты титрования совпали с истинным содержанием витамина С в испытуемом объекте. Многими авторами и учреждениями в свое время были предприняты попытки таким образом модифицировать метод Тильманса, чтобы он давал результаты, наиболее близко совпадающие с данными биологического определения (на морских свинках). [c.162]

Гетероциклические соединения Т.1 (1953) -- [ c.151 ]

Гетероциклические соединения, Том 1 (1953) -- [ c.151 ]

Руководство по малому практикуму по органической химии (1964) -- [ c.240 ]

Объёмный анализ Том 1 (1950) -- [ c.142 , c.146 ]

Руководство к малому практикуму по органической химии (1975) -- [ c.215 ]

Теория резонанса (1948) -- [ c.226 ]

Краткая химическая энциклопедия Том 2 (1963) -- [ c.261 ]

Химия красителей Издание 3 (1956) -- [ c.323 ]

Теоретические основы органической химии Том 2 (1958) -- [ c.434 ]

Витамин С Химия и биохимия (1999) -- [ c.79 ]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология