Микроденситометр

Одним из основных недостатков камер РКД и РКУ, как и других камер с фотографической регистрацией рентгеновского излучения, является неточность в значениях интенсивностей линий. Возможно, этот недостаток будет преодолен при более широком распространении микроденситометров -приборов для определения плотности почернения пленки I). Плотность почернения определяется формулой [c.17]

Усовершенствование дифракционной аппаратуры обоих типов (фотографической и дифрактометрической) привело к полной или почти полной автоматизации экспериментальной части структурного исследования. При фотографической технике регистрации используются автоматические микроденситометры — приборы, в которых производится измерение степени почернения пятен лот-снятой и проявленной рентгеновской пленки с одновременным определением координат каждого пятна, а следовательно, и его дифракционных индексов. Прибор работает с управляющей вычислительной машиной, которая не только дает распоряжения о смещениях столика [c.77]

НИЯ и исчезновения промежуточных продуктов реакции, хотя может использоваться и для количественных кинетических измерений, если проводить микроденситометрию фотографической пластинки. Для кинетических экспериментов больше подходит модификация метода, известная под названием импульсной спектрофотометрии. В случае импульсной спектрофотомет-рии вместо второй слабой импульсной лампы используется комбинация из непрерывного источника света (например, лампы накаливания с йодным циклом) и монохроматора, установленного на длину волны поглощения образца. Интенсивность прошедшего света регистрируется как функция времени скоростным фотоумножителем, а выходной сигнал либо отображается на осциллографе, развертка которого запускается вызывающей фотолиз световой вспышкой, либо, что более обычно в современной практике, запоминается непосредственно электронным регистратором переходных процессов. На рис. 7.6 показана фотография кинетической кривой оптического поглощения в подобном эксперименте. [c.201]

Спектрографы (рис. 2), регистрирующие спектры на спец. фотопластинках или (реже) на фотопленках, предпочтительнее при качественном АЭСА, т. к. позволяют изучать сразу весь спектр образца (в рабочей области прибора) однако используются и для количеств, анализа вследствие сравнит, дешевизны, доступности и простоты обслуживания. Почернения спектральных линий на фотопластинках измеряют с помощью микрофотометров (микроденситометров). Использование при этом ЭВМ или микропроцессоров обеспечивает автоматич. режим измерений, обработку их результатов и выдачу конечных результатов анализа. [c.393]

Для количественного измерения интенсивности на фотографических картинах используют микроденситометр (микрофотометр), который сканирует картину, во-первых, в радиальных направлениях, чтобы оценить зависимость распределения интенсивности от угла рассеяния (26), и, во-вторых, в круговых направлениях, что позволяет оценить азимутальное распределение интенсивностей. [c.125]

Большинство современных промышленных микроденситометров позволяет увеличивать изображение на пластинке, передвигая пленку в пределах двухкоординатной сетки, они также обеспечивают быструю смену форм и размеров апертуры и являются полностью автоматизированными. [c.125]

Распределение лигнина в клеточных стенках можно наблюдать с помощью ультрафиолетовой микроскопии, используя его способность к поглощению при 280 нм (см. 6.4.2). Предприняты попытки количественного определения лигнина в слоях клеточных стенок [17, 33, 48]. Успешные результаты были получены с использованием метода ультратонких срезов [57]. На снятых в монохроматическом ультрафиолетовом свете микрофотографиях измеряли интенсивность поглощения с помощью микроденситометра. [c.182]

Рис. 196. Схема расположения деталей в микроденситометре с селеновым фотоэлементом

В цветной фотографии эти 100 ООО триад координат цвета могут быть определены путем измерения коэффициента пропускания каждого элемента на цветоделенных негативах или их эквивалентах с помощью микроденситометра. В цветном телевидении это сделать еще легче, так как координаты цвета определяются сигналами передающей камеры, которые при строчно-кадровой развертке изображения управляют яркостью светящихся элементов на экране кинескопа, составляющих цветоделенные изображения в телевизионном приемнике. Яркость каждого элемента в цветоделенном изображении соответствует одной из координат цвета этого элемента в системе рабочих основных (красного, зеленого, синего) цветов кинескопа. [c.269]

О = (2,00 0,05) + Оа, длина сканирования по линейной мере 100 мм, диаметр диафрагмы микроденситометра (100 5) мкм. [c.60]

Результаты использования метода для контроля получены при применении достаточно мощных источников излучения. Если для формирования радиационного изображения с использованием вторичного излучения вместо точечной диафрагмы применена достаточно протяженная щелевая диафрагма (рис. 12), то такая система формирования изображения менее инерционна. Раньше в таких системах использовался комбинированный преобразователь экран - пленка. Пленка экспонировалась с временем выдержки 1. .. 2 ч, а затем исследовалась с помощью микроденситометра. [c.100]

Показаны записи микроденситометра. Спад интенсивности в длинноволновой области спектра обусловлен незначительной чувствительностью фотоэмульсии к этим длинам волн. [c.331]

В Европе [5, 6] и особенно в США [7—13] в последнее время наблюдается значительный прогресс в области автоматических микрофотометров (автоматических микроденситометров). Обычно они конструируются в самих лабораториях. Однако постепенно в продаже стали появляться также показывающие приборы (например. [c.159]

Параметры решетки а 13,31, Ь 20,Э1, с 12,77 А, а 97,3°,. Р 104,1°, V II Г, 2=2, ф. гр. Р1. Экспериментальный материал получен в. прецессионной камере. Интенсивности измерены на микроденситометре. Трехмерные синтезы Фурье, МНК / =0,110, структура уточняется. [c.137]

Второй способ формирования защитной маски в резисте основан на отклонении электронного луча для вычерчивания заданного рисунка. Некоторые авторы для этих целей использовали модифицированные сканирующие микроскопы [37, 149, 115]. Основной луч фокусируется на поверхности подложки в точке, обычно диаметром 1000 А. Для вычерчивания рисунка луч управляется катушками развертки дополнительные. модуляционные катушки, отклоняющие луч от апертуры электронных линз, поворачивают луч. Рисунок в форме изображения хранится на фотографической пластине [37] или в виде маски в пленке хрома на экране КЛТ. Изображение сканируется микроденситометром [37] или развертывающим устройством с бегущим лучом по оригиналу рисунка [151] синхронно с отклонением основного луча. Одна из таких установок позволяет изменять [c.643]

Преимущества масс-спектральных данных высокого разрешения и их интерпретация кратко обсуждались в разд. II, В. К сожалению, в масс-спектрометрии высокого разрешения как сами приборы, так и работа с ними требуют больших денежных затрат [12]. При стоимости самого прибора в 150 тыс. долл. его эксплуатация может обходиться до 5 тыс. долл. в год. Стоимость обработки данных (при непрерывной и эффективной эксплуатации прибора) может доходить до 30 тыс. долл. в год. (Эта оценка получена в предположении, что к элементной таблице сводят 15 полных спектров высокого разрешения в неделю, на спектр требуется около 5 мин машинного времени, а 1 ч машинного времени обходится в 500 долл.) Если для регистрации масс-спектров применяется фотографирование, то для измерения с высокой точностью положения линий на фотопластинке необходим микроденситометр. При точности 0,5 мкм только необходимое дополнительное оборудование стоит не менее 12—15 тыс.. долл., а полная стоимость системы доходит до 50 тыс. долл. Недавно в продаже появился денситометр с ручным управлением стоимостью около 3 тыс. долл., но эта относительная дешевизна сказалась на его точности. [c.211]

Колориметрические и денситометрические схемы с селеновыми фотоэлементами осуществляются крайне просто. Гальванометр (зеркальный или стрелочный) должен иметь сопротивление порядка нескольких сотен ом. На рис. 196 приведена легко осуществимая схема микроденситометра для измерения прозрачности [c.207]

Усовершенствование дифракционной аппаратуры обоих типов (фотографической и дифрактометрической) привело к полной или почти полной автоматизации экспериментальной части структурного исследования. При фотографической технике регистрации используются автоматические микроденситометры — приборы, в которых производится измерение степени почернения пятен отсня- [c.62]

В приборах с геометрией Маттауха—Герцога, имеющих фокальную плоскость, может использоваться фоторегистра ция Информацию о положении и интенсивности пиков масс-спектра получают с помощью автоматического микроденситометра, управляемого системой обработки данных Более современной системой является микроканальное электронноумножи-тельное устройство, помещаемое в фокальной плоскости вместе с люминесцентным экраном, который преобразует усиленное изображение спектра на канальной пластине в световое изобра жение Это световое изображение затем считывается соответст вующим регистрирующим устройством, например видиконовой камерой [72] [c.50]

В некоторых случаях, например когда в результате длительной очистки удается получить лишь очень малые количества материала ИЛИ при необходимости исследовать компоненты отдельных клеток, приходится прибегать к микроварианту электрофоретического разделения белков и нуклеиновых кислот. В то же время микроанализ в полиакриламидном геле сам по себе обладает рядом преимуществ. Так, более короткое время, затрачиваемое на проведение электрофореза, а также на окрашивание и обесцвечивание гелей, делает применение микроанализа целесообразньгм даже тогда, когда материала вполне достаточно для макроварианта. Микрометодика при наличии определенного опыта едва ли намного сложнее обычного диск-электрофореза, хотя требует такого специального оборудования, как микропипетки, микроманипулятор, лупа и микроденситометр. Читатели, интересующиеся деталями этого метода, могут обратиться к монографии Нейхоффа [915], в которой поми мо электрофореза освещены и другие виды работ с микроколичествами материала (гомогенизация, диализ, фотометрия, центрифугирование в капиллярах и т. д.). [c.107]

Количественный ана-ииз. В рассмотренных выше способах полуколичественного анализа наличие спектральных линий на фотопластинке и оценка соотноше-юи их интенсивностей определялись визуально, т.е. в значительной степени субъективно. Количественный анализ предполагает объективное измерение плотности почернений аналитических линий с помощью мшфо-фотометра (микроденситометра). [c.404]

Максимальная оптическая плотность почернения на радиофафических пленках может достигать 10. .. 11. В радиационном контроле оптическая плотность составляет, как правило, 2. .. 4. Эту характеристику обычно измеряют на элементах снимка размером 1. .. 3 мм с помощью денситометров, а на элементах снимка площадью до 0,01 мм - с помощью микроденситометров и микрофотометров. [c.60]

Данные с выхода микроденситометра должны быть отфильтрованы фильфами верхних частот с предельной частотой 0,1 пары линии/мм. Пофешность измерения о о не более 10 % при доверительной вероятности 0,95. Должно быть оценено Од не менее чем на 6 пленках. [c.60]

Обработка пленочных изображений. Радиофафический снимок для его оцифровки может сканироваться микроденситометром и преобразовываться с помощью [c.101]

Параметры решетки а 14,5, Ь 17,88, с 17,82 А, 90,8°, 2=4, ф. гр. Р2 с. Трехмериые данные получены в интеприрующей камере Вейссенберга. Интенсивности измерены на микроденситометре. На данном этапе =0.110. [c.137]

Турано и Тернер [61] разделили и определили количественно хлорпромазин и продукты его метаболизма методом двумерной тех и прямой сканирующей микроденситометрии. Каул и др. [62] переводили метаболиты перед хроматографированием в дансилпроизводные. Флуориметрически удавалось обнаружить до 0,314 нг таких производных. [c.200]

Кейли [193] и Бланк [194] описали микроденситометры для определения плотности малых количеств твердых веществ по увеличению объема жидкости после добавления взвешенного количества твердого вещества. Бланк и Уиллард [195] детально описывают микродилатометр [196] и микро-волюмометр, наблюдения в которых производят при помощи микроскопа. Эти методы являются быстрыми, но не очень точными. При определении плотности твердых веществ возникают трудности из-за адсорбции газов [c.158]

Кривые интенсивности, полученные с помощью микроденситометра из рентгеновских днфрактограмм, снятых для некоторых из этих фаз на неориентированных образцах, представлены на рис. 5.1.1 и 5.1.2. [c.296]

IЙ epяют посредством микроденситометра, причем на пленке Утрируются марки почернения для определения зависимости, ду оптической плотностью и интенсивностью. В полученные таьтаты должны быть внесены поправки на отражение от сте- аил кюветы и на различие в объемах в зависимости от направле-. ]4ЯВ, наблюдения. Первичный пучок в этом приборе гасится в специальной ловушке. При применении восьмигранной кюветы, можно измерять рассеяние света под углами в 45,90 и 235°. Соответствующие стенки кюветы снабжены экранами, в каждом из которых имеется небольшое круглое отверстие для выхода рассеян-нога света. Из отверстия свет попадает в трубку, служащую коллиматором. В этом случае поправки на отражение вносить не требуется. [c.707]

Вайзе и Бокхорн [1393] применили методику микродиск-электрофореза для анализа белков мочи у больных после пересадки почки. Количественное определение альбумина в моче они проводили на микроденситометре. При острых реакциях отторжения в моче резко возрастает содержание альбумина и обнаруживаются измеримые количества других белков. [c.365]

С помощью красителей удается определить внутриклеточную локализацию и активность какого-либо фермента на специально приготовленных тканевых срезах (гистохимическое окрашивание). Чаще всего применяют различного рода соли тетразолия, так как продукт восстановления (формазан) представляет собой нераство-. римое ярко окрашенное соединение и местоположение осадка указывает на участок ферментативной активности. Ферменты, прочно связанные с мембранами (такие, как сукцинатдегидрогеназа), обнаружить легко, но растворимые ферменты могут диффундировать из тканевых срезов, если не предпринять специальных мер. Для предотвращения диффузии срезы предварительно обрабатывают поливиниловым спиртом, что удерживает ферменты внутри ткани. Количественные данные по ферментативной активности можно получить с помощью микроденситометрии или элюировав формазан и определив его количество спектроскопически. Ферментативную активность рассчитывают по отношеншо к объему среза или, лучше, к азоту белка. [c.233]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология