Колориметры проточные

Аналогичен колориметру I, за исключением того, что в нем установлены 3 проточные кюветы в одной и той же камере. Свет в кюветы поступает от одной и той же лампы. Это позволяет автоматически вводить поправки с учетом поглощения холостого раствора, а также осуществлять анализ дифференциальным методом. Диапазон 340—700 нм регистрируются непосредственно значения поглощения. [c.405]

Основными узлами прибора Автоанализатор I являются пробоотборник, насос, колориметр и самописец. На рис. 20.1 показана схема двухканального Автоанализатора II с печатающим устройством, в котором один канал служит для определения простых цианидов (без УФ-облучения), а второй канал—для определения общего содержания цианидов. Использовался колориметр с проточной кюветой на 15 мм и пробоотборник для отбора 20 проб в час, приспособленный для работы с выносным таймером, с помощью которого оптимизировали скорости отбора пробы. [c.229]

Точные проточные колориметры не являются редкостью в количественном колориметрическом анализе. Однако применительно к хроматографии они должны соответствовать следующим требованиям а) длительная термическая стабильность компонентов б) исключение утечки жидкости под давлением [c.26]

Фирма "Labotron" выпускает модульный универсальный проточный колориметр UD 1, способный одновременно выполнять до шести колориметрических измерений в потоке. В центре прибора находится лампа, вокруг которой имеются приспособления для присоединения до 6 колориметров. Проточные кюветы размещаются между лампой и колориметрами. Для выбора рабочих длин волн в колориметрах ис- [c.106]

Пузырьки воздуха удаляют из потока образца непосредственно перед измерительным прибором при помощи специального устройства, соединенного с проточной кюветой. Регистрирующим прибором в большинстве случаев служит колориметр, но при необходимости его можно заменить УФ-спектрофотометром, флуори-метром, пламенным фотометром или сцинтилляцион-ным счетчиком. [c.543]

Особый интерес представляет способ соединения проточных ячеек с оптической системой с минимальным привлечением дополнительного оборудования. В приборе Te hni on SMA [105]. излучение передается к проточным ячейкам колориметра и от них — по оптическим волокнам. В результате использования методики разделения во времени все проточные ячейки анализируются с помощью одного фотоэлектронного умножителя (ФЭУ). Это достигается благодаря применению вращающегося сканирующего диска с прорезью, которая открывает последовательно каждый канал на определенный отрезок времени. Устройство такой системы показано на рис. 3.10. [c.128]

Для наблюдения за ходом хроматографического анализа окрашенных соединений, например смолистых веществ топлив и масел, могут использоваться обычные и автоматические самопишущие колориметры. На рис. 18 приведены схема и общий вид автоматического самопишущего колориметра с проточной кюветой, предложенной К. В. Чмутовым и В. Т. Авгуль [46] для хроматографиче- [c.47]

Интенсивность окраски реакционной смеси, получающейся при добавлении нингидринового реагента к эффлюенту, измеряется проточным колориметром в условиях постоянной скорости потока жидкости. Возникающее изменение напряжения на фотоэлементе регистрируется самописцем. Обычно выходное напряжение колориметра на самописец составляет О—5 мВ. При максимальном развитии окраски (наивысшая оптическая плотность, ОП) напряжение равно нулю, а при отсутствии, за исключением фона реагентов (фоновая линия), напряжение составляет 5 мВ. Для точной записи результатов хроматографического анализа самописец должен а) точно реагировать только на сигнал фотоэлемента калориметра б) допускать длительную работу с минимальным дрейфом из-за тепловых и электрических помех в) иметь постоянную скорость лентопротяжного механизма для обеспечения точной идентификации пиков по времени. Если запись на самописце производится на диаграммной бумаге с линейной шкалой, то для расчета пиков аминокислот или пептидов необходим шаблон с нанесенной сеткой ОП. Если самописец снабжен диаграммной бумагой со шкалой в единицах ОП или логарифмической шкалой, величина поглощения находится непосредственно. Другими вспомогательными элементами, которые связаны с записью анализа и считаются составными частями системы регистрации, являются устройства, осуществляющие расширение шкалы, логарифмирование сигнала, интегрирование пика, а также цифропечать и связь с ЭВМ. Расширение шкалы представляет собой метод, по которому вся шкала самописца может быть легко заменена с О—5,0 мВ на 4,0—5,0 или 4,5— [c.32]

Рассмотрим возможность автоматизации хроматографического анализа ферментов на примере, заимствованном из статьи [42]. Авторы статьи провели хроматографическое разделение ферментов на автоматическом анализаторе фирмы Te hni on (рис. 8.22). В этом приборе используется пропорциональный насос Р с 12 пластмассовыми трубками различного диаметра. Буферный раствор из системы формирования градиента прокачивается в колонку через трубку 1. Разделение белков происходит в колонке К. Основная часть элюата из колонки поступает в коллектор фракций F и затем используется после окончания анализа. В процессе хроматографирования от основного потока элюата отделяется очень небольшая часть, которая поступает в три аналитические секции, где проводится определение основной фосфатазы, трансаминазы и всех белков. После определения основной фосфатазы часть элюата поступает через трубку 2 вместе с пузырьками воздуха, введенными через трубку 3, и субстратом из трубки 4 в аналитическую систему. В короткой стеклянной спирали М происходит тшательное смешивание водных растворов, полученная смесь проводится через термостат I, в котором при определенных условиях происходит расщепление субстрата. Чтобы реакция прервалась, к смеси через трубку 5 добавляется раствор соответствующего реагента. Через смесительную спираль результирующая смесь вводится в проточную кювету колориметра С и затем идет на оброс. Сигнал детектора записывается самописцем Z, фиксирующим концентрацию основной фосфатазы (I). На абсциссу наносятся номера фракций. Определение трансаминазы проводится аналогичным образом. Через трубки 6—9 подаются образец, воздух, субстрат и реагент соответственно. Окончательный продукт реакции проходит через колориметр Сг. Результирующая концентрация трансаминазы пропорциональна кривой III записываемой самописцем. Третья аналитическая система, регистрирующая суммарное содержание белков, несколько проще, чем две другие. Часть элюата поступает через трубку 10, воздух проводится через трубку 11, а реагент для обнаружения белков — через трубку 12. Растворы смешиваются в спирали М, полученная смесь поступает в проточную ячейку колориметра Сз. Содержание белков в смеси записьгеается в виде кривой II. [c.80]

Ход определения. Пробу растворителя 3—5 мл разбавляют спиртом до предполагаемого содержания U около 0,2—0,5%. Добавляют к 5 мл раствора 8—10 мг пирокатехина, 20 мг меди и 10 капель 20%-ного раствора NaOH, быстро нагревают до слабого кипения и сразу охлаждают в проточной воде. При легком взбалтывании раствор подкисляют НС1 до перехода синей окраски раствора в красную, затем добавляют воду до полного растворения осадка Na l. Выдерживают раствор до полного оседания порошка меди и осторожно сливают с осадка. Интенсивность окраски раствора сравнивают на колориметре с окраской эталонов, содержащих от 0,01 до 0,10 мг/мл четыреххлористого углерода. [c.301]

С помощью механического устройства образцы переносятся к дозирующим устройствам, вюдящим соответствутощие добавки. Затем каждый обработанный образец поступает в измерительное устройство (колориметр, электроды и т.д.). При непрерывном анализе образец преобразуется насосной системой в непрерывный поток, а необходимые добавки реагента вюдятся путем смещения потоков образца и реагента В конечном итоге обработанный образец прокачивают через проточное измерительное устройство и затем направляют в отходы. [c.20]

Сдвоенный дифференциальный колориметр. Стандартный коло-риметр не обеспечивает возможности непосредственного измерения поглоще-ш-ш aнaлизиpye югo pa твqзa относите.гшно хшостого раствора. В сдвоенном дифференциальном колориметре излучение лампы делится на два пучка и пропускается через две независимые оптические систе мы, что позволяет производить автоматическое вычитание поглощения холостого раствора. Для нормальной работы прибора необходим точный временной контроль процесса анализа с тем, чтобы анализируемый и холостой растворы одновременно попадали в соответствующие проточные кюветы. Если дифференциальный режим не нужен, прибор может функционировать как два независимых колориметра. [c.148]

А — диализатор Б — водяная баня (95 °С) В — смесительная спираль Г — дозирующий насос Д — 0,15 М K l Е — ионообменная копонка Ж — 0,25 М K l 3 — самописец И - колориметр (660 нм, проточная кювета 15 мм). [c.307]

Фирма Labotron выпускает модельный универсальный проточный колориметр UD 1, выполняющий до 6 измерений в потоке [67]. В центре прибора находится лампа, вокруг которой расположено до 6 колориметров. Между лампой и колориметрами размещены проточные кюветы. Для выбора рабочих длин использованы интерференционные светофильтры и два детектора, перекрывающие области длин волн 340—600 и 420—1100 нм. [c.251]

Известно несколько стандартных колориметрических методов количественного определения углеводов [213], которые могут быть использованы в сочетании с автоматизированными аналитическими системами для детектирования углеводов, вымываемых с различного рода колонок. В первоначальном варианте углеводного анализатора фирмы ТесЬп1соп [74] реализован орцин-сернокислотный метод [73], который включает динамическое смешение реагента с элюатом, поступающим с колонки, при помощи перистальтического многоканального насоса. Поток жидкости, разделенный пузырьками воздуха, проходит затезм через нагревательную баню и после удаления пузырьков воздуха поступает в кювету проточного колориметра (420 нм). Предел обнаружения по сахарам для этой системы составляет около 10 моль. Использование насосов, изготовленных нз кислотоустойчивых материалов и обеспечивающих прецизионную подачу реагента (и, следовательно, низкий уровень шума нулевой линии), позволило отказаться от разделения потока жидкости пузырьками воздуха, что привело к значительному повышению чувствительности автоматизированного орцин-сернокислотного метода детектирования сахаров (в случае пентоз Ы0- ° моль, в случае гексоз З-Ю моль) [214]. Такого рода насосы в настоящее время широко используются в аналитических системах данного типа [80, 98]. [c.37]

Разработка этих приборов оказалась прежде всего возможной благодаря доступности перистальтических насосов. Самой важной частью этих насосов является тонкая гибкая пластиковая трубка, которая сжимается движущимся вперед цилиндром на вращающемся вдоль трубки диске и разжимается после прохождения определенного расстояния. Вследствие этого жидкость движется внутри трубки с постоянной скоростью. Через определенные промежутки времени в трубку вводится воздух (или другой газ, а иногда жидкость), так что жидкость оказывается разделенной на порции, которые при движении вперед практически не перемешиваются Отдельные порции жидкости, разделенные воздушными перемычками определенной длины, входят поочередно в смеситель и реакционные камеры или спиральные трубки, в которые автоматические насосы подают необходимый растворитель, буферный раствор и растворы реагентов. Кроме того, предусмотрены возможность регулирования температуры реакционной системы. Растворы можно пропускать даже через предварительно нагретую систему трубок для того, чтобы реакция прошла более полно, например чтобы окраска развилась полностью. Затем, если раствор окрашен, он поступает в проточную кювету колориметра или спектрофотометра. Один из Дзух пучков света (одинаковой интенсивности) проходит через кювету с анализируемым раствором, а другой — через кювету сравнения, в которой находится растворитель или холостой раствор. Пучки света попадают на два фотоэлемента, которые включены в мостовую схему. Разность электрических токов усиливается, преобразуется в цифровые данные и выдается на печатающее устройство. Если прибор откалиброван по стандартным веществам, то можно получить непосредственное значение концентрации. [c.545]

Разделение аминокислот можно проводить разными методами, но для анализа аминокислотного состава полипептида после его гидролиза обычно используют автоматическую ионообменную хроматографию. Полное разделение аминокислот, их идентификация и количественная оценка занимают менее трех часов. В методе Мура и Штейна используют короткую и длинную колонки, заполненные смолой из сульфонированного полистирола в Ыа+-форме. Когда кислотный гидролизат при pH 2 наносят на колонку, аминокислоты связываются в результате катионного обмена с Na+. Далее колонку элюируют раствором цитрата натрия при заранее запрограммированных значениях pH и температуры. Короткую колонку элюируют одним буфером, длинную— двумя. Элюат обрабатывают нингидрином, измеряя интенсивность окраски с помощью проточного колориметра. Данные автоматически регистрируются на ленте самописца и могут передаваться в компьютер для вычисления площади под пиком (рис. 3.12). [c.31]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология