Малонат сукцинат

Примером конкурентного ингибирования может служить ингибирование сукцинатдегидрогеназы малонат-ионом. В этом случае катализируемая реакция — окисление сукцинат-иона до фумарат-иона [c.399]

Обратимое ингибирование необходимо для нормального функционирования клетки и служит регуляции ферментов в различных видах, но чаще всего как конкурентное и неконкурентное. Пример конкурентного ингибирования - действие малоната на фермент сукцинатдегидрогеназу - показывает конкуренцию за связывание с АЦ фермента между субстратом (сукцинатом) и ингибитором (малонатом) [c.34]

R сы с дикарбоновыми к-тами (оксалаты, малонаты, сукцинаты и др.), монокарбоновыми к-тами (вплоть до С30), с аминами, а также комплексонаты. Последние применяют в технологаи разделения и глубокой очистки РЗЭ методами ионного обмена, экстракции. [c.488]

В малонат-ионе ООС—СНг—СОО две карбоксильные группы расположены ближе друг к другу, чем в сукцинат-ионе. Опытным путем установлено, что константа равновесия связывания малонат-иона почти такая же, как и в случае связывания сукцинат-иона (около одной трети последней, что соответствует разности в энергии связывания Гиббса 2,8 кДж-моль- , а это мало по сравнению с общей энергией Гиббса связывания фермента с каждым из ионов). Можно сделать вывод, что связывающие центры молекулы данного фермента для двух карбоксильных групп находятся на таком расстоянии, которое равно среднему значению расстояний между карбоксильными группами в недеформированных сукцинат- и малонат-ионах. [c.399]

М, а константа для конкурентного ингибирования малонатом составляет 10Х Х10-3 М. Каков процент ингибирования, если в опыте используются концентрации сукцината и малоната, равные соответственно 10- и 15-10- Ш [c.334]

Рис. 16-7. Природные трикарбоновые и дикар-боновые кислоты, способные стимулировать окисление пирувата в суспензиях мышечной ткани. Другие встречающиеся в природе органические кислоты, например виннокаменная, щавелевая и кетоадипиновая, такой способностью не обладают. Активные кислоты приведены здесь в той последовательности, в какой они появляются в цикле лимонной кислоты. На каждом этапе происходит только одно химическое изменение. Отмечен этап, ингибируемый малонатом в присутствии малоната цитрат окисляется до сукцината, который накапливается.

Определение величин Ks для сукцината и Ki для малоната при использовании различных акцепторов электронов. [c.428]

Определение типа ингибирования окисления сукцината малонатом. [c.436]

Возникло предположение, что включение СО2 в сукцинат происходит также в животных тканях, н для проверки этого предположения Вуд исследовал метаболизм препарата печени голубя при этом для блокирования сукцинатдегидрогеназы был добавлен малонат (дополнение 9-В). К удивлению исследователя накапливающийся сукцинат не содержал изотопа С. Вскоре, однако, было показано, что СО2 включается в карбоксильную группу а-кетоглутарата, смежную с карбонильной группой. При последующем превращении в сукцинат этот карбоксил утрачивается (рис. 9-2), что и объясняет отсутствие С в сукцинате. В историческом плане примечательно, что эти наблюдения были неправильно интерпретированы большинством биохимиков того времени. Они согласились, что цитрат не принимает участия в цикле трикарбоновых кислот. [c.322]

Сукцинат Фумарат Малонат [c.149]

Если в среду добавить малонат (ингибитор), то в результате структурного сходства его с истинным субстратом сукцинатом (наличие двух таких же ионизированных карбоксильных групп) он будет взаимодействовать с активным центром с образованием фермент-ингибиторного комплекса, однако при этом полностью исключается перенос атома водорода от малоната. Структуры субстрата (сукцинат) и ингибитора (малонат) все же несколько различаются. Поэтому они конкурируют за связывание с активным центром, и степень торможения будет определяться соотношением концентраций малоната и сукцината, а не абсолютной концентрацией ингибитора. Таким образом, ингибитор может обратимо связываться с ферментом, образуя фермент-ингибиторный комплекс. Этот тип ингибирования иногда называют ингибированием по типу метаболического антагонизма (рис. 4.20). [c.149]

Конкурентный ингибитор связывается с активным центром фермента и далее, в отличие от фермент-субстратного комплекса, не подвергается ферментативной трансформации Следовательно, конкурентный ингибитор выступает конкурентом субстрату за связывание с активным центром Изменяя концентрации субстрата, можно вытеснить из комплекса ингибитор Примером конкурентного ингибитора сукцинатдегидрогеназы является малонат (в норме — субстратом выступает сукцинат) [c.74]

Конкурентное ингибирование. Примером конкурентного торможения может служить действие малоната, который подавляет превращение сукцината в фумарат. Это действие чрезвычайно специфично и про- [c.204]

Частные реакции цикла можно изучать на изолированных митохондриях или митохондриальных фрагментах, однако изолированные митохондрии не способны окислять все субстраты цикла Кребса. Этот поразительный факт, но-видимому, является следствием удаления митохондрий из естественного для них клеточного окружения. Митохондрии из мышц насекомых и из сердца голубя непроницаемы для большинства субстратов цикла Кребса. Митохондрии печени легко окисляют сукцинат, хуже пируват и а-кетоглутарат и почти совсем не окисляют малат. Тот факт, что при добавлении малоната ингибируется окисление а-кетоглутарата, свидетельствует о том, что процесс окисления идет через образование сукцината. Митохондрии животных не окисляют добавленный НАД-Нг. Растительные же митохондрии, нанример митохондрии из картофеля, батата, маша и цветной капусты, интенсивно окисляют наряду с сукцинатом и малатом НАД-Нг, причем при наличии контроля дыхания со стороны АДФ [96] (Сайкс и Боннер мл., 1965, неопубликованные данные). Остальные субстраты цикла Кребса окисляются медленно или совсем не окисляются. Эти факты можно истолковать по-разному. Во-первых, можно предполагать, что в процессе выделения митохондрий произошло изменение проницаемости их мембран. Согласно второму предположению, при выделении митохондрий и последующей промывке могут вымываться пермеазы. Третье предположение сводится к тому, что не все реакции цикла Кребса происходят в митохондриях. Наконец, не исключена возможность, что в изолированных митохондриях цикл Кребса подавлен. Две первые точки зрения не имеют пока никакой экспериментальной основы. Некоторые косвенные данные, подтверждающие третье предположение, делают его заслуживающим пристального внимания. Наконец, четвертая [c.59]

Шуттльворт [28—32] в ряде работ, посвященных изучению комплексообразования хрома (III) с оксалатом, малонатом, сукцинатом и т. д., применил косвенный анализ кривых кондуктометрического Нитрования. Подробности этих исследований можно найти в оригинальных работах. [c.262]

Средние коэффициенты активности растворов формиата натрия однозамещенных адипата, малоната, сукцината и гептилата на трия при 25° С............ [c.358]

Приводятся результаты анализа газообразных и твердых продуктов, образующихся при термическом разложении оксалата, малоната, сукцината и адипината цикка. Оонавными продуктами являются СОг, СО, Нг, ZnO и углеродный полимер, выход которого увеличивается с ростом молекулярного веса соли. На основании соотношения количеств.8 продуктов в процессе разложения предлагается механизм термораспада цинковых дикарбоксилатов, по которому единичным актом превращения является де1ка1рбоксилйрова ие и образование иоя-радикалов, взаимодействующих с соседней карбоксилатной группой. Результатом такого взаимодействия является образование оксо- и алкоголят-карбоксилатных соединений. Табл. 2, библ, 8 назв, [c.115]

Для раствора сукцината натрия, в который добавлено определенное количество сукциноксидазы, спектрофотометрическим методом были получены приведенные ниже значения начальных скоростей. Скорости выражены через изменения поглощения излучения с длиной волны 2500 А за 10 с. Рассчитать Уд, Лд и l для малоната. [c.329]

Рис. 16-8. Малонат-один из. конкурентаых ингибиторов сукцинатдегидрогеназы (см. также рис. 19-12). Обратите внимание на сходство структуры малоната и сукцината.

Рис. 21-1, Малоняя-СоА-непосредственный предшественник двухуглеродных единиц цепей жирных кислот, Малокил-СоА представляет собой производное малоната-эффективного конкурентного ингибитора сукцинатдегидрогеназы (разд. 9.13). Поэтому может показаться странным, что именно малонил-СоА служит нормальным предшественником в биосинтезе жирных кислот. Однако малонил-СоА как таковой не ингибирует активность сукцинатдегидрогеназы, возможно, из-за того, что у него нет двух свободных карбоксильных групп, ориентированных в пространстве соответствующим образом и обеспечиваюпц1х комплементарное взаимодействие сукцината с центром его связывания в молекуле фермента. Кроме того, свободный малонат не является предшественником малонил-СоА последний, как мы увидим далее, образуется непосредственно из аце-тил-СоА путем его карбоксилировання.

Известны и другие примеры такого рода разделения внутриклеточного пространства на отдельные отсеки . Внутримитохондриальпый аце-тил-КоА, сам по себе диффундирующий наружу с большим трудом, сначала превращается в цитрат, а затем последний в цитоплазме расщепляется с образованием ацетил-КоА, который теперь может быть использован для реакций, происходящих в этой части клетки. Добавленные извне сукцинат и малонат свободно поступают к митохондриальной сукцинатдегидрогепазс. Совсем не так обстоит, однако, дело с фумаратом и оксалоацетатом. Митохондриальная фумараза так ке непосредственно недоступна д.пя добавленного фумарата. [c.367]

ОСНОВНЫХ сукцинатов [100, 126] и малонатов, которые были охарактеризованы как стекловидные и илоподобные продукты. В одной из более поздних работ [97 [ для получения полимера использована реакция (1Х-20) основного ацетата бериллия с хлор-ангидридами дикарбоновых кислот. Эквимолекулярные количества исходных веществ нагревали при 80—110° С в таких растворителях, как бензол и толуол были получены только порошки с низким молекулярным весом. Исходными веществами служили основные ацетаты, пропиопаты и бензоаты бериллия в сочетании [c.253]

Рис. 2.8. Зависимость 1 К (при 25 °С) от размера хелатного кольца, образуемого биденгатным лигандом оксалат (Ох -), малонат (МаЬ -) и сукцинат (5ис -) [8].

Мироха и Де-Вей [37] проводили хроматографический анализ диэтиловых эфиров пяти дикарбоновых кислот на поли-(диэтиленглйкольсук-цинате) при 150°. Эфиры элюировались в следующем порядке малонат, фума-рат, сукцинат, малеат и малат (табл. 60). Аналогичные результаты получены на поли-(1,4-бутандиолсукцинате). Ненасыщенный эфир ч с-конфигурации (малеат) на обоих полиэфирах элюировался после сукцината вследствие того, что он более полярен. Однако транс-изомер (фумарат) элюировался до сукцината. Это согласуется с общеизвестным фактом, что /иранс-изомеры в большинстве растворителей менее растворимы, чем цис-изомеры. Примечательно, что хорошее разделение двух изомеров было достигнуто на полярных набивках, хотя неполярные набивки дают лучшее разделение таких пар в ряду высших жирных кислот. [c.546]

Эти вещества получаются конденсацией двухосновных кислот с двухосновными спиртами. Полиэфйры были одними 3 первых выеокополимеров, синтезированных Каротерсом с сотрудниками [16, 17, 19Ь]. Точка плавления членов ряда полиэфиров [18, 38], получаемых из мономерных молекул различных длин до декаметиленгликоля и се-бациновой кислоты НООС—(СНг) — СООН, лежит в пределах от 40 до 80°С за двумя исключениями этилен-малонат [—0(СНг)20—СО—СНг—СО] , у которого точка плавления лежит ниже комнатной температуры, и этилен сукцинат 1—0(СНг)20—СО—(СН2)г—СО—] . который плавится около 108°С. [c.185]

Пиролиз возникает при обыкновенной перегонке при 310° и становится бурным при 350 — 355°. В результате получаются не чистые продукты, поскольку при реакции образуются также вода, углеродистый остаток и масло, обладающее температурой кипения 160°—205°. Совершенно другие результаты получаются при перегонке того же вещества в вакууме 3 — 6 мм Hg при 340 — 360 — ЗЭО . Здесь также имеет место образование сукцинового ангидрида (2,5 г из 15,4 г эфира), но главная часть (10 г) дестиллата представляет собой изомер эфира, температура плавления которого на 40° выше температуры плавления исходного вещества. Строение его не было определено. Если сравнивать между собой пиролиз этилен-сукцината и этилен-малоната, то можно заметить, что последний образует значительно ббльшее количество двуокиси углерода. [c.544]

Смотреть страницы где упоминается термин Малонат сукцинат: [c.168] [c.174] [c.358] [c.426] [c.436] [c.320] [c.362] [c.1108] [c.147] [c.225] [c.245] [c.484] [c.719] [c.205] [c.14] [c.397] [c.293] [c.294] [c.304] [c.125] [c.67] [c.52] [c.545] [c.320]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология