Галактоза, определение в воде

Для определения принадлежности дрожжей к тому или иному Р.ИДУ используют методы, изложенные на стр. 499. Основным методом является выращивание их на разных специальных средах. Например, чистые культуры дрожжей выращивают 1) на дрожжевой воде с двухпроцентными растворами различных сахаров — глюкозой, галактозой, сахарозой, лактозой и др. 2) на синтетических средах с различными источниками азотистого питания — пептоном, сернокислым аммонием, нитратами 3) на других твердых средах. [c.538]

Раствор фукозы, маннозы и галактозы, содержащий 0,1—5 мг каждого моносахарида, смешивают с 20 мг целита и помещают в верхней части колонки. Сахара элюируют верхней фазой описанной выше смеси этилацетат — к-пропанол — вода, собирая фракции объемом 10 мл. Сахара вымываются в виде дискретных пиков в порядке, указанном выше. Для количественного определения части фракций упаривают досуха в вакууме при 40° и анализируют одним из методов, обычных в химии сахаров. [c.229]

Днкарбоновые кислоты, образующиеся путем окисления обоих концов углеродного скелета альдоз, называют альдаровыми. Их получают окислением альдоз азотной кислотой. Галактаровая (слизевая) кислота, которая является лезо-соединением, может быть легко выделена вследствие ее ограниченной растворимости в воде (0,3%) на этом основан гравиметрический метод определения галактозы. При окислении кетоз в тех же условиях происходит разрыв 1,2-связи. Так, из 1)-фруктозы образуется В-араба-паровая кислота, которая получается также из -арабинозы и 1)-ликсозы. При окислении б-дезоксигексоз разрывается 5,6-связь, так что б-дезокси- -галактоза ( -фукоза) превращается в О-ара-бинаровую кислоту. [c.150]

Методика опыта. В пробирки вносят по 3 мл антронового реактива, охлажденного во льду, и осторожно по стенке приливают 1 м/ водного раствора испытуемого сахара (глюкозу, галактозу и т. д.) Содержимое пробирок быстро перемешивают и помещают в водньи термостат. Для каждого сахара соблюдают определенную установленную температуру и продолжительность обработки глюкоза при 90° С — 16 мин манноза при 90° С — 15 мин галактоза при 90° С — 8 мин рамноза при 70° С — 13 мин фруктоза при 60° С — 10 мин. При на гревании следят, чтобы в пробирки не попала вода, которая мешае колориметрированию, создавая муть. По окончании нагревания пробирки быстро охлаждают во льду и содержимое колориметрируют сравнивая с контролем на бумагу. Колориметрирование проводя около 1 ч на фотоэлектроколориметре с красным светофильтром, толщи на кювет 0,5 см. Граница определения каждого сахара 10—100 мкг Количество сахара рассчитывают по определенной для него кривор рис. 37). Относительная погрешность этого метода составляет 5% Метод требует тщательного соблюдения разработанного режима. [c.160]

Получение -арабинозы и определение ее констант. Для препарирования L-арабинозы берут 100 г очищенного от загрязнений вишневого клея. Гидролиз ведут с 700 мл 4%-ного раствора H2SO4. Смесь нагревают при постоянном помешивании на сильно нагретой водяной бане до растворения клея, затем колбу соединяют с обратным холодильником н ведут гидролиз в кипящей водяной бане в течение 5—6 ч. Горячий гидролизат выливают в большую фарфоровую чашку, а избыток кислоты постепенно нейтрализуют 30—33 г чистого СаСОз. После нейтрализации массу фильтруют на воронке Бюхнера с отсасыванием. Осадок промывают теплой водой. Гидролизат, кроме L-арабинозы, содержит галактозу и глюкозу, от которых его очищают путем их сбраживания, для чего к фильтрату добавляют 5—10 г прессованных дрожжей. Колбу закрывают каучуковой пробкой с гидравлическим затвором и ставят в термостат при 30° С на 3—4 дня до окончания брожения. Затем жидкость отфильтровывают, а фильтрат упаривают до сиропа и охлаждают. При слабом подогревании к сиропу приливают небольшими порциями 96%-ный этиловый спирт, примерно в двухкратном количестве. Жидкости дают отстояться до полного осветления, а затем декантируют. Декантат сгущают в вакууме до сиропа, прибавляют снова спирт, декантируют, упаривают и так до полного прекращения выпадения осадка при прибавлении спирта к сиропу. Из очищенного сиропа после прибавления затравки (несколько кристалликов арабинозы) начинает выкристаллизовываться арабиноза. Кристаллы отсасывают на воронке Бюхнера, промывают спиртом и перекристал- [c.170]

Определение восстанавливающих сахаров [8—14]. 1. К 1 мл раствора, содержащего 0,2—3 мг восстанавливающего сахара, прибавляют 2 мл насыщенного водного раствора пикриновой кислоты, 1 мл 207о-ного раствора Na2 Os и нагревают 30 мин при 100°С. После охлаждения разбавляют водой дО объема 10 мл и оптическую плотность буро-красного раствора измеряют при 455 нм. Метод пригоден для определения арабинозы, галактозы, глюкозы, крахмала, ксилозы, лактозы, мальтозы, рамнозы, фруктозы. [c.233]

В аналитических исследованиях в связи с иммобилизованными ферментами необходимо упомянуть ферментные электроды [21], ферментные термисторы [40] и ферменты, ковалентно связанные с полистиролом или найлоном для целей автоматического анализа [24, 46]. Гильбо [22], например, использовал ферментные электроды для определения глюкозы, мочевины, L-аминокислот, галактозы, ацетилхолина и дегидрогеназ. Ферхмеиты, связанные с капиллярными реакторами, использованы в соединении с автоанализатором фирмы Te hni on для анализа различных субстратов, таких как глюкоза, мочевина и мочевая кислота [55]. Гудзон и др. [20] описали применение иммобилизованной холинэстеразы для контроля воздуха и воды, для обнаружения ингибиторов фермента, таких, как пестициды. Система характеризуется чрезвычайной чувствительностью. Например, органофосфат параоксон может быть обнаружен в количествах 1 10 в воздухе и воде. [c.442]

Предостережения. 1. В начале анализа, если быстро вставить холодный эбулиостат с меднощелочным раствором в сосуд 1 и сразу закрыть его пробкой, то в результате мгновенной конденсации пара давление понизится и раствор частично или полностью перельется по внутренней трубке эбулиостата в сосуд 1. Обнаружить это можно, наблюдая за цветом воды в сосуде 1. От капли меднощелочного раствора она мутнеет, а от большего количества станет грязно-синего цвета. Если будет обнаружен переброс меднощелочного раствора, то анализ испорчен. 2. Для получения хорошо воспроизводимых результатов анализа надо сахарный раствор в конце титрования прибавлять всегда с одинаковой скоростью, потому что реакция окисления идет не мгновенно [19]. 3. При определении количества смеси из нескольких сахаров в пересчете на глюкозу надо иметь в виду, что редуцирующая способность некоторых сахаров (галактозы, арабинозы) значительно отличается от редуцирующей способности глюкозы (см. с. 91) [18]. [c.39]

Искусствек(- ая смесь (ф) Монозы рамноза арабиноза фруктоза 1 ксилоза глюкоза галактоза манноза биозы сахароза 1 лактоза мальтоза триоза раффиноза. Разделение и определение 2) Вода 3) Акт. уголь 4) Вытеснитель—40/о-ный раствор фенола 5) Интерферометрический 172 [c.264]

Разделению сахаров на слоях целлюлозы посвящен ряд статей. Бергельсон и др. [35] использовали восходящее хроматографирование с тремя различными смесями бутанол—пиридин-вода (10 3 3), бутанол—25 %-ный гидроксид аммония— вода (16 1 2) и фенол—бутанол—уксусная кислота—вода (5 5 2 10). Длительность разделения при этом относительно велика от 7 до 18 ч. Для обнаружения эти авторы применяли анилинфталат, обеспечивающий чувствительность определения в 0,5—1,0 мкг. Швейгер [36] разделил на слоях целлюлозы семь сахаров. Галактозу, глюкозу, маннозу, ксилозу, рибозу и рамнозу разделяли на слоях порошка целлюлозы МЫ 300 (толщиной 0,25 мм), просушенного при 100°С, элюируя обеими [c.555]

Метод определения галактана по слизевой кислоте имеет ряд существенных недостатков (получение низких результатов пз-за неполного гидролиза галактана, зависимость выхода слизевой кислоты от количества окисляемой галактозы), в результате чего в случае малого содержания галактана метод становится особенно ненадежным. Кроме того, слизевая кислота частично растворима в воде и не полностью кристаллизуется. В количество определяемого галактана может входить и полигалактуроновая кислота, содержащаяся в пектиновых веществах. Из-за всех этих недостатков результаты анализа являются лишь приближенными, что иногда приводит к необходимости прибегать к биохимическим методам определения галактозы. В последнее время отдают предпочтение при определении галактозы методу хроматографии на бумаге. [c.122]

Обсуждение. Определение времени, необходимого для образования озазона, часто оказывает значительную помощь в том отношении, что позволяет отличить один вид сахара от другого. Малликен приводит следующие данные о времени, которое необходимо для выпадения озазона из горячего раствора озазон фруктозы — 2 мин. глюкозы — 4—5 мин. ксилозы — 1 мин. арабинозы—10 мин. галактозы—15—19 мин. рафинозы — 60 мин. маннозы — 0,5 мин. (гидразон) сахарозы — 30 мин., причем после гидролиза образуется глюкозазон. Озазоны лактозы и мальтозы растворимы в горячей воде. [c.122]

Колориметрический способ определения редуцирующих сахаров, широко используемый в биохимических и клинических лабораториях, нашел применение и при анализе пищевых продуктов, как об этом сообщается в работе [336], сравнивающей этот иетод с методом Менсона — Уокера. Метод окисления феррицИани-дом калия приспособлен для определения лактозы и сахарозы в молочных продуктах [356] однако в присутствии других редуцирующих сахаров он неприменим. Для анализа смеси глюкозы, галактозы, рамнозы, присутствующих в гидролизате глюкозидов флавона из гречихи, пригодно определение медного числа по Шор-лю [321 ] до и после сбраживания дрожжами, способными селективно сбраживать одну глюкозу или глюкозу и галактозу вместе. Для идентификации сахаров использована хроматография на бумаге [384]. Для смесей простых гексоз и пентоз процесс был весьма упрощен применением смешанных растворителей этилацетат-уксусная кислота-вода и этилацетат-пиридин-вода, в которых сахара имеют низкий коэффициент Rp [359]. [c.158]

Для характеристики чистых сахаров (не загрязненных даже следами других сахаров) имеет определенное значение время, необходимое для появления озазона после погружения пробирки в кипящую воду. Как правило, на образование фенилозазонов различных сахаров требуется различное время манноза 0,5—1 мин., фруктоза 1—2 мин., глюкоза 4—5 мин., ксилоза 6—8мин., рамноза 7—9 мин., арабиноза 9—Юмин., галактоза 14—16мин., гидролизат сахарозы 20—30 мин. фенилозазоны мальтозы и лактозы кристаллизуются при охлаждении. Следует отметить, что время в минутах, приведенное выше, является приблизительным и что срок появления озазонов зависит от количества сахара, воды и реагента, а также от pH раствора. [c.446]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология