Карбонатные буферы концентрация в растворе

Количество углекислоты, которое может выделить карбонатный буфер. Карбонатные буферные растворы могут поддерживать концентрацию углекислоты на определенном уровне при постоянном поглощении ее листом лишь ограниченное время. В зависимости от соотношения [c.27]

Приведенный выше (стр. 27—30) разбор физико-химических основ выделения углекислоты из карбонатных буферных растворов позволяет объяснить, почему в присутствии буфера, создающего достаточную для насыщения фотосинтеза концентрацию углекислоты, все же может наблюдаться голодание листа в отношении углекислоты. Причиной этого может быть недостаточная по сравнению с фотосинтезом скорость выделения молекул углекислоты из буфера в газовую фазу сосудика, в которой находится лист. Кроме того, возможно, что длительность определения была таковой, что в процессе фотосинтеза лист поглотил больше углекислоты, чем могло выделить без снижения ее концентрации имеющееся в сосудике количество буфера. [c.73]

Бимолекулярные константы скорости фосфорилирования ХТ под действием исследованных ФОИ, в зависимости от pH, приведены в таблице I, Обращает на себя внимание, что к для заряженного соединения при pH = 9,04 в карбонатном буфере в 1,9 раз больше, чем в трис-буфере , На рисунке I показана зависимость к от концентрации кнсо в реакционной смеси, полученной смешиванием карбонатного и трис—НС1 буферных растворов в разных отношениях (оба компонента имели перед смешиванием /J= 0,05 и pH = 9,04). Из рисунка видно, [c.840]

Для определения Се в присутствии рзэ предложено множество методик, в которых используются в основном реакции окисления-восстановления при титровании или колориметрических измерениях (см. стр. 155, 192). Все они применимы для анализа смесей рзэ, однако нет надобности использовать, например, слишком чувствительные цветные реагенты для определения сравнительно больших количеств церия. Для этого удобно использовать реакцию образования пероксидного соединения в щелочной среде (карбонатный буфер, pH 10,5). При концентрации рзэ в растворе не более 2 мг1мл методика дает возможность с точностью до +2—3% определять от 0,01 до 0,6% Се в смеси по измерению поглощения при 304жл с с кюветой I 10 мм [142]. После окисления персульфатом в 0,Ш Н2504 подобная же спектрофотометрическая методика (Л, = [c.231]

Таким образом, мы вынуждены выбирать одно из двух или применять клетки, суспендированные в карбонатном буфере, работая при высоком нефизиологическом pH, или пользоваться кислым раствором с нефизиологически высоким содержанием двуокиси углерода, например фосфатным буфером, находящимся в равновесии с воздухом, содержащим 1—5% СО -, без такой высокой начальной концентрации запас двуокиси углерода в растворе, лишенном карбоната, будет на свету быстро исчерпан. [c.257]

Для многоклеточных объектов даже наличие сильно перемешиваемой среды с бикарбонатным буфером, повидимому, не всегда гарантирует от истощения двуокиси углерода. Вассинк [105], например, нашел, что фотосинтез 5-миллиметровых дисков, вырезанных из листьев, суспендированных в карбонатном буфере № 9 (7,9 10" моль/л СОд) и встряхиваемых в аппарате Варбзфга, все же был сильно лимитирован в отношении двуокиси углерода . Концентрация равновесия двуокиси углерода в атмосфере над этим буфером равняется 0,25 /q (см. табл. 18 и 21, т. I). Увеличивая начальное содержание двуокиси углерода в воздушном пространстве в некоторых случаях до 2 / о, а в других даже до 9°/о, Вассинк смог получить насыщение двуокисью углерода. Однако без точного знания размеров прибора трудно оценить конечную концентрацию двуокиси углерода и pH растворов в его опытах. [c.322]

Разделение неэлектролитов (или слабых электролитов) посредством вымывания водным раствором соли, обычно умеренной или высокой концентрации, называется высаливающей хроматографией. Проведенное Секи [5] разделение фенола и трех крезолов с применением разбавленного карбонатного буфера не является примером метода высаливающей хроматографии, так как концентрация карбоната была слишком низка для э( ектив-ного высаливания кроме того, разделение зависело от буферного действия смешанных карбонатов. [c.238]

При изучении миграционных характеристик токсинов с помощью электрофореза использовались буферные растворы со значениями pH от 2,0 до 10,0. Очищенный токсин из моллюсков хорошо передвигался в электрическом поле, что подтвердилось и реакцией Яффе. Наилучшее разделение наблюдалось в би-карбонатном буфере при pH 8,6 и напряжении 100 вт. Однако токсин, выделенный из G. atenella, в этих условиях не мигрировал, возможно, из-за высокой концентрации солей или других причин. Кроме того, обнаружено, что очищенный моллюсковый токсин утрачивает миграционную способность при добавлении к нему соли или препарата токсина из G. atenella. [c.48]

Буферными растворами (буферами) называют растворы, в которых концентрация ионов водорода (или выражающий ее водородный показатель pH) не изменяется при и.х разбавлении и мало изменяется при добавлении небольшого количества сильной кислоты или щелочи. В качестве буферных растворов используют обычно растворы слабых кислот или слабых оснований в присутствии их солей. Например, ацетатный буфер — это раствор уксусной кислоты и ацетата натрия, аммиачный буфер — раствор аммиака и хлорида аммония. Иногда в качестве буферного раствора применяют смесь кислой и средней солей, например карбонатный буфер NaH Oз+Na2 O ,. В этом случае при диссоциации первая соль образует кислоту НСО , а вторая является солью данного аниона. [c.79]

Кантареро и соавторы исследовали сорбцию ряда меченных 1 белков на стенках пробирок из полистирола в зависимости от концентрации белковых растворов. Сорбция шла из тонкого слоя, при вращении пробирок в течение 3 ч при 37°. Белки были растворены в 0,1 М карбонатном буфере, pH 9,6. Затем стенки пробирок тщательно промывали 0,9%-ным раствором Na l с детергентом (0,05% Твин-20). Для семи белков (БСА, овальбумина, лактальбумина и четырех различных иммуноглобулинов) было найдено, что вплоть до концентрации 1 мкг/мл количество прочно сорбированного белка линейно зависело от исходной концентрации белкового раствора и составляло от 10 до 80% (IgM) вносимого в пробирку белка. Далее следовало насыщение или дополнительное связывание уже. за счет взаимодействия типа белок—белок. Первоначальное (линейное) связывание покрывает поверхность полистирола монослоем молекул белка [ antarero et al., 1980]. [c.290]

Методика проведения ИФА в лунках планшета. Первый этап ИФА — сорбция соответствующего разведения АТ или АГ (в концентрации 10 — 20 мкг/мл) в карбонатно-бикарбонатном буфере (в объеме 0,1 мл) на твердую фазу в течение 1 - 2 ч при 37 °С и 10 — 12 ч при 4 °С (сенсибилизация). Затем отмывают лунки (для удаления несорбированного на носителе АТ или АГ) водопроводной водой, отмывочным буфером с 0,05 % твина-20 в течение 5 мин (два раза) при комнатной температуре. После этого вносят в каждую лунку (твердую фазу) по 0,1 мл 1%-го раствора БСА (бычьего сывороточного альбумина) на КББ и инкубируют в течение I ч при 37 °С для закрытия участков поверхности лунок, оставшихся свободными после сенсибилизации. Лунку отмывают от несвязанного БСА и вносят исследуемый материал (АГ или АТ) по 0,1 мл в разведениях на фосфатно-солевом растворе (pH 7,2) с 0,05 % твина-20. Каждое разведение материала вводят в две лунки и помещают в термостат на 1 — 3 ч при 37 °С. Отмывают непрореагировавшие в иммунной реакции АГ или АТ и вносят по 0,1 мл коньюгированных АТ против исследуемого АГ или АТ в рабочем разведении на фосфатно-солевом растворе с 0,05 % твина-20. Затем их инкубируют в течение 2 ч при 37 °С. Несвязанный конъюгат трижды отмывают буфером. [c.79]

Тщательно отмытые от питательного раствора водоросли помещают в сосудик с 5—7 мл 0,1 М карбонатно-бикарбонатного буфера, который создает в манометрическом сосудике насыщающую фотосинтез концентрацию углекислоты 78,7X10 жл в водной фазе и около 0,3% в воздушной. Известно, что насыщающей для большинства растений является концентрация СО2, равная 0,3%, и что pH 9,4 и осмотическая сила буфера не изменяют интенсивности фотосинтеза (Рабинович, 1953). Таким образом, буфер представляет собой достаточно благоприятную среду для того, чтобы на время опыта помещать водоросли непосредственно в буфер. Плотность суспензии водорослей не должна превышать 20 млн. кл/мл при толщине слоя 1,0 см. Испытываемые вещества вносятся или непосредственно перед измерением в сосудик, или в опытные колбы с водорослями, откуда отбирается определенное количество водорослевых клеток, которые отмываются от питательного раствора и помещаются в буфер. Для установления темнературного равновесия, т. е. [c.229]

На потенциал полуволны и диффузионный ток восстановления Ое (IV) влияет pH раствора в пределах значений 6—12, что зависит от равновесия между ионами мета- и пентагерманиевой кислоты [13]. В 0,1 УИ растворе трилона Б при pH 6—8 потенциал полуволны равен — 1,3 в [178]. При pH 8 —9 (боратный буфер) потенциал полуволны равен —1,5 в [179]. В растворе карбоната натрия или карбоната натрия и трилона Б потенциал полуволны равен —1,55 в [180]. Увеличение концентрации ионов хлора сдвигает потенциал полуволны в сторону более положительных значений, одновременно с этим возрастает высота волны [180]. Поэтому при определении германия концентрация ионов хлора должна быть неизменной. При определении в карбонатном растворе небольшие количества кремнекислоты не мешают, но большие количества подавляют волну германия полностью 1180]. Однако при полярографировании в 0,1 КаС1 при pH 10,2 кремнекислота не мешает что использовано для определения германия в сплавах кремния и германия 1181]. Определение германия в боратном буфере с pH 8,8—9,0 после отделения от мешающих элементов экстракцией четыреххлористым углеродом см. 1182]. Определение в боратном буфере с pH 8,37 после отделения мышьяка диэтилдитиофосфорной кислотой описано в 1183] в фосфатном в присутствии комплексона при pH 7,8 —в 1184] в карбонатном в присутствии комплексона—в 1185]. Влияние комплексообразующих органических кислот на константы диффузионного тока при полярографическом восстановлении германия см. 1186]. О поведении германия 1 ] па капающем ртутном катоде в присутствии различных неорганических и органических анионов см. также 1187]. [c.411]

В карбонатно-бикарбонатном буфере, содержащем 0,08% желатина, также наблюдается прямая пропорциональность между величиной диффузионного тока и концентрацией JO4 в растворе (при содержании J0 в пределах 0,08—10 ммоль). Этот фон удобен для определения следов J0 в иодатах. Кроме того, автор предложил косвенный метод определения ионов К после осаждения его посредством NaJ04 по волне избытка последнего (см. стр. 187). [c.409]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология