Инокуляция бактериями

Исследования в этой области проводятся главным образом на бактериях, а не на грибах. Отчасти это обусловлено тем, что полезные грибы не удается вырастить в культуре, поэтому с ними трудно работать в лабораторных условиях, а кроме того, невозможно получить эти организмы в количестве, достаточном для инокуляции. [c.306]

Ценность бобовых культур определяется прежде всего тем, что клубеньковые бактерии, развивающиеся на их корнях, способны фиксировать атмосферный азот, который используется растением, благодаря чему бобовые культуры содержат больше азота, чем другие культурные растения. Поэтому при изучении изменчивости химического состава бобовых основное внимание обычно уделялось колебанию содержания азотистых веществ в растениях и изучению условий, способствующих большему накоплению азота. Важнейшую роль в накоплении азота играет инокуляция бобовых растений соответствующими расами клубеньковых бактерий. При изучении динамики изменения количества азота в вегетативных органах растений было показано, что в самый первый период роста и развития в бобовых растениях сравнительно мало азота, а затем, при усилении интенсивности фиксации N2 бактериями, содержание азота в растениях значительно повышается и достигает максимума в период бутонизации и цветения. На этих фазах развития растений клубеньковые бактерии обычно наиболее интенсивно фиксируют атмосферный азот. После цветения количество азота в вегетативных органах несколько уменьшается. [c.393]

Гораздо меньше почвы необходимо вносить при помощи сеялок, когда бактерии попадают прямо к семенам, где они нужнее вс го. На основе этого простого способа был разработан метод прямой инокуляции семян. Сначала применяли измельченную почву (всего около 0,5 кг почвы на 1 кг семян), а затем стали использовать методы, основанные на введении чистых культур бактерий. [c.358]

Длительность лаг-фазы (Т]). Это параметр, очень важный для суждения о свойствах бактерий или о пригодности среды. Его определяют как промежуток времени между моментом г, в который культура достигла определенной плотности Хг, и моментом в который она могла бы достичь такой же плотности, если бы сразу же после инокуляции начинался экспоненциальный рост (индекс 1 означает лаг-фазу, индекс г-реальный рост, а индекс идеальный рост) [c.199]

Укажем также, что при использовании аминокислоты, содержащей серу — метионина, констатирована возможность проникания ее в проростки гречихи, кукурузы и гороха в стерильных условиях правда, этого вещества больше накапливалось в корнях, а не в надземных органах. Пометив одну из разновидностей ризосферных бактерий радиоактивной серой, затем использовали продукты ее распада (автолиза), среди которых был и метионин, для питания проростков гречихи в стерильных условиях. В этих опытах радиоактивная сера была обнаружена в корнях и частично в надземной части. Аналогичные результаты получены и при инокуляции семян гречихи той же бактерией, помеченной радиоактивной серой (8 ). [c.89]

Так, при инокуляции бобовых растений соответствующими расами клубеньковых бактерий наряду с улучшением роста растений наблюдается повышение содержания белков в вегетативных органах и семенах. Например, в опытах с соей, проведенных на предкавказском черноземе, содержание белка в семенах без инокуляции было 41,5%, а при заражении клубеньковыми бактериями содержание белка повысилось до 47,9%. Таким образом, даже на черноземных почвах с высоким содержанием азота инокуляция способствует значительному увеличению содержания белков. При посеве бобовых культур на подзолистых почвах с низким содержанием азота действие инокуляции еще более значительное. [c.421]

ИНОКУЛЯЦИЯ. Прививка клубеньковых бактерий бобовым культурам. Производится путем обработки семян нитрагином или растертыми в воде клубеньками данной культуры, а также рассевом [c.113]

Инокуляция почвы. Исходя из того что некоторые бактерии фиксируют азот воздуха, возникла мысль об инокуляции почвы чистыми культурами этих бактерий для увеличения количества фиксируемого азота воздуха. [c.79]

Первый стенд был установлен у острова Наос, т.е. в том же месте, где проводились долговременные коррозионные испытания. Вторая партия образцов испытывалась на Карибском побережье Панамского перешейка на базе ВМС США Коко-Соло в заливе Манцанилло. Другие стенды были установлены на базе морской авиации ВМС США Патук-сент-Ривер (залив Чисапик), в Морской коррозионной лаборатории ВМС США в Флеминг-Ки (Ки-Уэст, Флорида) и в Лаборатории береговых систем ВМС США в Панама-Сити (Флорида). Через различные промежутки времени с каждого стенда снимали для исследования по два образца. Первые образцы были взяты менее чем через месяц после начала испытаний. Для каждой нары образцов определялась средняя глубина коррозии (по потерям массы), а также масса и тип положений, образующихся при обрастании морскими организмами. Для определения начала и степени развития сульфатвосстанавливающих бактерий производилась инокуляция бульона Sulfate APT (специально предназначенного для подобных бактерий) веществом из мягкого черного коррозионного слоя, образующегося на металле. Наличие сульфида в этом [c.446]

Нитрагин-препарат высокоактивных культур клубеньковых бактерий Rhizobium, довольно широко применяемый для инокуляции (введение микроорганизмов в ткани растений) семян бобовых-гороха, люпина, сои, люцерны, клевера и др. при их посеве. При прорастании семян бактерии проникают в корни растений, образуя на них клубеньки, где размножаются в больших кол-вах. Активные штаммы этих бактерий обладают способностью усваивать азот атмосферы и переводить его в связанную форму, доступную для питания растений. В свою очередь растения снабжают бактерии энергией, необходимой для осуществления данного процесса. Т. обр., в результате симбиоза бактерий и бобовых культур для последних создаются благоприятные условия азотного питания, что способствует повышению их урожая. [c.238]

При использовании метода Вильсона (так же как и метода Красильникова и Кореняко) на стерильном субстрате выращивают стерильные семена бобовых растений, бактеризованные водными разведениями анализируемой почвы. По существу, здесь используется метод определения клеток бактерий с помощью титра. Наблюдая за образованием клубеньков при инокуляции растений почвой в разных разведениях, устанавливают численность клубеньковых бактерий в почве и их видовую принадлежность. Пересчет клубеньковых бактерий на 1 г почвы проводят по таблицам Мак-Креди. [c.183]

Методику анализа, схематически показанную на рис. 3.7, нельзя использовать для непосредственной изоляции колиформ из воды, но ее применяют как подтверждающую после предположительного анализа. Сначала лроязводят посев замеренного объема пробы в бродильные трубки, содержащие лактозу или лауриново-триптозный бульон. Трубки, в которых наблюдается рост бактерий с выделением газа спустя 24 или 48 ч, используют для инокуляции культуры в среду, содержащую бульон ЕС. В этой среде пробу подвергают инкубации в водяной ванне при температуре 44,5 0,2°С, погружая трубку до верхнего уровня среды. Из-за жестких требований к температурному режиму, необходимому для проведения анализа на фекальные колиформы, стандартные термостаты, обычно используемые в бактериологических анализах, неприемлемы. Рост с выделением газа говорит о присутствии фекальной колиформной группы если же газ не выделяется, то это свидетельствует об отсутствии последней. [c.69]

В этих опытах синий. Т1юпин выращивался без инокуляции или с инокуляцией клубеньковыми бактериями и в различные фазы развития растений в листьях, стеблях и корнях определялось общее содержание азота. У 14—21-дневных растений содержание азота в надземных органах инокулированных и не-инокулированных растений было примерно одинаковым и только в корнях инокулированных растений было в 2 раза больше азота, чем у растений без инокуляции. В период бутонизации и цветения (в возрасте 42 и 63 дней) наряду с более интенсивным ростом инокулированные растения в надземных органах содер- [c.393]

Известно, что клубеньковые бактерии наиболее интенсивно развиваются при реакции почвы, близкой к нейтральной. Поэтому при посевах бобовых на кислых почвах наряду с инокуляцией семян соответствующими расами клубеньковых бактерий необходимо известкование почвы. Без известкования на кислых почвах инокуляция почти не оказывает влияния на урожай и количество белка в бобовых культурах. По данным К. Фил лерса, при посеве сои на кислой почве без инокуляции и без внесения извести был получен урожай с содержанием в семенах 32,8% белка при инокуляции количество белка в семенах повысилось всего лишь на 1,2%, а при полной нейтрализации [c.399]

Как только стала ясна роль симбиоза бактерий рода Rhizobium и бобовых, были разработаны способы внесения этих бактерий в почву для улучшения условий культивирования. Их ста ли добавлять также и к семенам. Затраты на внедрение этого способа инокуляции невелики, транспортные расходы незначительны, а сами методы достаточно несложны, чтобы их можно было внедрить в сельское хозяйство развивающихся стран, где высокая стоимость удобрений ложится тяжелым грузом на плечи фермеров. Выращивание бобовых с применением метода инокуляции семян нередко благоприятно сказывается на состоянии окружающей среды оно помогает бороться с наступающей пустыней, облегчает борьбу с эрозией почв, уменьшает перенос почвы ветрами и позволяет с большим успехом восстанавливать истощенные земли. Большинство образующих клубеньки бобовых способны полностью удовлетворить свои потребности в азоте. Это, конечно, бывает только тогда, когда и прочие условия благоприятствуют росту растений, т. е, растения получают достаточно воды и других питательных веществ. [c.357]

Первая разновидность коммерческой культуры для инокуляции была запатентована Ноббе и Хилтнером в 1896 г. Она поступала на рынок под названием Nitragin . Для разных бобовых выпускалось 17 ее вариантов. Уже в 20-х гг. на рынок поступало много других разновидностей инокулятов. Некоторые из них представляли собой чистые культуры бактерий, смешанные с почвой, песком, торфом, навозом или измельченной породой, другие — культуры, выращенные на агаре или в жидкой среде. Далеко не в каждом случае качество таких инокулятов было высоким, не каждый раз их правильно применяли, так что и высокие урожаи получали не всегда. [c.358]

Для прямой инокуляции семян пригодны культуры Rhizobium, выращенные в пробирках или колбах на среде с агаром. Обычно для наращивания бактерий применяют агаровую среду с ман- [c.358]

Твердый инокулят состоит из бактерий и носителя, роль которого заключается в поддержании жизнеспособности клеток, поскольку он частично защищает их от пересыхания. Кроме того, носитель способствует более равномерному распределению бактерий в массе семян и помогает им прикрепиться к их поверхности. Хотя Б случае бактериальных суспензий нередко получались хорошие результаты, считается, что применение торфа как носителя более эффективно при использовании жидких культур или же суспензий клетки Rhizobium после инокуляции и прикреплении их к поверхности семян Оказываются практически беззащитными. Поэтому при производстве коммерческих инокулятов вначале чаще всего использовали именно торф. Однако торф есть далеко не везде, а если он и имеется, то сказать заранее, пригоден ли он как носитель, невозможно. В связи с этим были предприняты поиски альтернативных носителей с такими же защитными свойствами, как у торфа. [c.361]

Самый простой, но, наверное, наименее эффективный метод инокуляции— смешивание сухого инокулята и семян перед посевом. При этом к семенам прикрепляется мало бактериальных клеток, большая их часть теряется, й необходимое условие нанесения достаточного числа клеток Rhizobium на семена не выполняется. Поэтому лучше вносить инокулят в виде водной кашицы. Хорошо прилипает к семенам инокулят на торфе, особенно если добавить к нему водорастворимый клей (карбокси-метилцеллюлозу или гуммиарабик). К тому же при этом повышается выживаемость бактерий после высушивания семян. [c.362]

Для получения накопительных культур видов lostridium можно воспользоваться некоторыми их особенностями. Поскольку их споры терморезистентны, инокулят предварительно пастеризуют. Создавая строго анаэробные условия, заранее исключают рост всех аэробных бактерий. Так как некоторые бактерии, расщепляющие полисахариды, прикреплены к поверхности частиц, например к крахмальным зернам или к частицам целлюлозы в рубце жвачных или каких-то осадках, эти частицы можно сначала промыть, чтобы освободить их от других бактерий, а затем использовать как материал для инокуляции. Для поддержания способности к интенсивному брожению нужно и в последующей работе с выделенными штаммами всегда пользоваться пастеризованными инокулятами. [c.292]

Рис. 9.4. Накопительные культуры сульфатредуцирующих бактерий. Рост после инокуляций среды сероводородным илом. А. Среда содержит лактат и сульфат железный гвоздь обеспечивает достаточно низкий окислительно-восстановительный потенциал (в результате катодной поляризации). Б. Доказательство использования молекулярного водорода сульфатредуцирующими бактериями пробирка Дёрхема, заполненная Н2, перед инкубацией плавает, а после инкубации засеянной среды оказывается на дне. В. Рост бактерий в закупоренной бутыли в присутствии малых количеств органического вещества за счет восстановления сульфата и анаэробной коррозии железа. Г. Накопление сульфатредуцирующих бактерий в двойном сосуде Зёнгена, Сосуд II заполняют средой, содержащей лактат и сульфат затем впускают в него Н2, и часть жидкости переходит в сосуд I (новые уровни показаны пунктирными линиями) в течение двухдневной инкубации при 30°С значительная часть Н2 потребляется.

Клубеньковые бактерии наиболее интенсивно развиваются при реакции почвы, близкой к нейтральной. Поэтому при посевах бобовых на кислых почвах наряду с инокуляцией семян необходимо известкование почвы. Инокуляция без известкования оказывает очень слабое влияние на урожай и содержание белка. По данным К. Филлерса, при выращивании сои на кислой почве без инокуляции и без внесения извести содержание белка в семенах составляло 32,8%, при инокуляции содержание белка увеличилось на 1,2%, а при нейтрализации кислотности почвы и инокуляции содержание белка в семенах возросло на 11,2%. [c.421]

Перед посевом семена обязательно обрабатывают нитрагином соответствующего рода клубеньковых бактерий или растертыми в мучнистый порошок сухими клубеньками того же вида растения (заготовляются предшествующим летом). За 3 дня до инокуляции хорошо обработать семена гранозаном (2 кг на 1 т семян). При большом количестве трудновсхожих (каменных) семян у донника, многолетнего люпина проводят скарификацию (при подзимнем посеве скарификация не обязательна). [c.185]

Дополнительная инокуляция имеет значение для процесса образования компоста, когда данная популяция бактерий не может достаточно быстро развиваться в существующих условиях окружающей среды. Процесс образования компоста является динамичным и представляет собой сочетание деятельности двух популяций — бактерий и грибков при определенном влиянии окружающей среды. Изменения субстрата являются результатом прогрессирующего разложения бактериями сложных пищевых отходов простые соединения. Пропорционально биологической активности температура субстрата возрастает, что приводит к смене исходной мезофильной популяции микробов. Так как процесс является динамичным и любая отдельная группа организмов может выжить в достаточно широких пределах условий окружающей среды, одна популяция начинает появляться в то время, когда расцветает другая, а третья исчезает. И если какая-либо группа бактерий способна размножаться со скоростью, равной скорости изменения условий окружающей среды, то введение подобных организмов в качестве ино-кулята излишне. [c.263]

Особые случаи. Когда анализируется вода, прошедшая полную очистку с интенсивным процессом нитрификации, нитрифицирующие бактерии продолжают метаболизировать во время инкубации пробы. При этом потребляется дополнительное количество кислорода и значение БПК очищенной воды получается завышенным. В этом случае ход определения следует модифицировать следующим образом пробу подкисляют до получения рн от 2 до 3 и выдерживают ее в течение 15 мин. Затем нейтрализуют до установления pH от 7 до 7,4. Для заражения разбавляющей воды в нее добавляют 5 мл/л свежеотстоенной очищенной воды. Полученное таким образом значение БПКб должно быть откорректировано с учетом небольшого количества органических веществ, внесенных при инокуляции. [c.347]

Для выяснения значения выделенных нами штаммов в формировании хлопка активного ила был поставлен ряд опытов. Схема опытов была следующей. Микроаэратор емкостью 0,5 л заполняли стерильной сточной жидкостью, предварительно профильтрованной и разбавленной водопроводной водой до БПК= 250-г - 400 мг л. Среда имела рН=7,5 г8,2. Инокуляция производилась 1 мл бактериальной суспензии, образованной отдельными культурами бактерий или смесью их. Количество микробов в 1 мл взвеси колебалось от 136 10 до 228 10 . Жидкость в микроаэраторах подвергали непрерывной аэрации стерильным воздухом. Среду обновляли через 1—2 суток. [c.52]

Для выяснения значения отдельных адаптированных штаммов бактерий в формировании активного ила был поставлен ряд опытов [18, 19]. Схема их была следующей микроаэратор заполняли стерильной сточной водой определенного состава. Инокуляция производилась бактериальной взвесью, образованной отдельными культурами бактерий или вх смесью. Количество микробов в 1 мл взвеси колебалось от 1,36-10 до 3 10 . Жидкость в микроаэраторах подвергали непрерывной аэрации стерильным воздухом среду обновляли через 1—2 суток. После нескольких часов аэрации среда стала мутной при оценке под микроскопом в поле зрения находилось [c.62]

Мак Кинней и Вейхлейн (1953 г.) выделили уже 42 штамма бактерий из четырех активных илов два ила были получены со станций, очищающих бытовые сточные воды (одна из станций работала при высоких нагрузках) один ил был взят со станции, очищающей производственные сточные воды (вид производства не указан) один ил был получен в лабораторных условиях на синтетической среде, содержащей 230 жг/л декстрозы и 20 мгрг одноосновного фосфорнокислого калия для инокуляции была использована бытовая сточная жидкость. Из выделенных культур 17 видов были способны образовывать хлопок активного ила через 48 ч при аэрации в стерильной сточной воде и синтетическом растворе. Все культуры образовывали хлопок активного ила при инкубации в течение 17 суток. Авторы пришли к выводу, что образование хлопка вызывается не специальными зооглееобразующими бактериями, а полным метаболизмом органических веществ. Все бактерии при определенных условиях среды обладают способностью образовывать хлопок активного ила благодаря соединению капсул различных бактерий. [c.67]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология