Жидкая культура бактерий

Жидкие культуры нитрифицирующих бактерий [c.118]

Для приготовления мазка из культуры бактерий, выращенной в жидкой питательной среде, на середину обезжиренного в пламени горелки предметного стекла наносят каплю культуры петлей или пастеровской пипеткой (затем пипетку погружают в дезинфицирующий раствор) и равномерно распределяют ее петлей. Предварительно с обратной стороны стекла восковым карандашом очерчивают границы препарата, так как очень тонкие мазки [c.12]

Газовую смесь предварительно очищают от жидких углеводородов, чтобы иметь возможность установить присутствие в газе их низших гомологов. Для этой цели газ пропускают через специальные бактериальные фильтры, которые представляют собой стеклянную колонку, заполненную песком с соответствующей культурой бактерий. Развитие бактерий, окисляющих метан в газе, очищенном от этана и тяжелых углеводородов, служит доказательством присутствия метана. При определении газообразных гомологов метана необходима [c.256]

Чувствительность нитрифицирующих бактерий к органическим веществам характерна только для жидких культур, т. е. при выращивании этих бактерий на жидких питательных средах или при развитии их в водоемах и водотоках. При их развитии в почве подобное явление не наблюдается. Это объясняется тем, что нитрификация тормозится присутствием только воднорастворимого органического вещества, способного проникать в клетки нитрифицирующих бактерий. Таких веществ в почве не бывает в большом количестве. [c.145]

Рост культуры бактерий во времени подчиняется определенной закономерности. Для выявления этой закономерности клетки какого-либо вида помещают в жидкую питательную среду и через определенные интервалы времени ведут подсчет живых бактерий. Результаты выражают в виде зависимости логарифма числа клеток от времени. [c.33]

Аэрация. Всем облигатным аэробам в качестве акцептора электронов необходим молекулярный кислород. Для бактерий, растущих на агаре или в тонких слоях жидкости в присутствии воздуха, кислорода обычно вполне достаточно. В жидких средах при большом объеме жидкости аэробные бактерии могут расти только на поверхности, так как в более глубоких слоях по мере удаления от поверхности условия приближаются к анаэробным. Для нормального роста аэробных микроорганизмов в глубоких слоях жидкой культуры требуется аэрация. Микроорганизмы способны использовать только растворенный кислород. В то время как минеральные соли и органические вещества можно добавлять к среде в концентрациях, обеспечивающих рост бактерий на протяжении нескольких часов и даже дней, с молекулярным кислородом этого еде- [c.181]

Порошкообразного фосфоробактерина (чистая культура бактерии в каолине) на гектар требуется 250 г. Перед использованием его разводят водой (2,5—3 л на 150 —200 кг семян), хорошо взбалтывают и оставляют при комнатной температуре на 2—3 часа, перемешивая 5—6 раз. Далее поступают так же, как и с жидким препаратом. [c.385]

Способы культивирования бактерий значительно различаются, причем это зависит не только от потребностей организма, но и от того, для чего будет использоваться культура. Для выделения чистых культур, определения числа жизнеспособных клеток в популяциях и для многих других целей широко используются твердые среды. Гелеобразующие вещества и специальные методы приготовления твердых и полужидких сред рассматриваются в гл. 9. В гл. 10 описываются различные системы для жидких культур стационарная, или периодическая, проточная, диализная —и другие специальные системы, а также методы сбора, отмывки и учета урожая бактерий. [c.163]

Большинство молочнокислых бактерий можно поддерживать путем ежемесячных пересевов в столбиках с 2%-ным агаром, приготовленным иа данной среде. Все компоненты автоклавируются вместе. К жидкой культуре следует добавить неорганические соли, перечисленные в табл. 7.14. Обратите внимание, что количество солей приводится на 1 л среды с двойной Концентрацией. [c.235]

Из накопительных культур бактерии обычно выделяют путем их пространственного отделения от других форм на твердой среде, где они растут в виде колоний. Для микроорганизмов, не растущих на твердых средах, можно использовать метод предельного разведения, последовательно перенося клетки в отдельные пробирки с жидкой средой. Поскольку обычные методы выделения не дают абсолютной гарантии чистоты получаемых культур, некоторые исследователи применяют более [c.278]

Лишенные бортиков пробирки из стекла пирекс (обычно размером 16X150 мм) очень удобны для выращивания периодической жидкой культуры бактерий и широко используются для этой цели. Однако при культивировании аэробов в пробирках обычно удовлетворяется лишь минимальная их потребность в кислороде. Многие бактерии являются факультативными анаэробами, поэтому в преобладающем большинстве случаев при культивировании в пробирках они растут хорошо. [c.382]

Относительно хорошие результаты были получены при использовании в качестве субстрата-носителя почвы, обычно садовой. Стерильную почву, размещенную в молочных бутылках, флаконах и в других сосудах, инокулируют жидкой культурой клубеньковых бактерий. Но высоких титров бактерий в почвенном нитрагине не удается достичь. Весьма заманчивой представлялась идея получения сухого нитрагина путем непосредственного высушивания жидкой культуры бактерий. На разработку такого вида нитрагина было затрачено много усилий, но результаты оказались негативными. Клубеньковые бактерии, как и другие неспоровые микроорганизмы, очень чувствительны к потере воды и, несмотря на добавку к культуре различных защитных веществ, щадящие методы высушивания (лиофилизации), высокие титры бактерий в препарате сохранить не удалось. [c.591]

Установлено, что некоторые бактерии и грибки полностью окисляют избирательно углеводороды. Плесень Aspergillus flavus окисляет предельные жидкие углеводороды (от гексана) до Og (живя на них, как на питательных субстратах), но совершенно не окисляет ароматические углеводороды и нафтены. Вероятно, такое окисление протекает через промежуточные стадии образования различных окси- и оксосоединений, но экспериментально доказать это еще не удалось. Некоторые культуры бактерий размножаются в трещинах каменных углей, окисляя их до СО, и Н О. В результате жизнедеятельности таких бактерий иногда происходит саморазогревание углей, приводящее к подземным пожарам пластов. Самовоспламенение штабелей торфа происходит по тем же причинам. [c.193]

Для получения ферментных препаратов используют как микроскопические грибы, так и бактерии и дрожжи. Иногда получение технического ферментного препарата кончается проведением процесса ферментации, например в спиртовой промышленности для осахаривания крахмала используют жидкую культуру Aspergillus niger, выращенную глубинным методом культивирования на спиртовой барде с добавками крахмала (1%) и различных солей. Впоследствии ее добавляют в жидком виде в количестве 10—127о к осахариваемому затору. Однако активность ферментов в культуральной жидкости быстро снижается. Поэтому широко практикуют получение сухих технических ферментных препаратов. [c.193]

Первая разновидность коммерческой культуры для инокуляции была запатентована Ноббе и Хилтнером в 1896 г. Она поступала на рынок под названием Nitragin . Для разных бобовых выпускалось 17 ее вариантов. Уже в 20-х гг. на рынок поступало много других разновидностей инокулятов. Некоторые из них представляли собой чистые культуры бактерий, смешанные с почвой, песком, торфом, навозом или измельченной породой, другие — культуры, выращенные на агаре или в жидкой среде. Далеко не в каждом случае качество таких инокулятов было высоким, не каждый раз их правильно применяли, так что и высокие урожаи получали не всегда. [c.358]

К подготовленному измельченному торфу добавляют до 40% (по массе) жидкой культуры, тщательно перемешивают смесь и оставляют ее для созревания в неглубоких лотках. Через несколько суток смесь опять перемешивают, а затем фасуют, обычно в заплавленные мешочки из полиэтиленовой пленки (толщиной 0,0375 мм). За первые несколько недель после приготовления смеси число жизнеспособных клеток Rhizobium обычно увеличивается в 2—5 раз. Если держать фасовки при низкой температуре, бактерии обычно долгое время сохраняют жизнеспособность. Возможное время хранения оценивают исходя из продолжительности периода, за который погибает 90% клеток (время уменьшения численности до Vio от первоначальной). Это время варьирует от 90 недель (при 5°С) до 8 (при 25 °С). При благоприятных условиях культуры можно хранить до года (время уменьшения численности до Vio >16 недель), но срок этот заметно меньше, когда они содержатся при комнатной температуре. Точно предсказать возможную продолжительность хранения нельзя, и ее приходится определять для каждой партии отдельно. [c.360]

Заплавленные полиэтиленовые или полиамидные мешочки с подготовленным измельченным влажным торфом стерилизуют в автоклавах (например, при 115°С в течение 4 ч) или же путем 7-облучения (примерно 4,5-Ю рад). Затем при помощи шприца для инъекций в них вводят нужный объем жидкой культуры (порядка 10 мл). Прокол запаивают и мешочки ставят на инкубацию, в ходе которой происходит существенное размножение бактерий. [c.361]

Твердый инокулят состоит из бактерий и носителя, роль которого заключается в поддержании жизнеспособности клеток, поскольку он частично защищает их от пересыхания. Кроме того, носитель способствует более равномерному распределению бактерий в массе семян и помогает им прикрепиться к их поверхности. Хотя Б случае бактериальных суспензий нередко получались хорошие результаты, считается, что применение торфа как носителя более эффективно при использовании жидких культур или же суспензий клетки Rhizobium после инокуляции и прикреплении их к поверхности семян Оказываются практически беззащитными. Поэтому при производстве коммерческих инокулятов вначале чаще всего использовали именно торф. Однако торф есть далеко не везде, а если он и имеется, то сказать заранее, пригоден ли он как носитель, невозможно. В связи с этим были предприняты поиски альтернативных носителей с такими же защитными свойствами, как у торфа. [c.361]

Несомненный интерес представляют также бактерии, вызывающие лизис мицелия фитопатогенных грибов. Некоторые из этих бактерий, названные миколитически-ми, оказались высокоэффективными при испытаниях в производственных условиях. Неплохие результаты получены при использовании Ba illus brevis для борьбы с гнилями моркови в хранилищах. Положительные результаты получены при обработке жидкой культурой мико-литических бактерий, обитающих на поверхности растений, в борьбе с серой гнилью земляники. [c.306]

Производство зернового бактороденцида включает следующие основные процессы приготовление жидкой маточной культуры бактерий приготовление зерновой среды высев и выращивание культуры бактерий на зерновой среде контроль и учет препарата. [c.317]

На агаре вырастают большие, серые, слегка выпуклые колонии, более темные в центре, с просвечивающими неправильными краями, Культура бактерий имеет рыбный запах благодаря метиламину и аммиаку, которые образуются в пептоновых средах. Желто-зеленый пигмент, помимо желтого флюоресцина, содержит также и синеватый пиоцианин, извлекаемый хлороформом. Возбудитель хорошо растет на большинстве обычных сред, использует многие сахара как источник углерода, быстро разжижает желатин, гемолизирует кровяные среды, образует каталазу, сильно редуцирует нитраты и нитриты и окисляет глютонат калия [135]. Бактерию можно культивировать в больших количествах и на заводских средах с кукурузным экстрактом в качестве источника азота. Выживание бактерий при хранении непродолжительно, высушенные клетки погибают через 24 часа, но лиофилизированный материал сохраняет жизнеспособность в течение трех и более лет. В ферментационной жидкой среде при хранении на холоду бактерии без существенной потери вирулентности живут до 6 дней. В мертвых гусеницах инфекционность возбудителя сохраняется несколько недель. [c.247]

На чистых культурах испытание препаратов проводилось по методу введения ацетоновых растворов препаратор в жидкую агари-зированную питательную среду (КДА), после разлива и застывания которой, в чашках Петри, и на поверхность этой среды проводили посев соответствующих тест-объектов. Процент подавления микроорганизмов определяли по формуле Эббота в сравнении с контролем (посев микроорганизмов на питательную среду без введения препаратов), где рост мицелия грибов и чистых культур бактерий принимали за 100%. [c.82]

Баттерфилд идентифицировал эту культуру как разновидность Zoogloea ramigera, описанную ранее другими исследователями. Морфология этого организма следующая палочка с округленными концами, средняя длина 3 мк иногда встречаются клетки, имеющие длину 1—2 мк. Всегда имеется капсула, толщина стенки которой 1—1,5 толщины бактерии. Споры не образуются. Бактерии имеют один полярный жгут. По Граму, ни на одной стадии организм не окрашивается. Оптимальная температура 28—30°С оптимальная величина рН = 7,4—7,6 развивается при значениях pH = 5,6-f8,5. Культуральные признаки на стандартном агаре или желатине рост организма никогда не наблюдался слабый рост был получен на специальном иловом агаре и умеренный рост — на питательном агаре,, содержащем 10% бытовой сточной воды. В жидкой среде бактерии имели тенденцию к росту в виде рыхлого хлопка. При микроскопировании имели вид плотной сферической массы или массы с разветвленными лопастями. Бактерии хорошо развивались как при 20, так и при 37°С в питательных растворах, содержащих бульон, образуя при этом хлопья. Хорошо развивались в стерильной бытовой сточной жидкости при аэрации, образуя хлопьевидный ил, быстро оседающий при прекращении аэрации. Развитие прекращалось при повышении pH до 8,6—8,8. Организм — аэроб он не давал роста в течение [c.38]

Число бактериальных или дрожжевых клеток в жидкой культуре, например в бульоне, можно прямо подсчитать с помошью микроскопа. Этот метод удобен для подсчета дрожжевых клеток, которые гораздо крупнее бактериальных. При подсчете бактерий необходим объектив с иммерсионным маслом (см. разд. 5.11.2). [c.54]

С помощью техники клонирования, описанной в разд. 21.3, из одной трансформированной клетки можно получить целое растение. Для этого клетки сначала выращивают в жидкой культуре, затем образовавшуюся недифференцированную массу, называемую каллусом, помещают на питательный агар. При правильном соотношении гормонов формируются побеги, корни и вырастает новое растение. Другой способ получения трансформированных растений подразумевает использование Agroba terium. Диски, нарезанные из листьев, заражают бактерией и раскладывают на питательном агаре. В процессе роста трансформированные кпетки формируют корни и побеги. [c.230]

В Австралии (Roughley, 1970 Vin ent, 1970) минимальное количество бактерий в жидкой культуре для заражения нестерильного торфа— 500 млн. в 1 мл, для стерильного — 1 млн. в 1 мл. [c.208]

Смешивание торфа с жидкой культурой клубеньковых бактерий. В США (Burton, 1967) выращенную культуру клубеньковых бактерий смешивают с тонко измельченным, нейтрализованным обработкой теплом т0]рфом. То1рфЯ Ную смесь встряхивают в ленточном или лопастном смесителе и затем распределяют тонким слоем во вращающемся цилиндре или на полу на срок от 48 до 72 час. при 22—24°. Затем [c.208]

В Голландии стерильные бутылочки с тор фяно-почвенной смесью ипокулируют жидкой культурой клубеньковых бактерий с помош,ью полой иглы, которая втыкается между ватной пробкой и стенкой горлышка бутылки (S hreven et al., 1954). [c.209]

Результаты работы, проведенной во ВНИИбаипрепарат, показали возможность получения торфяного препарата с высоким титром бакте-)ий, сохраняющегося в течение 6—9 мес. и более (Кронгауз и др., 1969 . V oнaкoвa, Кронгауз, 1972, 1973). Большинство опытов было проведено с культурой клубеньковых бактерий гороха, штамм 227а. В опытах было изучено 10 образцов торфа, полученных из разных районов СССР. Торф размалывали, нейтрализовали мелом до pH 7,0—7,2 и стерилизовали сухим жаром или в автоклаве. Смешивали торф с жидкой культурой клубеньковых бактерий. Хранили смеси при разной температуре и в разной таре. [c.211]

B своих опытах Эрдман (Erdman, 1961) смешивал семена люцерны с жидкой культурой клубеньковых бактерий и помещал в вакуумную установку для высушивания. К отдельным образцам семян при этом добавляли углеводы, аминокислоты и циклические соединения, которые, ло мнению автора, способствовали сохранению бактерий, находящихся в контакте с семенами, увеличивали связь между семенами и инокулянтом [c.216]

Устанавливая природу предполагаемых метаболитов, Гайссбюлер с сотр. [73] вносил меченный в карбонильной группе хлороксурон в жидкие культуры смеси почвенных бактерий и выделил и [c.97]

Для приготовления колонки Виноградского используют ил из пресных, солоноватых или морских водоемов, например из береговой части прудов, ручьев, озер или соленых болот. Смешивают 3 части этого ила с од-лой частью Са504-Н20 и добавляют немного нерастворимых органических веществ в виде фильтровальной бумаги или корней водных растений. Если используют фильтровальную бумагу, то добавляют также небольшое количество МН4М Р04. Смесь переливают в высокий стеклянный цилиндр диаметром не менее 5 см и высотой не менее 15 см к перемешивают ее так, чтобы не образовывались воздушные полости. Заполняют цилиндр водой (для выделения морских микроорганизмов используют морскую воду) и проводят инкубацию в темноте в течение 2—3 дней, чтобы свести к минимуму развитие фототрофных микроорганизмов, выделяющих кислород. Цилиндр оставляют при 18—25°С под лампой накаливания или при естественном освещении в течение всего периода инкубации. Анаэробный распад органического материала в колонке, сопровождающийся образованием СОг, спиртов, жирных кислот, оксикислот и других органических кислот и аминов, а также образованием Нг5 из Са504, обеспечивает рост многих микроорганизмов. При этом фототрофные серобактерии образуют характерные пурпурные, красные или зеленые пятна на стенках цилиндра либо слой или полосы в колонке над границей раздела фаз осадка и воды. При сборе бактерий со стеклянной поверхности или из отдельных слоев для микроскопирования, выделения или дальнейшего накопления в жидких культурах пользуются пастеровскими пипетками. Можно также последовательно снимать порции осадка ложечкой или шпателем. [c.293]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология