Риса культивирование

Рис. 75. Те.хнологическая схе.ма установки для непрерывно-проточного культивирования дрожжей.

В последние 15 лет для выращивания продуцентов ферментов чаще используют более экономный — глубинный метод культивирования (рис. 4.1). В промышленных условиях для этих целей применяют ферментеры из нержавеющей стали, снабженные приспособлениями для перемешивания и подачи в жидкую питательную среду стерильного воздуха. Сначала ферментер заполняют питательной средой, автоклавируют, а затем засевают чистой культурой, подаваемой из специального генератора. Для предотвращения инфекции в ферментере поддерживают повышенное давле- [c.76]

Рис. 4.1. Принципиальная технологическая схема глубинного культивирования микроорганизмов

В дрожжевых аппаратах (рис. 20.9) производят периодичное культивирование дрожжей в спиртовом производстве. Это геометрически закрытый цилиндроконический аппарат, снабженный двумя змеевиками 1 один—для стерилизации среды паром, второй— для охлаждения среды и поддержания постоянной температуры при размешивании дрожжей. В аппарате размещена мешалка 2, которая может быть с верхним или боковым приводом. [c.1037]

Пропионовую кислоту получают в анаэробных условиях методом глубинного культивирования (рис. 51). Используют среду, содержащую 2% глюкозы и источник органического азота, как, например, дрожжевой экстракт, а также соли молочной кислоты. Процесс идет в нейтральной среде (pH 6,8—7,2), при температуре 30°С, длится 7—12 сут. В процессе брожения накапливается про-пионовая, уксусная кислоты (5 1) и выделяется углекислый газ. Примерно 75% сахара потребляется на образование кислот, а 20% — на образование углекислого газа. [c.147]

Технология производства лимонной кислоты из мелассы методом поверхностного культивирования показана на рис. 53. В отдельном цехе выращивают посевной материал — споры (кони- [c.148]

Рис. 65. Схема получения технических ферментных препаратов методом поверхностного культивирования

Иммобилизация клеток в виде монослоев. С помощью стерильной микропипетки с фиксированным объемом суспензию клеток вносят в лунки специальных полистирольных плат, используемых для культивирования в монослое иммобилизованных клеток-мишеней, добавляя гликопротеины сыворотки и факторы связывания (рис. 10.2). [c.319]

Рис. 25. Прибор для культивирования денитрифицирующих бактерий.

Выбор метода культивирования, состава питательной среды зависит главным образом от типа питания и дыхания (биологического окисления) микроорганизмов. На рис. 6 (цв. вклейка) показан наиболее распространенный способ посева исследуемого материала с целью выделения чистой культуры механическое [c.25]

Рис. 11. Анаэробный бокс для культивирования анаэробов в бескислородной атмосфере

Биотехнологии присущи свои специфические методы — это крупномасштабное глубинное культивирование биообъектов в периодическом, полунепрерывном или непрерывном режиме, выращивание клеток растительных и животных тканей в особых условиях Биотехнологические методы культивирования биообъектов выполняются в специальном оборудовании, например, в ферментаторах выращивают бактерии и грибы при получении антибиотиков, ферментов, органических кислот, некоторых витаминов (рис 6), [c.41]

На рис. 3 представлены результаты культивирования в хемостатных условиях консорциумов, неадаптарованных к перекиси водорода, и без внесения Н2О2. В этих условиях при скорости разбавления 0,04 ч и входной концентрации фенола в среде культивирования до 3 г/л скорость его окисления не превышала 0,13 г/л.ч. Остаточная концентрация фенола в среде на выходе из биореактора находилась на уровне 0,1-0,2 г/л. [c.233]

При внесении Н2О2 в подаваемую в биореактор среду культивирования с фенолом (концентрация фенола 1,8 г/л, pH 7,0) в режиме хемостата бактериальный ценоз, адаптированный к Н2О2, выдерживал присутствие перекиси водорода в концентрации до 3 г/л при производительности по окисленному фенолу до 0,22 г/(л.ч) (рис. 4). [c.233]

На рис. 59 приведена технологическая схема непрерывного культивирования плесневых грибов на установке, предложенной ВНИИПрБ и испытанной с положительным результатом на Мичуринском заводе. [c.166]

Сущность способа заключается в том, что все операции по по/ готовке сусла и культивированию дрожжей осуществляют последс вательно в одном аппарате — дрожжанке. Она представляет собо герметически закрытый котел (рис. 74), снабженный двумя змеев ками (для пара н для воды) и мешалкой. Вместимость дрож/ка ки обычно равна б—8% вместимости бродильного аппарата, а кол1 чество дрожжанок равно количеству этих аппаратов (при подкис лении дрожжевого сусла серной кислотой). [c.218]

На рис. 75 приведена принципиальная технологическая схема установки для непрерывно-проточного культивирования дрожжей. Сусло поступает в сборники /, в которых доосахаривается при температуре 55°С в течение 45—60 мин, и насосом 2 прокачивается через контактную головку 3 для нагревания до температуры 75— 78°С, пастеризуется при этой температуре 20—30 мин в выдерживателе 6, проходит сепаратор 5, в котором выделяющийся из сусла вторичный пар отсасывается эжектором 4 с помощью острого пара, и возвращается в контактную головку 3. Далее сусто насосом 7 подается в теплообменник 8, где охлаждается до 22—24°С, а затем направляется в два головных дрожжегенератора 9. Одновременно из третьего дрожжегенератора 9 подается 10, 20 или 30% маточной культуры дрожжей насосом 10. Непрерывное заполнение этих дрожжегенераторов в зависимости от объема маточной культуры продолжается соответственно 16, 12 и 8 ч. Для поддержания постоянной концентрации дрожжевых клеток иа уровне 80—90 млн./мл скорость притока сусла по времени должна возрастать. [c.221]

При однопоточном сбраживании приготовляют сусло одной концентрации — 22—24%, что упрощает технологию и управление процессом брожения. Мелассное сусло сначала используют для культивирования дрожжей, а затем непрерывке сбраживают ими. Технологическая схема однопоточного сбраживания мелассы приведена на рис. 85. [c.257]

Выращивание товарных дрожжей. Дрожжи выращивают непре-рывно-проточньш способом, при оптимальном составе среды и благоприятных условиях культивирования лимитирующим фактором чаще является содержание растворенного в среде кислорода. Достаточной считается такая интенсивность аэрирования, при которой концентрация растворенного в среде кислорода равна критической или незначительно превышает ее. Скорость потребления дрожжами растворенного кислорода V до критической концентрации прямо пропорциональна его концентрации в среде при концентрации выше критической — остается постоянной (рис. [c.377]

Интенсификацию процессов биологической очистки можно проводить путем аэрации суспензии активного ила чистым кислородом, так как экспериментально было показано, что при проведении большинства аэробных процессов именно этот компонент питания является лимитирующим. Применение это позволяет увеличить эффективность процесса биологической очистки и снизить время пребывания сточной волы в системе. Однако реализация такой схемы ставит вопрос полноты использования кислорода. Для его решения были разработаны аппараты закрытого типа - окситенки с принудительной аэрацией сточной воды. Отмечено, что одновременно с повышением эффективности применения кислорода происходит избыточное накопление в среде культивирования СО2, который необходимо периодически отдувать. Схема окситенка представлена на рис. 44. [c.114]

Лимонную кислоту микробиологическим методом получают, используя главным образом микроскопические плесневые грибы Aspergillus niger (рис. 52), выращиваемые методом поверхностного культивирования. [c.148]

Технология получения ферментного препарата методом поверхностного культивирования показана на рис. 65. Для стерилизации отрубей, используемых в главной ферментации, применяют специальные аппараты стерилизации с мешалками, притоком пара и охлаждающими устройствами. Для охлаждения отрубей используется стерильный воздух. Вначале через люк в аппарат вводят отруби, затем постепенно добавляют 0,2% формалина (от количества отрубей), предварительно разбавленного водой. Затем при работе мешалок подводят пар и стерилизуют отруби 50—60 мин при 100—105°С. Затем следует охлаждение водой через рубашку аппарата и воздухом до температуры 37°С, Влажность массы доводят до 56—58% охлажденной кипяченой водой, добавляют чистую культуру и хорошо перемешивают. Такой массой заполняют кюветы и помещают их на специальные полки. Размеры кювет 0,5 м , высота бокового борта 25 мм. Кюветы сделаны из перфорированной жести, размеры отверстий 1,5x20 мм. Перед загрузкой камеры кюветами ее и подсобное помещение стерилизуют 8 ч паром и формалином, затем 3—4 ч проветривают стерильным воздухом. [c.195]

Количество и размер электронно-светлых зон, выявляемых на ультратонких срезах (рис. 20, 6 и аморфных гранул, выявляемых на сколах, значительно увеличиваются при дальнейшем культивировании мицелия и достигают максимума на третьи сутки. В этот период, когда содержание антибиотика достигает максимального значения, наблюдается заметное просветление цитоплазмы и интенсивное развитие мембранного аппарата, окружающего многочисленные гранулы (рис. 20, б). Размеры гранул настолько велики, что в некоторых случаях они заполняют большую часть пространства гифы между двумя смежными септами. Аналогичные по форме п размерам гранулы наблюдаются и на негативно контрастированных препаратах (рис. 20, е). На последних этапах культивирования (7— 8 сутки) цитоплазма полностью просветляется, а содержимое клетки представлено скоплениями мембран и многочисленными крупными гранулами. Электронно-микроскопические исследования показали, что появление гранул, увеличение их числа и размеров коррелирует с содержанием антибиотика в культуре. Обнаружение у гранул люминесценции, характерной для флавофунгина, было прямым доказательством их природы (рис. 20, г). [c.175]

Однако этот микроорганизм растет относительно медленно и использует лишь ограниченное число источников углерода, что делает производство довольно дорогим. Можно использовать другой путь при перенесении генов биосинтеза этого полимера в Е. соИ получаются быстрорастущие трансформанты, накапливающие в большом количестве (до 95% сухой массы клетки) поли(3-гидроксимасляную кислоту). Поли(3-гид-роксимасляная кислота) синтезируется из ацетил-СоА в три стадии, катализируемые тремя разными ферментами (рис. 12.22). Оперон, содержащий эти гены, был встроен в плазмиду в составе фрагмента длиной 5,2 т.п.н., однако в отсутствие селективного давления, например при росте в отсутствие антибиотиков, примерно половина клеток Е. соИ теряла данную плазмиду уже после 50 генераций. Это не очень существенно, когда масштабы культивирования малы, но становит- [c.270]

Рис. 16.5. Система из двух эрлифтных биореакторов, используюшаяся для температурной индукции синтеза белкового продукта. Из ферментера, в котором осуществляется культивирование при 30 °С (слева), клетки поступают в ферментер с температурой 42 °С (справа), где происхоит индукция. У обоих биореакторов имеется двойное внешнее рециркуляционное устройство, оснащенное задвижками. Изменяя положение задвижек, можно создавать рабочий объем, оптимальный для данных условий.

Культуру в объеме 5 л выращивали при 30 °С в присутствии ампициллина и канамицина, с тем чтобы обеспечить условия для сохранения обеих плазмид, а затем использовали в качестве посевного материала для инициации роста культуры без антибиотиков при 30 °С в реакторе с рабочим объемом 45 л. Суспензия клеток из 45-ли-трового ферментера в свою очередь служила посевным материалом для культивирования в биореакторе на 600 л, в котором клетки продолжали выращивать при 30 °С без антибиотиков (рис. 16.6). (Вообще говоря, для уменьшения стоимости процесса антибиотики при крупно- [c.362]

Рис. 21.1. Схематическое представление генной терапии ех vivo. Процедура включает 1) получение от пациента клеток с генным дефектом 2) культивирование изолированных клеток 3) трансфекцию терапевтической генной конструкции в изолированные клетки 4) отбор, выращивание и тестирование трансфицированных клеток 5) трансплантацию или трансфузию трансфицированных клеток пациенту.

На третьей стадии жидкая посевная культура выращивается в производственных условиях в посевных аппаратах — ииокулято-рах (рис. 1). Технологический цикл состоит из следующих операций подготовка аппарата, приготовление и стерилизация питательной среды, засев среды культурой, культивирование микроорганизмов. [c.58]

Дальнейший шаг по пути морфологического усложнения сделан цианобактериями, включенными в порядок Nosto ales (рис. 83). Они представлены однорядными невет-вящимися нитями, рост которых происходит путем деления клеток в одной плоскости (под прямым углом к длинной оси трихома). При культивировании на среде без связанного азота некоторые вегетативные клетки дифференцируются в гетероцисты — центры азотфикса- [c.311]

Культура растительных клеток является искусственно созданной биологической системой, функционирующей in vitro и сохраняющей многие черты, присущие интактному растению. Имеется два варианта функционирования таких систем в виде каллуса, образовавшегося в процессе поверхностного культивирования, а также в виде суспензии клеток в результате глубинного культивирования. Каллус — весьма гетерогенное образование (рис. 31.2). Он представляет собой совокупность недифференцированных клеток, способных синтезировать некоторые метаболиты, присущие целому растению. [c.496]

Рис. 1а. Технологическая схема получения белковых препаратов при культивировании микроорганизмов на гидролизатах древеси1п>1 и сульфитных щелоках

Дифференциально-диагиистические среды позволяют различать бактерии по их росту, биохимической активности и другим признакам. В состав этих сред, кроме питательных веществ, обычно включают субстрат, по отношению к которому дифференцируются бактерии, и индикатор. В результате культивирования микробы, ферментирующие субстрат, способствуют накоплению продуктов расщепления, сдвигу pH, редокс-потенциала среды, что сопровождается окрашиванием среды и собственных колоний в цвет индикатора (см. цв. вклейку, рис. 7). [c.28]

Исходя ИЗ обобщенной схемы, нельзя учесть все виды и разновидности биотехнологических процессов (сравнить данные на рис 75 и в таблице 24) В основу подразделения биотехнологических процессов могут быть положены различные принципы, например, оценка принадлежности биообъектов к надцарствам живых существ (процессы на основе использования акариот, прокариот, эукариот), функциональной активности биообъекта (биосинтез, биотрансформация), возможности вычленения отдельных этапов из биотехнологических схем производства в виде самостоятельных процессов (подготовка питательных сред и оборудования, стерилизация питательных сред оборудования, воздуха, ферментация (культивирование) биообъекта, выделение, очистка и упаковка готового прод)пкта и т д [c.231]

Аппаратурное оснащение микробнологаческих производств Человек с древнейших времен эмпирически применял дрожжевце организмы в примитивных по аппаратурному оформлению биотехнологических процессах (хлебопечение, виноделие и пр ) Развитие промышленности антибиотиков продвинуло далеко вперед проблему создания специальной аппаратуры для культивирования микробов — продуцентов БАВ (аминокислот, антибиотиков, полисахаридов, витаминов, ферментов и других соединений) Были предложены различного типа биореакторы для выращивания микроорганизмов, однако все конструкции ферментаторов (ферментеров) оставались в основном сходными по большинству параметров и, усредненно, их можно подразделить на 2 типа без подводки стерильного воздуха (для анаэробов) и с подводкой его (для аэробов) Аэрируемые биореакторы могут быть с мешалками и без них (рис 88) [c.297]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология