Кюветы для измерения светорассеяния

Кювета, помещенная в термостат. Для измерения светорассеяния используют кюветы различных типов. Применение конусообразных кювет позволяет свести к минимуму отражения от границы раздела стекло — жидкость (рис. 13.13). В обычных фотометрах используют кюветы объемом 8—30 мл, в лазерных фотометрах можно пользоваться кюветами объемом в 10 —10 раз меньше. Кювету помещают в термостат, заполненный жидкостью, показатель преломления которой соответствует показателю прелом- [c.206]

Рис. 13.13. Кюветы для измерения светорассеяния.

Кювета для измерения светорассеяния [c.209]

Фотометры для измерения светорассеяния высокомолекулярных соединений выполняют разнообразные функции, позволяют проводить наблюдения под несколькими углами и снабжены набором кювет и поляризаторами, которые дают возможность получить информацию о форме частиц. [c.317]

Рис. 54. Кюветы для светорассеяния (для измерения углового распределения).

Рис. 4.20. Схема измерения светорассеяния на приборе ФПС-3 1 — ртутная лампа 2 — коллимирующее устройство 3,4 — компенсирующий и измерительный фотоумножители 5 — кювета в — предварительные усилители 7 — схема сравнения 8 — усилитель д — фазовый детектор 10 — реверсивный двигатель 11 — синхронный двигатель потенциометра 12 — сервоусилитель 13 — реохорд 14 — потенциометр

Подготовка пробы масла для измерения светорассеяния в этом случае состоит в следующем. Масло предварительно подогревают до 60—70 °С и тщательно перемешивают. После этого в коническую колбу вместимостью 200 см помещают 0,1—0,3 г масла, разбавляют изооктаном в отношении 1 250 и определяют оптическую плотность пробы. Если ее значение меньше 0,5, то полученным раствором заполняют кювету и измеряют индикатрису рассеяния. При большем значении оптической плотности пробы увеличивают разбавление. В табл. 4.5 представлены индикатрисы рассеяния света частицами [c.110]

Нефелометры и нефелометрия. На явлении опалесценции и законе светорассеяния Рэлея основано действие весьма важного оптического прибора нефелометра, с помощью которого измеряют интенсивность опалесценции коллоидного раствора, а также степень мутности суспензии или эмульсии. На рис. 160 показана схема прибора Доти, предназначенного для визуального измерения светорассеяния. В этом приборе свет от источника 1 падает на рассеивающий раствор, находящийся в термостатированной кювете, и пластинкой 2 частично направляется на пластинку из молочного стекла 4, которая является стандартом мутности . Интенсивность стандартного пучка от пластинки 4 и света, рассеянного под углом 90° в кювете 3, сравнивается в фотометре Пульфриха 5 и уравнивается с помощью лимбов 6. Отсчеты на этих лимбах /1 и 1 характеризуют отношение интенсивностей рассеянного света. [c.382]

Кювета, для измерения /Л-— — светорассеяния [c.209]

При измерении светорассеяния часть падающего луча при выходе из кюветы отражается назад в жидкую среду двумя границами раздела жидкость—стекло кюветы и стекло кюветы — воздух. Общее ослабление пучка может быть выражено формулой [c.132]

Существуют два метода разбавления растворов при измерениях светорассеяния. При первом — последовательное разбавление производится непосредственно в кювете. При втором— приготовляются сразу растворы требуемых концентраций (например, с, Зс/4, с/2, с/3 и т. д.), которые центрифугируются, а затем измеряется рассеяние света ими в разных кюветах. [c.269]

Измерения светорассеяния выполняются при помоши специально приспособленных для этой цели фотометров. Одна из схем такого прибора показана на рпс. 7.30. В комплект прибора входят различные типы кювет, позволяющие регистрировать рассеяние под любым углом. Растворы, предназначенные для измерений на таком приборе, должны готовиться с особой тща- [c.447]

Рнс, 2.8. Кювета для измерений светорассеяния при высоких давлениях [92] [c.73]

Существует два способа разбавления растворов при измерениях светорассеяния. При первом последовательное разбавление осуществляют непосредственно в измерительной кювете. При втором — приготовляют и центрифугируют сразу несколько растворов с убывающей концентрацией, а затем последовательно промеряют их (в различных кюветах). Преимущество первого состоит в том, [c.88]

Рис. 53. Кюветы для измерения светорассеяния под одним (а), двумя б) и тремя (в, г) углами.

Не только растворители и растворы, но и все стеклянные приборы, применяемые при измерении светорассеяния, например пипетки, бутылки для растворов, кюветы и др., должны быть очищены. Это легко сделать путем промывки паром растворителя [68]. Типичный промыватель приведен на рис. 61. [c.161]

Методика проведения измерений света, рассеянного дисперсными системами, и обработки экспериментальных индикатрис заключается в следующем. После юстировки оптики кювету устанавливают на предметном столике между коллиматорной линзой Лг и приемной линзой Л . При этом положение приемной диафрагмы регулируют так, чтобы скомпенсировать призматическую ошибку, вносимую кюветой. Светорассеяние на углах от О до 3° измеряют применяя набор нейтральных светофильтров. Показания на ленте осциллографа, соответствующие этим участкам, считывают с учетом коэффициента ослабления светофильтров. Пример, записи индикатрисы рассеянного света под малыми углами приведен на рис. 107. Порядок обработки индикатрис [c.316]

Если исключить попадание пыли в исследуемый раствор, то основными источниками ошибок при измерении рассеяния света являются абсорбция света раствором, флуоресценция раствора, отражение от стенок кюветы и разница между показателями преломления содержимого кюветы и среды, в которую она помещена. Поэтому при расчете молекулярного веса из данных по светорассеянию следует вводить соответствующие поправки. [c.114]

Все стеклянные приборы, применяемые при измерениях светорассеяния (кюветы, колбы и др.), должны быть тщательно очище- [c.89]

Иеред измерением светорассеяния необходимо удалить пыль как из образца, так и из растворителя, что не так легко сделать, особенно когда речь идет о вязких растворах ДНК. Обе группы исследователей, которые разрабатывали приборы для измерения малоуглового рассеяния, вынуждены были специально заниматься усовершенствованием методики удаления частиц пыли из растворов ДИК. Фрейлих и его сотрудники готовили эмульсию из раствора ДИК с половинным объемом смеси хлороформ — изоамиловый спирт (5 1), центрифугировали водный с.чой 2 час при 25 ООО g и тщательно отсасывали верхнюю часть надосадочной жидкости. Кювету прибора споласкивали несколько раз раствором исследуемого препарата, очищенным таким способом. Харпст и его сотрудники пропускали образцы ДИК через миллипоровый фильтр типа СЗ при небольшом положительном давлении. Путем измерения вязкости опи показали, что при этом не возникает сдвиговых напряжений, достаточных для того, чтобы вызвать разрыв цепей ДНК фага Т7 или более крупных молекул ДИК фага Т2 106]. [c.236]

Калибровка кюветы для измерения светорассеяния. Абсолютная калибровка фотометра Брайса — Сиайзера была подробно описана ранее [23—25]. Одпако полезно описать калибровку определенной кюветы и системы щелей для некоего стандарта. Прежде всего с помощью каждой из систем кювета — гцель измеряется фоновое рассеяние, затем в обеих кюветах измеряется рассеяние коллоидной сусиснзией двуокиси кремния (людокс). Рассеяние стандартной суспензией должно быть в 5—20 раз выше рассеяния водой, поскольку постоянную кюветы необходимо измерять в диапазоне величин рассеяния, который соответствует диапазону этих величин прп определении молекулярных весов. Постоянную кюветы рассчитывают как отношение разности между рассеянием стандартным образцом и водой в стандартной кювете к разности между рассеянием стандартным образцом и водой в калибруемой кювете. [c.258]

Кинетику процесса полимеризации (поликонденса ции) обычно изучают по зависимости молекулярных параметров образующегося полимера от конверсии. Последнюю контролируют чаще всего дилатометрией. Для определения молекулярных параметров на различных этапах процесса пользуются методом отбора проб полимера. Метод светорассеяния предоставляет возможность непрерывно измерять молекулярные параметры полимера без вмешательства извне в полимеризующуюся систему [541]. Р1ефелометрическую кювету, в которой проводят полимеризацию, нетрудно дополнить капилляром для дилатометрии (см., например, [543] или [544]). Измерения светорассеяния производят, следовательно, для раствора полимера в собственном мономере, что возможно благодаря различию в показателях преломления полимера и мономера. [c.265]

Используя законэмерности светорассеяния в соответствии с теорией Рэлея и ослабления светового потока в соответствии с законом Бугера — Ламберта — Бера, рассчитайте радиус частиц дивинилсти-рольного латекса (варианты I—IV) по результатам измерения оптической плотности О в кювете длиной 5,01 см при длине волны света Л [c.129]

Измерение А ионообменника при одной характеристической длине волны окращенного соединения возможно при использовании матовых (опаловых) стекол, которые помещают в каналы сравнения и образца. Поскольку матовые стекла (опаловые, лавсановая калька и др.) рассеивают свет гораздо сильнее образца, вклад рассеяния образца в общее светорассеяние незначителен и ошибка измерения А, обусловленная светорассеянием, мала. Кроме того, прошедапий и рассеянный ионообмен-ником свет равномерно рассеивается матовыми стеклами, и детектора достигает средняя и постоянная часть общего прощедщего через кювету светового потока [28]. При этом уменьщаются величины АЛк и АЛям, поэтому становится возможным их измерение при одной длине волнь]. Основной недостаток метода — уменьщение интенсивности светового потока, достигающего детектора. Это может приводить к увеличению погрещности измерения А. Очевидно, что относительное светорассеяние образца уменьщается при увеличении светорассеяния стекол. Поэтому, варьируя велтину светорассеяния применяемых стекол, можно найти компромисс между снижением чувствительности детектирования и светорассеянием образца и свести к минимуму погрещности измерения А при одной длине волны. [c.335]

Цилиндрические кюветы, применяемые для измерения угловой асимметрии светорассеяния и изготовленные из обыкновенного стекла, списаны Витнауэром и Шерром [43]. [c.111]

Сильное светорассеяние, обусловленное матрицей, может затруднять измерения. Однако концентрация белков в иммобилизованных ферментах достаточно высокая. Следовательно, оптическая плотность растворов белков в области полос поглощения, как правило, высока. Таким образом, поглощение света эффективно конкурирует со светорассеянием. При возбуждении свет поглощается очень тонким слоем поверхности конъюгата белок — матрица, и поэтому флуоресценцию следует наблюдать с фронтальной части поверхности носителя с иммобилизованным белком. Кро.ме того, поскольку излучение имеет большую длину волны по сравнению с длиной волны при возбуждении,. флуоресценция может быть легко отделена от светорассеяния. Гейбл и др. [26] описали кювету, с помощью которой им удалось методом флуоресценции исследовать конформационные изменения иммобилизованных трипсина и химотрипсина, вызываемые мочевиной, нагреванием или присутствием специфических лигандов. Поскольку эту кювету не всегда можно применять, Барел и Рузенс [3] сконструировали очень простую цилиндрическую флуоресцентную кювету, схема которой показана на рис. 9.5. [c.253]

Интенсивность светорассеяния обычно измеряется с помощью чувствительных фотоумножителей, смонтированных на держателе, который может перемещаться по окружности относительно центра системы. В центре находится кювета с раствором белка, которая имеет полуоктагональную форму, с плоскими окошечка-.ми в-направлении падающего пучка света, а также под углами 45, 90 и 135° (рис. 35). Рассеянный свет направляется на фотоумножитель и регистрируется с помощью гальванометра. Для перевода результатов этих измерений в абсолютные значения интенсивности светорассеяния прибор предварительно калибру- [c.139]

Гемолиз эритроцитов проводят в кюветах с наружными размерами 20x40x10 мм и рабочим объемом 4 мл. Точность хода луча ФЭКа составляет 0,01 мм. Для увеличения точности хода лучей ограничивают диаметр центрального окна кюветы до 0,8 см. Чувствительность ФЭКа при этом уменьшается, но результаты становятся более стабильными за счет уменьшения вклада светорассеяния. Измерение светопропускания проводят при длине волны 490 нм, так как в данном случае коэффициент молярной экстинкции оксигемоглобина минимален. Следовательно, при использовании этого метода регистрации тестируется не сам гемолиз (выход гемоглобина в среду инкубирования), а повреждение мембран эритроцитов светорассеяние исследуемых образцов изменяется за счет разрушения мембраны, в том числе ее цитоскелета. Выход гемоглобина — явление вторичное и при длине волны 490 нм практически не влияет на регистрируемый сигнал. [c.254]

Цитохромы были обнаружены первыми среди компонентов дыхательной цепи благодаря их различным спектрам поглощения в видимой области. Индивидуальные цитохромы имеют одну полосу поглощения в окисленной форме и, как правило, три полосы поглощения в восстановленной форме. Однако измерение абсолютных спектров при исследовании цитохромов в интактных митохондриях сопряжено с большими трудностями, которые обусловлены неспецифическим поглощением и светорассеянием органелл. К тому же эти параметры могут меняться при изменении объема матрикса за счет метаболических процессов (разд. 2.7). В связи с этим спектры цитохромов обычно определяют с помощью чувствительной дифференциальной, или двухлучевой, спектроскопии, когда луч света с постепенно возрастающей длиной волны делится между двумя кюветами, где находятся митохондрии. Условия в кюветах должны быть идентичными, за исключением того, что в одну из них добавляют компонент, изменяющий степень восстановленности исследуемых цитохромов (рис. 5.4). Сигнал от кюветы сравнения затем автоматически вычитается из сигнала от кюветы с образцом, что позволяет исключить эффекты неспецифического поглощения. На рис. 5.5 показаны спектры восстановленного и окисленного выделенного цитохрома с, их дифференциальный спектр (восстановленный минус окисленный), а также аналогичныйдифферен- [c.103]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология