Ткани растительные количественный анализ

При гидролизе растительной ткани концентрированной кислотой с последующим разбавлением водой и инверсией образовавшихся декстринов все полисахариды, без разделения на легко- и трудногидролизуемые, превращаются в моносахариды, смесь которых затем подвергается количественному анализу. Этим методом определяют в растительной ткани содержание маннана, ксилана, арабана и других углеводов, входящих в состав различных сложных полисахаридов гемицеллюлоз, строение которых было подробно рассмотрено выше. [c.300]

Биологи, пользуясь количественным анализом, устанавливают количественные отношения веществ, входящих в органы и ткани животных и растительных организмов, и выясняют обмен веществ в организмах животных в нормальном и патологическом состоянии. [c.8]

Первый метод особенно полезен для количественного анализа элементов первых двух групп периодической таблицы Менделеева, таких, как натрий, калий, кальций, барий и т. д. Этот метод представляет интерес для исследователей, работающих ц области медицины и ботаники [57—60]. Метод атомной абсорбционной спектрометрии особенно ценен для определения следов металлов в растворах. При использовании твердых образцов их сначала следует перевести в раствор, а затем уже подвергать анализу. Этим методом можно количественно проанализировать кровь, мочу, загрязненную воду, животные ткани, растительные материалы и т. п. [59—62]. Очевидно, что количественное применение атомной абсорбционной спектрометрии может быть затруднено тем, что атомы поглощающего вещества не только поглощают, но иногда одновременно и излучают при тех же частотах. Однако атомные абсорбционные спектрофотометры всегда снабжаются системой модуляции, позволяющей отделить испускаемый свет от проходящего. [c.530]

Новые проблемы перед количественным анализом ставит развивающееся народное хозяйство — промышленность и земледелие. Такими проблемами, например, являются разработка методов разделения и количественного определения редких или рассеянных элементов (урана, титана, циркония, ванадия, молибдена, вольфрама и других), имеющих важное значение для техники определение ничтожно малых количеств примесей некоторых элементов (мышьяка, фосфора и других) во многих металлах, от которых техника требует высокой чистоты. К этой проблеме примыкает и определение микроэлементов в биологическом материале, т. е. в почвах, растительных и животных тканях. [c.233]

Изготовление срезов при низких температурах является непростой процедурой, будучи даже более сложной для растительного материала, и рабочие параметры должны быть оптимизированы для каждого образца. Контраст изображения нефиксированного материала является слабым, и часто бывает трудно распознать знакомые клетки и ткани. Эти обескураживающие замечания не должны, однако, удерживать людей от попыток использования этого метода, потому что, несомненно, анализ срезов, и в частности толстых, замороженных в гидратированном состоянии срезов, дает количественно аналитические результаты, наиболее точно напоминающие условия, существующие в живой ткани. Важно распознавать артефакты, связанные с переходным таянием или полным оттаиванием, случайной регидратацией срезов, полученных лиофильной сушкой, перераспределением электролитов за счет мигрирующей рекристаллизации льда и загрязнением замороженных срезов. [c.313]

Количественный хроматографический анализ органических кислот в экстрактах из растительных тканей [1538]. [c.264]

Для анализа редких аминокислот из некоторых источников разработаны специальные условия элюирования. Системы, предназначенные для анализа аминокислот из животных тканей, приходится модифицировать при анализе аминокислот растительного происхождения, что связано с разным количественным и качественным составом экстрактов [44—46]. Разработаны также таблицы для идентификации компонентов, содержащихся в экстрактах из насекомых [47]. Для контрольных анализов изделий пищевой промышленности разработан специальный метод аминокислотного анализа гидролизатов пищевых продуктов и муки [48, 49], пива и солода [50]. Метод определения аминокислотного состава травы и силоса разработан с целью определения их кормовой ценности [51]. Для промышленных целей раз- [c.348]

Пробы биологических образцов растений или животных включают сбор биологических жидкостей (растительный сок, кровь, моча, лимфа, мокрота), выделений (каловые массы) или проб с поверхности объекта, а также внутренних органов (биопсии). С поверхностей микроорганизмы смывают или счищают стерильным буферным раствором или физраствором (0,85%-й раствор Na l в дистиллированной воде) с помощью стерильных ватных тампонов. В других случаях микроорганизмы сохраняют непосредственно в образцах тканей, что важно для наблюдения их топографического распределения в тканях или количественного учета. Иногда анализы образцов проводят непосредственно под микроскопом (сканирующая электронная микроскопия) для рассмотрения взаимодействия микробных сообществ или изучения ассоциаций между животными, растениями и микробиотой. [c.252]

Здесь необходимо также отметить широко применяемый при анализах растительных тканей метод определения содержания пентозанов по Толленсу, основанный на превращении остатков пентоз и уроновых кислот в фурфурол с последующим его количественным определением (см. стр. 58). Этот метод анализа необходимо рассматривать как приближенный, однако он дает представление о содержании в ткани фурфуролобразующих веществ, которые иногда называют фурфуроидами. [c.300]

Кетокислоты в растительных продуктах можно определить методом распределительной хроматографии на бумаге, разработанным И. А. Егоровым и М. Б. Борисовой для анализа кетокислот в вине. В основу этого метода положена реакция образования гидразонов кислот при взаимодействии их с фенилгидразином. Гидразоны разделяют с помощью бумажной двухмерной хроматографии. Количество гидразона каждой отдельно выделенной кетокислоты, в том числе и пировиноградной, определяется после элюирования пятен в фотоэлектроколориметре по цветной реакции гидразона с NaOH. Р. Я- Школьник (1954) разработал метод количественного разделения органических кислот с помощью распределительной хроматографии иа силикагеле. Этот метод применяют для разделения кислот, находящихся в растительных тканях. Разделение кислот ведут на хроматографической колонке. Элюируемые кислоты титруют 0,01 н. спиртовым раствором NaOH. [c.215]

Сумароков В. П. и Клинских Е. В. Определение этилового спирта в присутствии этилацетата и диэтилового эфира. Сб. тр. ЦНИЛХИ (Центр, и.-и. лесохим. ин-т), 1950, вып. 9, с. 176—187. Библ. 8 назв. 8190 Сумцов Б. М. Методика концентрирования и количественного определения связанной аскорбиновой кислоты в препаратах из растительных тканей. Биохимия, 1950, 15, вып. 2, с. 112—120. Библ. с. 120. 8191 Сутулов А. Н. Применение люминесцентного анализа для определения подмороженного картофеля. Пищ. пром-сть СССР, [c.309]

Успехи структурной биохимии с самого начала были неразрывно связаны с развитием органической химии. Толчком к развитию биохимии послужили работы великого шведского химика Карла Шееле (1742—1786), посвященные изучению химического состава растительных и животных тканей. Шееле выделил ряд природных соединений, в том числе винную, молочную, мочевую, щавелевую, лимонную и яблочную кислоты, глицерин, некоторые эфиры и казеин. В начале XIX в. в лабораториях Йёнса Берцелиуса и Юстуса Либиха были разработаны новые, усовершенствованные методы количественного элементарного анализа. С помощью этих методов было установлено, что вещества, выделенные Шеело, содержат углерод. Вслед затем начались попытки синтезировать углеродсодержащие, т. е. органические, соединения. Это направленгю было очень важным, более важным, чем может представиться на первый взгляд. Дело в том, что в то время был широко распространен витализм, т. е. убеждение, что органические соединения могут синтезироваться лишь с помощью особой жизненной силы , присутствующей, как полагали, только в живых тканях. Синтез мочевины, осуществленный Фридрихом Вёлером (1800—1882) в 1828 г., по существу показал несостоятельность витализма (хотя лишь немногие исследователи в то время поняли это). Успешный синтез мочевины был неожиданным результатом попыток приготовить цианат аммония при помощи реакции между цианатами металлов и солями аммония. Несколько позднее, в 1844 г., Адольф Кольбе синтезировал уксусную кислоту, а в 1850-х годах Марселену Бертло удалось уже осуществить синтез целого ряда органических соедине- [c.9]

Sapetti, 1958) даны инфракрасные спектры восьми соединений, в том числе альдрина, дильдрина, эндрина. Последние авторы исследовали возможности метода инфракрасной спектроскопии для анализа следов пестицидов в растительных тканях с точки зрения идентификации и количественного определения. [c.11]

Принципиально близким к указанным методам является подробно описанный метод Хиза и др. (Heath et al., 1956 см. ниже, стр. 57—59), разработанный для анализа 50-граммовых образцов растительной ткани. Различия заключаются в том, что концентрированный хлороформный экстракт подвергают микродистилляции при пониженном давлении. При этом октаметил количественно перегоняется, что обеспечивает лучшую, чем в предыдуш их методах, очистку. Окисление осуш ествляют смесью серной кислоты ш персульфата аммония. Метод может быть применен к определению некоторых других сравнительно летучих фосфорорганических пестицидов. [c.31]

Иониты используются для избирательного поглощения ионов, содержащихся в растворе в настолько низко11 концентрации, что обычные методы анализа не дают достаточно точного количественного определения. Методы совместного осаждения и выпаривания больших объемов не во всех случаях дают удов.летворптель-ные результаты и имеют лишь ограниченное применение. Адсорбция ионов, присутствующих в микроколичествах, на катионите или апиопите и последующее получение более концентрировап-ных растворов путем вымывания дают хорошие резу.льтаты при определении следов меди в молоке [120] и микроэлементов в растительных тканях [444, 445]. Лурье и Филиппова предложили даже использовать ионный обмен в качестве общего метода для этой цели [323, 324]. В табл. 11 и 12 приведены данные, характеризующие точность, достигаемую при этом методе. Преимущества ионного обмена для концентрирования следующие 1) простота, 2) скорость, 3) отсутствие загрязнений. При работе необходимо предварительно удалять из ионита все ионизированные примеси. Предложено [120] перед применением тщательно обрабатывать катионит соляной кислотой, а анионит—щелочью. [c.121]

Развитие аналитических методов обнаружения и количественного определения имело решающее значение для выявления витамина С в природе й изучения его стабильности. Применявшиеся первоначально биологические методы постепенно были вытеснены химическими вследствие простоты, большей чувствительности, селективности и воспроизводимости последних. Многие успешно используемые сегодня методы анализа основаны на применении высокоэффективной жидкостной хроматографии. Однако возможности этих методов применения ограничены относительно низкой чувствительность обнаружения дегидроаскорбиновой кислоты в присутствии г сюкорбиновой кислоты, что значительно затрудняет количественное определение дегидроаскорбиновой кислоты в животных и растительных тканях. Ситуация аналогична и в случае продуктов дальнейшего окисления. Поэтому существует настоятельная необходимость в совершенствовании методов обнаружения этих соединений, что позволило бы изучать механизм и кинетику окисления ь-аскорбиновой кислоты в овощах и фруктах, определяя количество всех продуктов окисления. [c.10]