Полиены каротиноиды

В зеленых белковых препаратах стабильность каротиноидов значительно выше по сравнению с их сохранностью в растении при сушке в поле, где потери могут достигать или даже превышать 80% [411. Искусственная дегидратация люцерны значительно улучшает стабильность пигментов, но в препаратах зеленых белков они еще стабильнее [70]. [c.253]

Каротиноиды и близкие им полиены....................................220 [c.207]

КАРОТИНОИДЫ И БЛИЗКИЕ ИМ ПОЛИЕНЫ [c.220]

Превращение всех траис-каротиноидов в квазиравновесные смеси, содержащие некоторые ас-изомеры, легко осуществляется при выдерживании раствора полнена (обычно в гексане) на дневном свету в присутствии иода иди при нагревании такого раствора. Смесь можно разделить на компоненты посредством хроматографии, и повторение процесса с остатком после отделения желаемого изомера позволяет получить его с высоким выходом. Обычно продукты реакции такого типа содержат как моно-, так и ди-г ас-форму, но комбинация хроматографической и спектроскопической методик, несмотря на высокую чувствительность, не позволяет обнаружить поли-г ис-формы, что было показано при использовании искусственно приготовленных смесей, содержащих поли- ис-изомеры. [c.221]

Наибольшее значение имеют окрашенные полиены, составленные из соединенных звеньев изопрена. К ним относятся природные красящие вещества группы каротиноидов (стр. 91). [c.88]

Таблица 2. Результаты дисперсионного анализа (двухфакторного) значения гене типа мутантов и стадии развития растений для содержания хлорофилла и каротиноидов (выращивание в поле 1973 г. и лаборатории искусственного климата 1974 г.)

Для растений различных форм, выращенных в лаборатории (см. рис. 4, б), характерны очень близкие величины содержания каротиноидов в течение всей вегетации. Дисперсионный анализ подтвердил отсутствие различий по данному показателю между мутантами и исходным сортом (см. табл. 2). В целом у растений, выращенных в ЛИК, каротиноидов было значительно меньше, чем у растений, выращиваемых в поле, в связи с этим соотношение суммы хлорофиллов к желтым пигментам у первых увеличилось до 7—10. Отношение же зеленых пигментов к желтым у растений в полевых условиях 1973 г. составляло 3—4. [c.103]

Рис. 4. Содержание каротиноидов (в мг/дм ) в листьях разных ярусов (2—7) у мутантов и исходных сортов по срокам вегетации при выращивании растений в поле (А) и в лаборатории (В)

Существуют также искусственные спектральные индикаторы Аг] и АрН. Некоторые примеры таких молекул, используемых в экспериментах, показаны на рис. 4.6. Пока не описано ни одного искусственного индикатора Агр, который работал бы аналогично каротиноидам, т. е. оставался бы фиксированным в мембране и менял бы спектральные свойства при создании поля.Хо- [c.77]

После одиночной вспышки света сдвиг спектра каротиноидов исчезает со скоростью, которая коррелирует со скоростью рассеивания градиента протонов, причем она может резко возрастать при добавлении протонофора. Таким образом, несмотря на то что каротиноиды реагируют на локальные поля в мембране, измерения спектрального сдвига позволяют следить также за спадом трансмембранной разности потенциалов между водными фазами. [c.137]

В последние годы спектроскопия в видимой области спектра широко используется для изучения процессов генерации разности потенциалов внутри фотосинтетической мембраны. Так, было установлено, что в электрическом поле происходит характерное изменение поглощения некоторых пигментов (по-видимому, каротиноидов), величина которого пропорциональна напряженности электрического поля. Этот феномен получил название электрохромного эффекта. Благодаря ему оценивают градиент потенциала, возникающего внутри фотосинтетической мембраны при светоиндуцированном разделении зарядов между реакционными центрами и первичными акцепторами электронов.. [c.116]

В зависимости от окислителя разрыв цепи каротиноида может идти по одной либо по другой двойной связи с образованием альдегида (каротиналя), при этом углеродная полиено-вая цепь полученного альдегида может иметь разную длину в. зависимости от того, по какой двойной связи произошел разрыв цепи. При восстановлении каротиналей образуются спирты-ка-ротинолы. [c.387]

Углеродный скелет октадиен-3,5-диона-2,7 LXI, который действием цинка в уксусной кислоте можно восстановить в октен-4-дион-2,7 ( LXXXIX) [184], идентичен центральному участку углеродного скелета р-каротина. Оба указанных кетона интересны как промежуточные соединения для синтеза различных каротиноидов. Они использовались, в частности, Каррером для пол) ения dt-a-, p-, у- и ei-каротинов, ликопина и изоренера-тина (см. раздел ie + Се + ie = С40 , стр. 198). [c.184]

Были проведены опыты со слоями СЫ а, hl Ь и каротиноидов на стеклянных пластинках. Слои подвергались действию электрических полей с напряженностью до 10 В/см и измерялись изменения поглощения. Они оказались совпадающими с изменениями в хлоропластах, индуцированными светом. Изменение поглощения АА = AUI лиыейно зависит от изменения потенциала Aip [c.460]

Сопряженные диеновые углеводороды распадаются под ЭУ аналогично моноолефинам и образуют преймущественно группы ионов состава [СзШ]+ и [С5Ш]+ [27]. Наибол г интересной особенностью каротиноидов, содержащих сопряж1.нную полиено-вую цепь, является выброс из М+ части полиеновой цепи в виде молекул толуола (ион [М—92] + ) и ксилола (ион 1М-1061+-) [33] [c.32]

При димеризации пирофосфата геран ил гераниола 1.13 с последующим дегидрированием строится молекула углеводорода г< с-фитоена 1.16, содержащего 40 атомов углерода. Фитоен изомеризуется в ликопин 1.17 — углеводород, присутствующий в плодах томатов и обусловливающий их окраску. При дальнейщих биосинтетических превращениях полиена 1.17 образуются окращенные вещества, называемые каротиноидами. [c.18]

На пути от фитоина к ликопину возможны остановки процесса дегидрирования на промежуточных стадиях, которые показаны на схеме 65. Другие каротиноиды образуются из полиена 1.17 путем циклизации концевых десятиуглеродных звеньев с одного или с обоих концов молекулы, как показано на той же схеме для случая а-каротина 2.916. На дальнейших этапах биосинтеза могут происходить добавление изопреновых эквивалентов, окисление и перегруппировки. В результате этого возникают структурные типы каротиноидов, указанные в нижней части схемы 65. Те из них, которые содержат кислородные атомы, получили групповое название ксантофиллов. [c.257]

Спектры поглощения дифенилоктатетраена и более сложных поли-еновых соединений, включая каротиноиды, описаны в работе [55]. [c.46]

Особое внимание было уделено использованию реакции Виттига для синтеза каротиноидов и витамина А [262, 263]. Синтез несимметричных каротиноидов, таких, как а- и у-каротин, лучше всего осуществлять, пользуясь только двумя компонентами — полиено-вым альдегидом и алкилиденфосфораном. Так, у-каротин (200) может быть получен по схеме С30 + Сю = С40 [264] [c.366]

Рис. 4. Содержание каротиноидов (в ыг/дм ) в листьях разных ярусов (3—7) у мутантов п исходного сорта по срокам вегетации при выращивании в поле ( 4) и Б лабораторип Б)

На рис. 4 представлены результаты определения содержания желтых пигментов у мутантов и исходного сорта при выращивании их в поле и в ЛИК. Из рис. 4, а видно, что содержание каротиноидов у мутанта A" 5 в отдельные фенофазы было выше, чем у исходного сорта, а мутант № 26 по желтым пигментам приближался к контролю. Математический анализ доказал существование генотипических различий между мутантами и исходным сортом по содержанию каротиноидов нри выращивании их в поле в 1973 г. (см. табл. 2). Достоверность взаимодействия факторов А (генотип) и В (фепофаза) говорит о том, что в отдельные стадии развития растений в нолевых условиях у мутантов и исходного сорта содержание каротиноидов различно. Отсутствие достоверности различий по каротииоидам между мутантами и исходным сортом по фактору В говорит о том, что в отдельные стадии [c.102]

Таблица 3. Результаты дисперсионного анализа (двухфакторного) значения генотипа мутанта компактума № 12, полученного у сорта ППГ 186, и стадии развития растений для содержания хлорофилла и каротиноидов в листьях (поле, 1973 г.)

При исследовании каротиноидов и разработке метода их анализа был установлен ряд закономерностей относительно смещения полос поглощения при введении в полиено-вую систему заместителей или новых хромофоров. Можно считать, как правило, что смещение, вызванное концевой карбоксильной или эфирной группой, эквивалентно смещению, которое происходит при введении одной новой этиленовой связи (в ряду карптина 21 Л1ц), а смещение, вызванное фенильным радикалом, равно 30,5 мц метильный заместитель вызывает смещение на 5 мц. [c.363]

Каротиноиды представляют собой очень гетерогенный класс пигментов, имеющих длинные, в основном алифатические, боковые цепи. В этот класс входит около 350 соединений, которые встречаются как в хлороцластах, так и в фотосинтезирующих бактериях. Общей особенностью молекул этих соединений является центральный гидрофобный участок, имеющий систему сопряженных двойных связей, которая несет делокализованные электроны и определяет характерный спектр каротиноидов в видимой области. В экспериментах часто используют тот факт, что при образовании сильного электрического поля на сопрягающей мембране спектр поглощения каротиноидов сдвигается на несколько нанометров (рис. 6.4). Здесь следует напомнить, что мембранный потенциал всего в 100 мВ на мембране толщиной в 10 нм соответствует полю в Мембране со средней напряженностью lO B- M . Спектральный сдвиг характерен не только для каротиноидов, но в несколько меньшей степени и для хлорофилла. Электрохромные эффекты наблюдаются как в бактериях, так и в хлоропластах, где они были впервые описаны (Junge, Witt,-1968). [c.136]

Перемещение всего организма в пространстве под влиянием односторонне действующих факторов (раздражителей) называется таксисом. Этот тип движения характерен для одноклеточных жгутиковых (монадных) водорослей, для гамет и зооспор водорослей, для сперматозоидов мхов, плаунов, хвощей и папоротников. Движения осуществляются по направлению к источнику питания (или от него), для нахождения клетки другого пола хемотаксисы) либо как реакция на свет фототаксисы). Фототаксисы служат приспособлением для лучшего использования света фототрофными клетками. При невысокой интенсивности света клетка движется к свету (положительный фототаксис), при излишне высокой — от него (отрицательный фототаксис). Свет воспринимается фоторецептором с пигментной системой, рецептирующей синий свет. Координирующую функцию выполняет глазное пятно , содержащее каротиноиды и локализованное сбоку от рецептора. В процессе поступательного движения вперед клетка вращается и при каждом обороте фоторецептор на время затемняется глазным пятном . Это корригирует направление движения к свету. Сигнал с фоторецептора на жгутик, по-видимому, передается с помощью микротрубочек. [c.393]

Светозависимое перекисное окисление липидов, имеющее характер свободнорадикальной цепной реакции, является причиной повреждения мембран хлоропластов у растений. Окислительный процесс предотвращается каротиноидами, а-токоферолом. Действие антиоксидантов связано с обрывом цепной реакции, в результате чего образуются гидропероксид субстрата и обладающий низкой реакционной способностью свободный радикал ингибитора [Поберезкина и др., 1992]. Антиоксидантный эффект а-токо-ферола в мембранах усиливается аскорбатом. В присутствии аскор-бата а-токоферол может восстанавливать перекись липида до его исходной формы [Дмитриев, Верховский, 1990]. Таким образом, уровень ПОЛ в клетке находится под контролем высоко активной системы антиоксидантной защиты, куда входят низко- и высокомолекулярные соединения, роль которых в повышении резистентности живых организмов будет подробно рассмотрена ниже. [c.150]

В частности, при охлаждении на свету теплицы с проростками огурца до 5 наблюдали следующие симптомы 1) снижение фотосинтеза в течение 2 часов 2) образование продукта ПОЛ - этана 3) уменьшение содержания токоферола на 80% 4) уменьшение содержания хлорофиллов а и Ь и каротиноидов 5) уменьшение содержания глутатиона 6) уменьшение содержания аскорбата на 70%. В других экспериментах при обработке низкой температурой устойчивого к охлаждению гороха подобные изменения, напротив, не происходили (M Kersie, 1996). [c.129]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология