Казеин определение качеств

Определение протеолитической активности трипсина основано на количественном определении тирозина в продуктах расщепления казеина. В качестве реагента на тирозин используется фенольный реактив, дающий с тирозином синее окрашивание, интенсивность которого определяется колориметрически. [c.52]

Лучшим способом определения качеств казеина при существующей методике является органолептическое его исследование, т. е. определение по внешнему виду зерен. [c.124]

В силу этого суждение о кислотности казеина мало что может дать для определения качества продукции. Оно годно лишь как ориентировочное определение для заведомо хороших казеинов. Для казеинов же, подвергшихся глубоким изменениям, определение кислотности путем титрования щелочью может дать совершенно искаженные результаты. [c.106]

Эмульсии. Если две несмешиваю-щиеся между собой жидкости, например масло и воду, встряхивать вместе, то они образуют напоминающий молоко раствор, называемый эмульсией. В такой эмульсии маленькие шарики масла в течение некоторого времени находятся в виде взвеси в воде, а затем жидкости снова разделяются. Такого рода смеси называются временными эмульсиями. Примерами постоянных эмульсий могут служить молоко и сливки. Если к временной эмульсии прибавить коллоид определенного типа, он создаст оболочку вокруг шариков жира или масла и предотвратит их объединение, стабилизируя тем самым эмульсию. Коллоиды, оказывающие такое действие, называются эмульгаторами. Молоко представляет собой эмульсию масла в воде с добавкой казеина в качестве эмульгатора. Майонез — это эмульсия масел и уксуса, к которой в качестве эмульгатора добавляется коллоид яичного желтка. Эмульгатор — защитный коллоид, т. е. такой коллоид, который стабилизирует другую коллоидную дисперсию. Мыло или другое моющее средство играет роль защитных коллоидов, способствующих образованию постоянной [c.138]

Яичный альбумин. Пользуясь казеином в качестве стандарта при определении триптофана, Джонс считал, что казеин содержит 2,4% триптофана. Этим объясняются высокие данные по триптофану в его опытах. Если принять, что казеин содержит 1,4% триптофана, то найденные Джонсом значения совпадают с остальными. [c.154]

НЫ отвечать следующим требованиям 1) отсутствие взаимодействия с белками, 2) низкая молекулярная масса, 3) наименьшее возможное различие между рК и р/, 4) хорошая электропроводность, 5) наименьшее возможное поглощение света в области УФ-поглощения белков, 6) равномерное распределение зон р/ амфолитов, 7) максимальное количество различных значений р/. Сначала в качестве амфолитов использовались лишь вещества, химически близкие белкам, т. е. различные типы частично расщепленных белков гидролизаты гемоглобина, обессоленные препараты пептона или, что более удобно, гидролизаты казеина и лактальбумина. Эти смеси можно применять в тех случаях, когда определению не мешает их пептидная природа. Когда требуется более тонкое изменение р/ и более близкий к линейному градиент, следует применять электролиты-носители, предложен- [c.319]

Для определения протеолитической активности энзимов использован в качестве субстрата казеин [254] для пепсина — свернувшийся яичный белок [415]. [c.220]

При определении активности протеаз в почве в качестве субстрата обычно применяют казеин, желатин и некоторые пептиды. [c.339]

Определение активности трипсина производят на другой день после фильтрации. Для этого используют метод Шоу и Петико-лара (Show, Peti olar, 1948) с применением казеина в качестве субстрата. Объем пробы — 30—40 мл. [c.49]

В качестве материала налболее широко используют полистирол, а в некоторых случаях увеличивают емкость за счет высушивания на нем антитела одним из главных достоинств является высокая степень адсорбции, несмотря на то, что площадь поверхности мала по сравнению с площадью частиц, обсуждавшихся выше. Однако это преимущество в адсорбции способствует также неспецифическому связыванию, так что определение всегда включает этап блокировки , использующий белок, такой, как казеин, для связывания любых ненаселенных областей на поверхности полистирола после того, как была присоединена первичная распознающая молекула. [c.581]

Качество рабочего раствора казеинового клея зависит от сорта казеина (казеин низких сортов при растворении в щелочах образует слишком густые, быстро застудневающие растворы, не обладающие липкостью, или, наоборот, слишком жидкие растворы), а также от условий приготовления клея концентрации казеина, количества и вида щелочи, применяемой для растворения казеина, и т. п. ВНИИ Главиздата провел исследования для определения наилучших условий приготовления рабочего раствора казеинового клея. [c.105]

Определение кислотности казеина имеет большое значение для> установления качества продукта. Кислотность в нем создается продуктами распада и есть результат действия главным образом ферментов. Для установления количества этих продуктов можно пользоваться различной методикой. Для этой цели годна нефелометрия, методы определения аминного азота, определение сухого остатка в вытяжке, определение числа основности путем титрования кислотой. По стандарту установлен метод определения числа Тернера, но описание методики в стандарте усложнено и пропущена одна важная деталь. Усложнение касается промывки на фильтре с доведением общего объема фильтрата до 200 см . Стандарт, вводя промывку фильтра, стремится как бы к более тщательному извлечению веществ, определяющих кислотность, а на деле путем разбавления фильтрата и оставления без учета воды, оставшейся на фильтре, только снижает полученный результат и усложняет операцию. Коллоидный раствор фильтруется крайне медленно, и в силу большего коэфициента (80), на который множится полученный результат, ошибка опыта увеличивается. Серьезная деталь, пропущенная в стандарте, касается необходимости определенным образом измельчать казеин. Когда при определении кислотности из казеина извлекаются коллоиды, необходимо Считаться с поверхностью исследуемого продукта, так как извлечение касается только поверхнссти. Ниже приводятся цифры градусов Тернера, полученные при анализе одного и того же казеина, но различной степени измельчания [c.105]

Об интенсивности протеолиза можно судить по количеству исчезнувшего субстрата или по количеству продуктов гидролиза. Для определения протеолитической активности ферментов в качестве белкового субстрата используют препараты эдестина, яичного альбумина, желатина, казеина и др. Вытяжку готовят, настаивая исследуемый материал на воде, водном растворе глицерина, а также на слабокислом или слабош,елочном буферных растворах. Иногда настаивание бывает довольно продолжительным. В отдельных случаях при настаивании материала с водой применяют активаторы, например цистеин, HaS, цианид и др. Такое же активирование применяют и в опытах по автолизу. При определении активности протеаз учитывают, что в вытяжках могут быть активаторы и парализаторы. [c.69]

Для определения протеолитической активности ферментов пред] рительно приготовляют дрожжевую суспензию или водные вытяж из муки, солода и другого растительного материала. В качестве б( кового субстрата берут обезжиренный казеин. Казеин наиболее лег расщепляется протеиназами. Кроме того, он принадлежит к нат1 ным белкам, расщепляемым пептидазами. [c.70]

Большое значение для количественного учета витаминов имеют биологические методы. Принцип этих методов сводится к следующему. Животных (крыс, морских свинок, голубей и др.) переводят на искусственную безвитаминную диету и затем наблюдают, какое количество исследуемой пищи может предохранить животное от развития заболевания или вылечить животное от уже наступившего авитаминоза. Очевидно, при определении содержания в пиш,е того или иного витамина приходится составлять для каждого случая особые диеты. В состав любой диеты должны входить белки, углеводы, жиры, минеральные соли, вода и все витамины, за исключением того витамина, содержание которого в исследуемом пищевом продукте должно быть определено. Диета для получения авитаминоза А у крыс имеет, например, такой состав казеина 18%, крахмала 48%, свиного жира 38%, солей 4% и в качестве источника витаминов 0,4 г дрожжей в день. Животные, находящиеся на этой диете, получают все необходимые пищевые вещества и витамины, за исключением витамина А. Вследствие этого через несколько педель у животного обычно развивается авитаминоз А. При прибавлении исследуемого пищевого продукта к вышеуказанной диете крыса остается здоровой только в том случае, если прибавленный продукт содержит витамин А. [c.136]

Число практических применений комплексонометрического определения Са огромно. Ниже приведены лишь некоторые из возможных случаев. Так как определение Са часто связано с определением Mg, рекомендуем читателю обратиться к разделам, касающимся определения смеси Са и Mg и жесткости воды. С использованием визуальной индикации проводятся анализы стеаратов [53(8)], сахарных соков [57 (14)], казеина [61 (15)], воды [51 (14), 52(48)], дождевой воды [55(50)], фармацевтических препаратов [50 (9), 51 (10), 51 (11), 53 (12), 55 (107), 56 (102)], трикальцийфос- фата [60 (179)], технических фосфатов [62 (146)], растительных материалов [52(40)], фотографических материалов [57(24)], канифоли [54(98)], а также определение свободной извести в силикатах [55(25), 58(95)] и Са в каустической соде [62(145)], причем в последнем случае применяют концентрирование Са на хелатообра-зующей ионообменной смоле Дауэкс A-I. Фотометрическое титрование с мурексидом используют для определения водорастворимой части гипса [55 (52)] и анализа вод [57 (54)]. Кальцеин используют в качестве фотометрического индикатора при определении Са в солях лития [61(7)]. При анализе фуража Са титруют с ртутным капельным электродом [63(65)] раствором ГЭДТА. [c.164]

Вообще эти среды очень похожи друг на друга и на среды, применявшиеся ранее для анализа витаминов. Основное различие состоит в числе и количестве аминокислот, применявшихся для замены гидролизата казеина в прежних средах и в концентрации имеющихся витаминов. Возможности изменения концентраций отдельных составных частей в среде такой сложности почти бесконечны. В соответствии с высказанным выше взглядом на специфичность, у исследователей наблюдается стремление применять каждый важный компонент при все более высокой концентрации и включать вещества, которые ранее опускались, так как считались не оказывающими влияния на рост. Мак Маган и Снелл, а также Хегстед независимо включили сульфат аммония в свои среды. Это было сделано по- глму, что аммониевые соли образуются при гидролизе бел-ко 8 и при некоторых условиях могут влиять на рост (см. ниже анализ глютаминовой кислоты). Наиболее гибкий и наиболее широко применяющийся метод составления нужной среды состоит в изготовлении смеси чистых аминокислот в качестве источника азота и в исключении той кислоты, которую надо определить. Если делается большое число определений, этот метод весьма дорог. Приближенно необходимая среда получается путем количественного удаления данной аминокислоты из гидролизата полного белка, который затем используется в качестве источника азота. [c.193]

В качестве диснергаторов можно также использовать протеины (казеин и др.) и лецитины (например, лецитин сои). Однако при этом необходимо учитывать способность белковых продуктов к ассоциации с имеющимися в системе анионоактивными ПАВ. Возможность такого взаимодействия связана с заметным гидролизом анионоактивных ПАВ в определенных интервалах pH. Кроме того, эти диспергаторы подверл<ены биоразрушению. Функции диснергаторов выполняют также оксиэтилированные производные диаминов (например, продукт взаимодействия 9 моль окиси этилена с 1 моль гексаметилендиамнна, взятый [c.61]

К основным относятся среды, применяемые для выращивания многих бактерий. Это триптические гидролизаты рыбных продуктов или казеина, из которьк готовят жидкую среду—питательный бульон и плотную —питательный агар. Такие среды служат основой для приготовления более сложных сахарных, кровяных, сывороточных и других комбинированных, удовлетворяющих пищевые потребности более требовательных патогенных бактерий. В качестве основных иногда используют синтетические питательные среды, приготовленные из навесок определенных минеральньпс солей, к которым добавляют аминокислоты, витамины, глюкозу. К ним также можно добавлять пептон, кукурузный или дрожжевой экстракт и другие питательные вещества. Синтетические среды чаще всего применяют в научно-исследовательской практике, а синтетические среды с упомянутыми [c.43]

При получении питательных сред основное внимание должно уделяться источн 1кам азота. Все искусственные питательные среды, как изготовляемые в лаборатории, так и выпускаемые централизованно, имеют азотсодержащие вещества. В качестве азотистого субстрата для изготовления питательных сред служат в основном белки животного происхождения — молоко, казеин, мясо, рыба, мясокостная мука и др. С не меньшим успехом для этой цели используют дрожжи, а также белки растительного происхождения — соевые бобы, горох, ячмень, кукурузу и т. п. В синтетических средах, составляемых из строго определенных химических веществ, источниками азотистого питания являются различные аминокислоты. Для нормального развития микроорганизмов питательные среды должны содержать минеральные вещества (железо, медь, марганец и др.), соединения хлора, фосфора, натрия, калия, кальция, магния и др., а также вещества, называемые факторами роста. К последним относятся н основном витамины гру[1пы В. Они выполняют функцию регуляторов и стимуляторов обмена веществ у микробов, главным образом для построения активных групд ферментов. Их отсутствие ведет к нарушению обмена и прекращению роста. [c.294]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология