Анализ биологических объектов

При работе с новым видом сорбента или с новой партией следует упаковать сначала короткую колонку (10—12 см) при относительно невысоком давлении (20—25 МПа). При хорошем результате можно попытаться упаковать более длинную (200—250 мм) колонку при высоком давлении (40—60 МПа). Если эффективность увеличится примерно вдвое одновременно с увеличением сопротивления потоку в два раза, значит сорбент прочен, его можно использовать при таких параметрах набивки. Если сопротивление потоку возрастет в 2,5—6 раз, это значит, что сорбент непрочен и разрушается, образующаяся пыль резко увеличивает сопротивление колонки, нужно снижать давление при набивке. Особую осторожность следует проявлять при выборе давления для набивки силикагелей с широкими порами (более 10 нм) и с большим объемом пор, которые находят все более широкое применение в эксклюзионной хроматографии полимеров и в анализе биологических объектов — белков, полипептидов и др. [c.118]

Использование анализа биологических объектов япя оценки экологической обстановки. 1ВЗ [c.7]

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ АНАЛИЗА БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБЪЕКТОВ ДЛЯ ОЦЕНКИ ЭКОЛОГИЧЕСКОЙ ОБСТАНОВКИ [c.183]

ХИМИКО-ТОКСИКОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБЪЕКТОВ НА ПЕСТИЦИДЫ [c.249]

В последние годы постепенно расширяется область применения синхротронного излучения (СИ), испускаемого электронами, движущимися в синхротроне. Это излучение охватывает большой интервал длин волн, включая рентгеновскую область спектра. Для монохроматизации необходимо отражение от монокристалла. Перспективы использования СИ обусловлены высокой интенсивностью источников излучения, возможностью плавного изменения длины волны, что представляет интерес для структурного анализа, так как позволяет более эффективно использовать эффект аномального рассеяния (см. раздел 7.4). Другая область - применение длинноволнового рентгеновского излучения для структурного анализа биологических объектов с большими параметрами решетки. [c.15]

Находит применение при анализе биологических объектов [834, 1061, 1865] Варианты этого метода см. [143, 834, 1061, 1393, 1651, 1714, 1865] [c.78]

Флуоресцентное определение кальция с флуорексоном используют при анализе биологических объектов [1092, 1170]. [c.103]

Наиболее эффективно увеличивают эмиссию кальция 1-пентен, изопропиловый эфир, толуол, гептан и циклопентан [818]. Хорошие результаты получены при использовании ацетона. Часто в водный раствор для увеличения чувствительности при определении каль ция добавляют этанол [913, 1566], метанол, изопропанол, бутанол [787] и другие спирты. Рационально применение не индивидуальных растворителей, а смесей различного состава при анализе биологических объектов наиболее эффективной считается смесь ацетона с уксусной кислотой, при определении следовых количеств кальция в хлориде лития рекомендуют смесь метанола, бутанола и воды [873]. [c.138]

Существуют общие приемы, позволяющие повысить специфичность определения кальция по фотометрии в пламени, например предварительное выделение кальция в виде оксалата. После растворения оксалата кальция в соответствующей минеральной кислоте раствор фотометрируют [1021]. Этот прием используют обычно при анализе биологических объектов (кровь, сыворотка) и устраняют главным образом мешающее действие щелочных металлов. Иногда кальций осаждают оксалатом в присутствии комплексона [c.139]

АНАЛИЗ БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБЪЕКТОВ [c.182]

ФОТОМЕТРИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ В АНАЛИЗЕ БИОЛОГИЧЕСКИХ ОБЪЕКТОВ НА СОДЕРЖАНИЕ МИКРОЭЛЕМЕНТОВ [c.355]

В целом ППФ оказались удачным дополнением эксклюзионной хроматографии, позволяющим быстро и эффективно разделять смеси высокомолекулярных органических веществ — латексов, полимерных материалов, протеинов, ДНК, полимеров. Поскольку объем каната невелик (от 1 до 5 мл), то и объем пробы, вводимой в канат, должен быть также мал. Обычно объем пробы находится в пределах от 1 до 500 мкл при содержании разделяемых компонентов в пробе ориентировочно равном = 1%. Это не ограничивает возможности применения ППФ для анализа биологических объектов. [c.246]

Встречаются запросы о химико-токсикологическом анализе биологических объектов на некоторые редкие элементы бериллий, ванадий, молибден, вольфрам, селен, теллур и др. [c.278]

Рассмотрено применение фотометрических методов в анализе биологических объектов на содержание микроэлементов [c.4]

В ГЕОХИ АН СССР ведутся также исследования по анализу метеоритов (А. К. Лаврухина) и других космических объектов (Ю. А. Сурков), спектральному анализу биологических объектов (Т. Ф. Боровик-Романова) и др. Среди [c.201]

Наряду с колоночной жидкосгной хроматофафией, ддя разделения суперэкотоксикантов в аналитической практике довольно частно применяют тонкослойную хроматофафию (ТСХ) на оксиде алюминия и силикагелях 118 , Этот метод дает вполне удовлетворительные результаты при анализе биологических объектов, в которых содержание определяемых компонентов относительно высокое. В частности, ТСХ на пластинках "Силуфол применяется дня определения афлатоксинов в зерновых, зернобобовых и молочных продуктах [ol]. Метод позволяет надежно обнаружить афлатоксины В и Gi на уровне 1-2 мкг/кг, а афлатоксины Вг Сг и М - на уровне 0,5-1 мкг/кг, [c.224]

Другие исследователи использовали разработанную и несколько модифицированную технику, главным образом для анализа биологических объектов, а также для различных определений при помощи объемного и колориметрического методов. В течение последних пяти лет выполнен ряд таких работ [15—32]. [c.6]

Метод может также применяться для выделения долгоживущих или стабильных продуктов деления из отработанных растворов, для контроля за загрязнением объектов окружающей среды и анализа биологических объектов. [c.328]

Для жидкостей чаще всего требуется упаривание, которое позволяет уменьшить объем анализируемого раствора или даже полностью удалить жидкость. При анализе биологических объектов используют высушивание и озоление. В ряде случаев для концентрирования определяемых элементов применяют химические методы — ионный обмен, экстракцию, осаждение и др. [c.141]

Перилен (X), имеющий характерный спектр люминесценции, используется гри количественном анализе биологических объектов (см. гл. 15) известно его применение в оптических квантовых генераторах (см. гл. 12). [c.32]

Гель-хроматография применяется, как уже указывалось, при обессиливании растворов (малые по размеру ионы солей проникаю в поры ге я и удерживаются там), для группового разделения высокомолекулярных и низкомолекулярных органических соединений (например, глицериде в жирных кислот с молекулярной массой около 200—500), в анализе биологических объектов (часто с использованием буферных систем с целью предотвратить разрушение ферментоп), для определения молекулярной массы белков (в том числе содержащихся в сыворотке К]ювп, в спинн( -мозговой жидкости), углеводородов и др)гих вещеста. [c.285]

Отметим микромодификацию метода, часто применяемую для анализа биологических объектов [1780, 1782] [c.70]

Аналогичное определение предлагается и в случае осаждения калия в виде K2Ag[ o(N02)e] [704, 847] Этот способ применен при анализе биологических объектов [2201, 2461, 2692, 2941] и воды [2354]. [c.96]

Метод дистилляции применен при нейтроно-активационном определении марганца в кобальте [1444]. При анализе биологических объектов применен предварительный диализ растворов анализируемых образцов для отделения Na, которыц мещает оп ределению марганца [11Q4], [c.91]

Анализ биологических объектов на содержание следовых количеств элементов — одна из труднейших задач аналитической химии. Недостаточная чувствительность аналитических методов для определения таких низких количеств бериллия требует тща-тельногр отделения сопутствующих элементов и концентрирования определяемого элемента. При анализе биологических проб (кровь, кисти, легкие, печень и т. д.) пробу разлагают и удаляют органические материалы, а затем отделяют бериллий и определяют его. Озоление органических проб можно произвести непосредственным сжиганием (сухое озоление) или при помощи кислот— азотной и серной или хлорной (влажное озоление). [c.185]

При анализе биологических объектов (кровь, моча) применяют нефелометрический метод определения кальция с олеатным реактивом [940]. [c.102]

Методом непрерывного электрофореза разделены комплексо-наты стронция и кальция. Электролит — 0,05 %-ный раствор комплексона П1. Разделение основано на различии в скоростях миграции комплексонатов (pH 4,8 л = 0,005 20° С). Электрофо-ретически удается разделять смеси кальция и стронция (от 100 1 до 100 ООО 1) [616], что весьма важно при анализе биологических объектов. [c.188]

Пробы для активационного анализа приготавливают с соблюдением мер предосторожности, исключающих их загрязнение различными химическими элементами. До облучения следует избегать лишних химических операций, если они не диктуются необходимостью концентрирования исследуемых элементов. Масса пробы определяется условиями облучения для получения соответствующей активности, количеством имеющегося в наличии материала, степенью самоэкранирования потока нейтронов и уровнем радиационной опасности облученной пробы [16]. В большинстве случаев при облучении на реакторе масса пробы не превышает 1 г, а иногда ее масса составляет всего несколько мг. На ра-диоизотопных установках, где нейтроны получаются в результате деления [17] или по реакции (у,и) при облучении Ве гамма-квантами изотопа " 8Ь [18], плотность потока нейтронов в которых низка, вес облучаемой пробы может составлять от нескольких граммов до нескольких сотен граммов. Пробы для облучения обычно помещают в полиэтиленовые или кварцевые ампулы, которые запаивают или плотно закрывают. Для уменьшения объема жидких проб их упаривают, а при анализе биологических объектов пробы предварительно высушивают или проводят их озоление. Вместе с исследуемой пробой облучают эталонную, помещая их рядом в одной ампуле, или упаковывают несколько эталонных и исследуемых проб в одном облучаемом блок-контейнере. Для точных измерений берут эталоны того же состава и объема, что и анализируемые пробы. [c.6]

Важной особенностью термооптической спектроскопии является не-деструктивность определения, что позволяет проводить анализ биологических объектов (например, живых клеток), дистанционный анализ и online определения в потоке. Кроме этого, как уже сказано выше, термооптическая спектроскопия может быть использована как метод локального анализа (дефектоскопия поверхности, микроскопия живых организмов и т. д.). [c.340]

Можно ли использовать термоопгическую спектроскопию для анализа биологических объектов Обоснуйте свой ответ. [c.362]

Для анализа биологических объектов интерес представляет использование ферментных электродов. С их помощью можно 01феделягь глюкозу, аминокислоты, молочную кислоту и некоторые другие вещества. [c.475]

Определение желчных кислот в сыворотке крови необходи-в диагностических целях, поскольку анормальное их содер- ние шляется признаком нарушения работы печени Повышенная чувствительность метода микро-ВЭЖХ делает его особенно пригодным для анализа биологических объектов [c.159]

Узбекистан. В Узбекской ССР интенсивно ведутся работы по активационному анализу (Институт ядерной физики АН УзбССР), применению органических реагентов (Ташкентский университет), анализу органических, в частности природных, соединений. Созданы крупные аналитические лаборатории на предприятиях. Исследования в области активационного анализа посвящены разработке методов анализа биологических объектов и материалов цветной металлургии (определение благородных металлов и др.). В Ташкентском университете широко исследуются различные азосоединения, а также другие соединения, в том числе природные, в качестве реагентов для фотометрического анализа. Создается аналитический центр в Самаркандском университете. [c.207]

Хромато-раснределительньгй метод может быть использован и для анализа биологических объектов. В крови пациента нри хроматографическом анализе был найден летучий компонент, который отсутствует в образцах крови здоровых людей, а также лиц, находящихся в состоянии опьянения. Для идентификации этого компонента мы определили его коэффициент распределения в системе кровь—нар при 50° С и полученную величину сравнили с имевшимися в лаборатории данными но распределению соединений некоторых классов в системе вода—пар. Из хроматографических данных и величины коэффициента распределения неизвестного компонента был сделан вывод о том, что данное вещество не может принадлежать к классу спиртов, кетонов, альдегидов и т. д. Наиболее вероятным было предположить, что данный компонент является дихлорэтаном. Определение времен удерживания этого компонента на нескольких неподвижных жидких фазах с различной полярностью подтверждало это предполон<е-ние. На различных колонках был отмечен хроматографический пик, величина удерживания которого практически не отличалась от соответствующей величины для дихлорэтана. Коэффициент распределения этого компонента в системе кровь — нар (была использована кровь лабораторного животного) совпадал с коэффициентом распределения дихлорэтана в этой системе. Позднее таким же образом в ряде исследований но токсикологии продук- [c.94]

Отделение от основы микропримесей осаждением их органическими осадителями часто используют при химико-спектральном анализе биологических объектов [64, 65]. Например, при анализе растительных материалов, биологических тканей и жидкостей применяют 8-оксихинолин, таннин, тионалид. При различном значении рН-раствора перечисленные реагенты осаждают А , А1, В1, Со, Сг, Си, Ре, Мо, N1, РЬ, 5п, Т1, V, 2п [4]. [c.171]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология