Нервная цепочка

Нервная система регулирует все функции организма насе комых. Различают центральную, периферическую и симпатическую нервные системы. Центральная нервная система состоит из парных нервных узлов — ганглиев, от которых отходят нервы. Нервные узлы соединяются и образуют нервную цепочку. Периферическая нервная система образована из нервов, отходящих от ганглиев центральной и симпатической нервных систем. Симпатическая нервная система регулирует работу внутренних органов и мышечной системы. [c.14]

Боковая нервная цепочка [c.52]

Рис. 10. Зависимость активности холинэстераз брюшной нервной цепочки дубового шелкопряда от концентрации ацетилхолина. Обозначения те ше, что на рис. 7.

Нервная система насекомых состоит из нервных узлов, или ганглиев, от которых отходят нервы. Нервные узлы соединяются между собой перемычками и образуют нервную цепочку (см. рис. 7). В голове над пищеводом располагается наиболее крупный надглоточный нервный узел, который называют мозгом насекомых. [c.9]

Выделение нейроактивного вещества сопровождается чрезвычайно сильной спонтанной активностью центральной нервной системы [19]. Начальный эффект тетраэтил-пирофосфата (ТЭПФ) на изолированную нервную цепочку таракана выражается в появлении мощного тока действия, продолжительность которого зависит от концентрации ТЭПФ. Хотя ТЭПФ быстро ингибирует холинэстеразу изолированной нервной цепочки, а действие нейроактивного вещества на нее неизвестно, сходство, выражающееся в чрезвычайно высоком уровне спонтанной активности после применения того или другого вещества, позволяет предположить, что нейроактивное вещество может образовываться в результате обработки ТЭПФ. [c.151]

У тараканов и раков, отравление которых ДДТ зашло настолько далеко, что оно носит необратимый характер, спонтанная активность центральной нервной системы депрессирована или почти отсутствует. Если нервную цепочку таких тараканов тщательно препарировать и промыть в физиологическом растворе, то к ней возвращается более высокий уровень спонтанной активности. В этом случае промыванием удаляются какие-то [c.159]

Другое исследование [64] о способности веществ проникать в нервную цепочку таракана было выполнено с использованием трех Ф(Х ТЭПФ, который не ионизирован, тетрама, представляющего собой основание с р/Са 8,4, и четвертичного производного тетрама, которое всегда находится в ионизированном состоянии [c.194]

Каков источник огромного избытка ацетилхолина, наблюдаемого при отравлении ФОС Колхоун [26, 28] высказал предположение, что ацетилхолин может образовываться двумя путями — при освобождении из связанного состояния во время синаптической передачи (в обычных условиях он подвергается гидролизу холинэстеразой) и путем его синтеза заново, который не связан с нервной деятельностью. Колхоун показал, что у американского таракана имеют место оба пути в виде последовательных фаз (рис. 42). После отравления ТЭПФ наблюдалось небольшое переходящее повышение содержания ацетилхолина в нервных цепочках, которое исчезало через 4 час. Это было связано с освобождением ацетилхолина в нервной системе, причем снижение уровня ацетилхолина наблюдалось к тому времени, когда повышенная возбудимость сменялась параличом. После этого содержание ацетилхолина постепенно возрастало до огромных размеров и начинало снижаться лишь через 2 суток, когда происхо- [c.290]

Из данных о зависимости степени угнетения холинэстеразы интактной нервной цепочки от pH легко было рассчитать количество проникшего в цепочку тетрама (см. рис. 24). На этом же рисунке приведена кривая диссоциации тетрама, которая показывает, какая часть вещества (в процентах) находится в неионизированной форме при любом данном значении pH. Почему эти кривые не совпадают По этому поводу могут быть высказаны два предположения — одно правдоподобное, другое очень маловероятное. Первое объяснение основано на допущении существования ионного барьера и состоит в том, что сдвиг кривой внутреннего уровня налево зависит просто от особенностей применявшейся методики. [c.195]

Если бы мы могли измерить начальную скорость, с которой внешний неионизированный тетрам проникает через ионный барьер немедленно после того, как тетрам и нервная цепочка приходят в соприкосновение, то эта скорость была бы строго пропорциональной концентрации неионизированного тетрама во внешней среде. Кривые процент неионизированного тетрама и скорость проникновения в зависимости от pH совпали бы точно. Если бы, наоборот, мы могли измерять только внутреннее содержание тетрама в тот период, когда между внутренней и наружной концентрациями установится равновесие, то эти две концентрации оказались бы одинаковыми (если допустить, что вещество обладает одинаковым сродством к внутренней и наружной среде), так как диффузия неионизированной формы продолжалась бы до тех пор, пока концентрация каждой из форм по обе стороны барьера не оказалась одинаковой. [c.195]

Рис. 24. Проникновение тетрама в инактивную нервную цепочку американского таракана.

Малоправдоподобное объяснение приведено здесь главным образом для того, чтобы дополнить общую картину явлений, которые могут наблюдаться при проникновении веществ через барьер. Представим себе, что нервная цепочка не имеет ионного барьера и ведет себя как простая липидная фаза в системе, где внешняя среда — буфер — представляет собой водную фазу. Вообразим основание, неионизированная форма которого имеет в системе липид— вода коэффициент распределения, равный 10, и которое в водной среде ионизировано на 95%. Тогда в состоянии равновесия в липидной фазе будет содержаться в 10 раз больше неионизированной формы, чем в водной, а содержание неионизированной формы в водной фазе будет составлять общего количества вещества в этой фазе. В этих условиях величина отношения количеств неио- [c.196]

Нервная цепочка американского таракана. ....... [c.289]

ДИЛ полный некроз. Во время этого второго подъема нервная цепочка находилась в состоянии электрического покоя. Как показывает рис. 42, второй подъем наблюдался и после отравления ДДТ, который не оказывает никакого влияния на холинэстеразу. [c.291]

Р и с. 42. Активность холинэстеразы и уровень ацетилхолина в грудной нервной цепочке американских тараканов, обработанных ТЭПФ (5 мкг/г) [c.291]

Центральная нервная система состоит из брюшной нервной цепочки, надглоточного и подглоточного нервных узлов. Брюшная нервная цепочка расположена под кишечником она состоит из парных нервных узлов, или ганглиев, соединенных продоль- [c.10]

Чтобы рассмотреть внутренние органы вскрытого насекомого, нужно удалить часть жирового тела, располагающегося в виде белой рыхлой массы, и разрушить сеть тонких трахей, оплетающих органы. Это делается препаровальными иглами и тонким пинцетом. Рассматриваются пищеварительная, дыхательная и половая системы насекомого (см. выше описание внутреннего строения). Нужно обратить внимание на мальпигиевы сосуды, впадающие на границе средней и задней кишки. После рассмотрения пищеварительной и половой системы их удаляют. После удаления остатков жирового тела становится заметна брюшная нервная цепочка. [c.26]

Подобные же данные получились и в наших опытах при изучении ХЭ из брюшной нервной цепочки непарного шелкопряда, у которого АМеХ при 0,05 М концентрациях расщепляется более чем в два раза быстрее АХ (рис. 10). [c.566]

Рис. 7. Схема кро вообращения и нервная система у таракана I — аорта 2 — камера сердца (стрелки указывают направление тока крови) 3 — головной мозг 4 — йрюшная нервная цепочка

I — пищевод 2 — резервуар слюнной железы 3 — слюнная железа 4 — зоб 5 — мышечный желудок б — слепые отростки средней кишки 7 — средняя кишка 8 — мальпигиевы сосуды 9 — тонкая кишка 10 — прямая кишка II — семяизверга-тельный канал /2 — придаточная половая железа /3 — семяпровод 14 — семенник 15 — трахейный ствол 16 — дыхальца /7 — брюшная нервная цепочка [c.12]

Шрадан — очень слабое холинэстеразное вещество in vitro. Он практически нетоксичен для ряда видов насекомых, но высокотоксичен для других [39], Шрадан превращается печенью животных в сильное антихолин-эстеразное вещество. В чувствительных к нему насекомых он полностью ингибирует холинэстеразу. Ткани устойчивых и чувствительных к шрадану насекомых содержат фермент, способный активировать этот инсектицид. У нечувствительного к шрадану американского таракана способностью активировать шрадан обладают жировое тело, пищеварительный канал, кутикула и нервная цепочка [45]. Принято считать, что чувствительность насекомых к шрадану зависит от активации соединения нервной тканью и что у нечувствительных видов скорость активации в жировом теле настолько велика, что неизмененный шрадан не успевает транслоцироваться в нервную ткань или доходит до нее лишь в малых количествах. Продукт активации шрадана настолько нестабилен, что он разрушается раньше, чем достигает нерва и проникает через его липоидную оболочку, называемую оболочкой Хойля [45]. [c.66]

В гемолимфе американского таракана Periplaneta ameri ana L, отравленного ДДТ, накапливается токсичное вещество [18—20]. Химический анализ показал отсутствие существенных количеств ДДТ в такой гемолимфе. Инъекция чувствительным и устойчивы.м к ДДТ тараканам гемолимфы, взятой из тараканов, находившихся в фазе прострации в результате отравления ДДТ, вызывала типичные симптомы отравления ДДТ. Далее, эта же гемолимфа приводила к повышению спонтанной активности нервной цепочки, выделенной из неотравленного таракана. После короткого периода сильного возбуждения активность внезапно падала и наступало блокирование. Так как сам ДДТ не оказывает прямого действия на центральную нервную систему, высказано предположение, что указанные выше явления вызываются каким-то иным соединением. [c.150]

Нейроактивное вещество не является метаболитом ДДТ и, по-видимому, представляет собой естественный продукт жизнедеятельности организма насекомого, поскольку оно может образовываться и в отсутствие ДДТ, например при раздражении электрически.м токо.м [19]. В последнем случае в гемолимфе таракана найдено вещество, которое, по данным хроматографического анализа, аналогично тому, которое образуется при действии ДДТ. При определенных условиях то же нейроактивное вещество может быть обнаружено в физиологическом растворе после обмывания им нервной цепочки. Когда нервную цепочку с церкальными нервами и оставленными церками помещали в физиологический раствор соли так, что церки выступали над ним, а затем на церки наносили ДДТ, в растворе постепенно накапливалось нейроактивное вещество. Прямая обработка нервной цепочки, извлеченной из тела, не придавала токсичности перфузату, что подтверждает более ранние наблюдения Рёдера об отсутствии прямого токсического действия ДДТ на центральную нервную систему. [c.151]

При нормальных физиологических условиях изолированные грудной и брюшной отделы центрального нервного ствола сохраняют в течение многих часов непрерывный ритмический фон спонтанных юрвных импульсов. Если этот анатомо-физиологический препарат имеет не-отчлененные церки, то раздражение центрального нерва электрическим током будет вызывать нормальную пост-синаптическую реакцию в гигантских волокнах брюшной области. Если брюшной раздел нервного ствола непосредственно раздражать током, то можно наблюдать аксональное раздражение гигантских волокон. Обработка такого препарата 10 М раствором ТЭПФ приводит в течение 30 мин. к полному блокированию пост-синаптических реакций на раздражение церков. В то же время спонтанная активность весьма сильно повышается на короткое время, а затем внезапно блокируется в течение менее 1 мин. Прямое раздражение аксона не приводит к снижению физиологической реакции. Если нервную цепочку оставить в первоначальном растворе ТЭПФ, то спонтанная активность остается в той или иной степени блокированной и лишь изредка возвращается к норме в течение 15 лшн. Однако если раствор ТЭПФ удалить и промыть цепочку 4—5 раз свежим Ю М раствором ТЭПФ, то спонтанная активность быстро (обычно в течение 2—5 мин.) восстанавливается Восстановившаяся активность является в общем нормальной и не изменяется в течение по крайней мере 5 час. Реакция на раздражение аксона в течение этого времени нормальная, но постсинаптическая реакция на раздражение церков, блокированная первым раствором ТЭПФ, не восстанавливается. [c.152]

Если первоначальным перфузатом ТЭПФ, которы.м омывали нервную цепочку, снова залить последнюю, то спонтанная активность снова сильно возрастает по сравнению с нормальной, затем постепенно снижается до низкого уровня, а в некоторых случаях наступает блокирование. Как и раньше, промывание свежим 10 3 М раствором ТЭПФ возвращает нерву его первоначальную спонтанную активность. [c.152]

Холинэстераза нервной цепочки, подвергавшейся опи санной выше обработке ТЭПФ, полностью ингибировалась в течение нескольких минут после начала опыта и оставалась ингибированной в дальнейшем. Возврат спонтанной активности практически к нормальному уровню и вместе с этим отсутствие активной холинэстеразы заставляет считать, что система ацетилхолин — холинэстераза не является обязательной для осуществления спонтанной активности центральной нервной цепочки. По-видимому, се активность блокируется веще ством, выделенным нервной системой в фазе высокого возбуждения. Сказанное не исключает того, что холин-эстеразная система является важной. Нормальная синаптическая передача возбуждения зависит от этой системы, и подавление холинэстеразы обычно приводит к отсутствию транссинаптических реакций. [c.153]

Из тараканов. Нейроактивное вещество из гемолимфы тараканов, находящихся в фазе прострации в результате отравления ДДТ, частично выделено хроматографическим путем [19]. После проявления хроматогра.мм активное вещество извлекали из отдельных частей хроматограмм экстракцией физиологическим раствором, после чего определяли действие экстрактов на спонтанную активность нервной цепочки таракана. Применяя различные растворители и повторно разделяя нейроактив-ные фракции хро.матографическим путем, получили хорошее отделение нейроактивного вещества от различных веществ, находившихся в гемолимфе. Вследствие потери вещества или его биологической активности при многочисленных операциях хрол1атографического разделения, а также по причине трудности получения больших количеств гемолимфы таракана попытки подобрать соединения для качественного распознавания этого вещества были проведены лишь с ограниченным набором соединений, причем только одно из них дало положительные результаты. Обработка хроматограмм диазотированным п-нитроанилином привела к появлению окрашенных в красный цвет пятен в местах локализации биологически активных веществ экстракта из гемолимфы. На хроматограммах экстрактов из гемолимфы нормальных тараканов красные пятна не появлялись в местах, соответствующих Rj активного вещества. [c.155]

Химическое строение нейроактивного вещества изучали мало, но показатели этого вещества, полученные, при применении различных растворителей, сравнивали с показателями Rf ряда соедиие.чнй, которые предположительно могли играть роль в проведении возбуждения по нервам. Установили, что эти вещества не являются ни ацетилхолином, ни эпинефрином, ни норэпинефрином, ни серотонином, ни гистамином, ни -аминомасляной кислотой. Это не явилось неожиданностью, поскольку указанные соединения не нарушают нормальной спонтанной активности препарированной нервной цепочки таракана. [c.156]

Кровь раков, отравленных ДДТ, обрабатывали таким же путем, как и гемолимфу тараканов, и она оказалась нейроактивной в опытах с нервной цепочкой рака и таракана и вызывала сначала возбуждение, вслед за которым следовала депрессия спонтанной активности [7]. Отмечено лищь одно различие вещество из крови рака более активно действовало на нервы рака, чем на нервы [c.156]

Для проведения всех указанных в таблице проб оказалось невозможным получить достаточное количество вещества, выделяемого при действии ТЭПФ на препарированную нервную цепочку. На основании хроматограмм это вещество идентично веществу, найденному в крови отравленных тараканов. Оно быстро разлагалось слабыми щелочами и его биологические свойства инакти-ровались ацетоном. После опрыскивания диазотированным п-нитроанилином на хроматограммах появлялось красное пятно, соответствующее значению Rf, характерному для биологически активного соединения. [c.158]

В случае применения антихолинэстеразного вещества сильное повышение активности нерва происходит, по-видимому, из-за внезапно наступающей неспособности холинэстеразы удалять свободный ацетилхолин, выделяющийся в синапсах, количество которого становится выше необходимого для нормального течения процессов в постсинаптической области. Но это объяснение механизма действия неприменимо для случая с ДДТ, поскольку ДДТ не ингибирует холинэстеразу. При отравлении ДДТ все же происходит нарушение стабильности в синапсах центральной нервной системы. Маловероятно, чтобы нестабильность вызывалась непосредственно ДДТ, поскольку, во-первых, химический анализ даже нескольких граммов нервных цепочек тараканов, отравленных ДДТ, показал отсутствие этого инцектицида, а, во-вто-рых, нестабильность имеет обратимый характер. Подобрав соответствующую дозу ДДТ, возможно вызвать у тараканов (в 0дн0]М и том же температурном интервале в несколько градусов) прострацию или же возврат к нормальной жизнедеятельности. При этих условиях в фазе прострации будет наблюдаться нестабильность в синапсах, а при выздоровлении насекомых — стабилизация. Спонтанный поток нервных импульсов в центральной нервной системе будет иметь место или будет отсутствовать в зависимости от того, находится ли насекомое в фазе прострации или произошел возврат жизнедеятельности к норме. [c.159]

Более подробно [53] исследовано активирование метилпаратиона кишечником таракана. Активирование носило аэробный характер, было чувствительным к нагреванию и прекращалось после гомогенизации ткани. В фосфатном буфере активность была выше, чем в вероналовом (в отличие от того, что наблюдалось для описанной выше системы, активирующей шрадан). Активирующим действием обладали многие ткани насекомых все участки кишечника, мальпигиевы сосуды, жировое тело и нервная цепочка. Наиболее эффективной была передняя кишка. Кутикула и мышцы были лишены активности. Многие ингибиторы, в частности сульфгидриль-ные яды (хлорпикрин и иодацетат) и ингибиторы металлофермен- [c.172]

Существование ацетилхолинового барьера показано в работе Колхоуна [12], который нашел, что изолированная и обработанная эзерином нервная цепочка американского таракана накапливает ацетилхолин, если предотвращен его переход в перфузат, так как при повреждении ганглиев около 10% общего ацетилхолина теряется. [c.194]

Токсическое начало при отравлении шраданом — оксиметилшрадан ведет себя как ионизированное соединение в той мере, в какой это касается проникновения в нервную цепочку таракана [65]. Это вещество является мощным антихолинэстеразным ядом, но почти не влияет на фермент интактной цепочки. Если же цепочка повреждена или вырезана, то под его действием происходит выраженное угнетение холинэстеразы. [c.198]

Чем насекомые отличаются от других животных в смысле защиты нервной системы от ионов В отношении защиты центральной нервной системы (т. е. головного и спинного мозга млекопитающих и ганглиев нервной цепочки членистоногих), а также собственно двигательных и чувствительных нервов, за исключением нервно-мышечного соединения, все животные обладают отчетливо выраженной способностью защиты от ионов. Однако у некоторых насекомых, таких, как саранча, перилемма нервных пучков является более эффективным ионным барьером, чем соединительнотканная оболочка, окружающая нервы ракообразных и высших животных. Главное отличие изученных насекомых от всех млекопитающих состоит не в наличии описанного выше ионного барьера, а в том, что насекомые лишены периферических вегетативных ганглиев (которые имеются у млекопитающих и являются проницаемыми для ионов) и что их [c.199]

Несмотря на то что открытие Хойлом калиевого барьера у саранчи привело к мысли о существовании у насекомых универсального ионного барьера, было бы необоснованно считать, что этот калиевый барьер способен предотвратить проникновение ацетилхолина, ионизированных ФОС и оксиметилшрадана. Известно, например, что существуют выраженные различия в свойствах калиевого барьера у разных видов обработка нерва 130 мМ раствором калия вызывает блокаду проведения у саранчи через 4 час, у американского таракана уже через 30 мин [51, 81]. В этом отношении нерв таракана нопоминает нервы амфибий, которые лишь частично защищены от калия. В то же время ганглии обоих видов насекомых совершенно не подвержены действию ацетилхолина [36, 81 ]. Далее, хотя известно, что нечувствительность ганглиев таракана к калию сохраняется после перерезки связанных с ганглием небольших нервов [81 ] и что как вырезанные, так и интактные нервные цепочки таракана одинаково непроницаемы для ацетилхолина, однако существует значительное различие в чувствительности холинэстеразы ин-тактных и поврежденных нервных цепочек таракана к действию таких ингибиторов, как оксиметилшрадан [65] или тетрам [641. [c.201]

Возникает вопрос, насколько необходимо применение защитного метода Ван Асперен [3, 4] нашел, что после обработки мух парами ДДВФ до такого состояния, когда насекомые начинали падать, содержание свободного яда в организме было достаточно высоким, чтобы вызвать значительную ошибку в определении. Колхоун [29] показал, что после местного нанесения ТЭПФ определимые количества свободного вещества обнаруживались в нервной цепочке американского таракана только в первые 7 час после нанесения. При использовании защитного метода через полчаса после нанесения яда угнетение холинэстеразы составляло 70%, тогда как стандартный метод давал 100%-ное угнетение. [c.287]

Касида [17] и Хопф [40] исследовали угнетение гидролиза о-ни-трофенилацетата и ацетилхолина в нервной цепочке насекомых, отравленных ФОС. Результаты этих исследований приведены в табл. 41. Из таблицы видно, что в семи случаях из девяти гидролиз ацетил- [c.294]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология