Фруктоза, определение воды

Ход работы. 1 мл исследуемого раствора (менее 1% фруктозы) смешать с 5 мл ванилинового реагента и нагреть две минуты на водяной бане, после чего быстро охладить в ледяной воде. Окраска затем устойчива и пригодна для количественных колориметрических определений. [c.88]

Метрологическая характеристика метода. Диапазон определяемых концентраций 0,2—5 мкг. Нижний предел обнаружения 0,2 мкг. Пределы определения для анализа воды 0,005 мг/л, для овощей и фруктоз 0,1 мг/кг. [c.146]

Декстрин растворяют в мерной колбе емкостью 100 мл в 75 мл 1,0 и. раствора соляной кислоты и нагревают в течение 1 часа на кипящей водяной бане. По охлаждении почти нацело нейтрализуют концентрированным раствором едкого натра в присутствии метилового оранжевого и доливают водой до метки. Образовавшуюся глюкозу определяют обычным иодометрическим методом, так как такому определению присутствие фруктозы (образующейся из инулина) не мещает. Найденное содержание глюкозы умножают на 0,9. [c.336]

Среди растворимых в воде сахаров различают две группы простые и сложные. К простым относят глюкозу и фруктозу. Наиболее распространенным из сложных сахаров является сахароза, которую обычно называют сахаром. Иногда ограничиваются суммарным определением сахаров, но более правильно анализировать две указанные группы отдельно. [c.295]

Инулин — полисахарид, содержащийся в клубнях и корнях георгинов, артишоков и одуванчиков. При его гидролизе образуется фруктоза, следовательно он представляет собой фруктозан. Этот полисахарид в отличие от картофельного крахмала легко растворяется в теплой воде его используют в физиологических исследованиях для определения скорости клубочковой фильтрации в почках. [c.149]

Лиазы являются катализаторами отщепления от субстратов негидролитическим путем определенных групп с образованием двойной связи или с присоединением группы к двойной связи. Одни из них катализируют отщепление воды, другие — углекислоты или аммиака. Фермент альдолаза катализирует расщепление фруктозо-дифосфата на две молекулы фосфотриоз. Многие из них принимают участие в реакциях цикла Кребса. [c.120]

Осваивая методы определения фруктозо-1,6-дифосфата, полезно определить чистоту препарата его бариевой соли. Навеску, соответствующую 30 мкмоль, растворяют в 5 мл 0,1 н. раствора НС1. 1 мл раствора отбирают для определения фруктозо-1,6-дифосфата по фруктозе. Оставшиеся 4 мл солянокислого раствора бариевой соли фруктозодифосфата используют для получения натриевой соли, хорошо растворимой в воде (см. ниже). Раствор натриевой соли фруктозо-1,6-дифосфата нейтрализуют, доводят водой до 15 мл. В полученном растворе определяют содержание фруктозо-1,6-дифосфата по фруктозе и по фосфату в микромолях, рассчитывают чистоту препарата по фруктозе и по фосфату, сопоставляют данные. Определяют процент потери фрук-тозо-1,6-дифосфата при переводе бариевой соли в натриевую. [c.43]

Днкарбоновые кислоты, образующиеся путем окисления обоих концов углеродного скелета альдоз, называют альдаровыми. Их получают окислением альдоз азотной кислотой. Галактаровая (слизевая) кислота, которая является лезо-соединением, может быть легко выделена вследствие ее ограниченной растворимости в воде (0,3%) на этом основан гравиметрический метод определения галактозы. При окислении кетоз в тех же условиях происходит разрыв 1,2-связи. Так, из 1)-фруктозы образуется В-араба-паровая кислота, которая получается также из -арабинозы и 1)-ликсозы. При окислении б-дезоксигексоз разрывается 5,6-связь, так что б-дезокси- -галактоза ( -фукоза) превращается в О-ара-бинаровую кислоту. [c.150]

Методика опыта. В пробирки вносят по 3 мл антронового реактива, охлажденного во льду, и осторожно по стенке приливают 1 м/ водного раствора испытуемого сахара (глюкозу, галактозу и т. д.) Содержимое пробирок быстро перемешивают и помещают в водньи термостат. Для каждого сахара соблюдают определенную установленную температуру и продолжительность обработки глюкоза при 90° С — 16 мин манноза при 90° С — 15 мин галактоза при 90° С — 8 мин рамноза при 70° С — 13 мин фруктоза при 60° С — 10 мин. При на гревании следят, чтобы в пробирки не попала вода, которая мешае колориметрированию, создавая муть. По окончании нагревания пробирки быстро охлаждают во льду и содержимое колориметрируют сравнивая с контролем на бумагу. Колориметрирование проводя около 1 ч на фотоэлектроколориметре с красным светофильтром, толщи на кювет 0,5 см. Граница определения каждого сахара 10—100 мкг Количество сахара рассчитывают по определенной для него кривор рис. 37). Относительная погрешность этого метода составляет 5% Метод требует тщательного соблюдения разработанного режима. [c.160]

В индивид альном виде первые моносахариды — глюкоза и фруктоза—были выделены в конце XVIII — начале XIX века, однако установление их структуры стало возможным лишь с развитием учения о строении органических соединений. Определение элементного состава глюкозы, фруктозы, маниозы и других углеводов показало, что они имеют общую формулу С (Н20). т. е. как бы состоят из углерода и воды отсюда углеводы и получили свое название. [c.444]

Удельное вращение плоскости поляризации света [а] выражается в угловых градусах. Приводится для )-линии натрия при температуре (в °С), указанной верхним индексом при численном значении угла вращения. Знаки + и — перед этим значением обозначают соответственно правое (т. е. по часовой стрелке) или левое (против часовой стрелки) вращение затем в скобках обычно указаны концентрация оптически активного вещества (в г на 100 мл растворителя или в %) и растворитель, в котором проводилось определение (если растворитель не обозначен — определение проводилось в воде). Правовращающие и левовращающие оптические изомеры обозначают соответственно буквами d а I перед названием соединения, например -Лимонен /-Лимонен. Перед названием вещества, представляющего собой оптически неактивный рацемат, ставится обозначение dl , например, /-Лимонеи. Символами о и I- перед названием соединения обозначают не направление вращения плоскости поляризации, а пространственную конфигурацию асимметрических молекул этого соединения и соответственно его принадлежность к стерическим рядам о-глицеринового альдегида и ь-глицерииового альдегида. В этом случае правое или левое вращение плоскости поляризации, присущее соединению с о- или ь-конфигурацией, обозначается соответственно знаками (-Ь) или (—) в скобках например и(—)-Фруктоза ь(+)-Аланин. Рацематы зеркальных изомеров с-ряда и ь-ряда могут быть обозначены символом оь напрнмер ОЬ-Молочная к-та. [c.120]

Определение глюкозы и фруктозы [357, 364, 376]. Смешивают 10 мл исследуемого раствора, содержащего 0,1—0,5 мг углевода, с 3 мл 0,01 М раствора КЮ4 в 0,3 н. Н2504, добавляют 0,5 мл концентрированной Н2504 и разбавляют водой до объема 15 мл. [c.210]

Определение восстанавливающих сахаров [8—14]. 1. К 1 мл раствора, содержащего 0,2—3 мг восстанавливающего сахара, прибавляют 2 мл насыщенного водного раствора пикриновой кислоты, 1 мл 207о-ного раствора Na2 Os и нагревают 30 мин при 100°С. После охлаждения разбавляют водой дО объема 10 мл и оптическую плотность буро-красного раствора измеряют при 455 нм. Метод пригоден для определения арабинозы, галактозы, глюкозы, крахмала, ксилозы, лактозы, мальтозы, рамнозы, фруктозы. [c.233]

Искусствек(- ая смесь (ф) Монозы рамноза арабиноза фруктоза 1 ксилоза глюкоза галактоза манноза биозы сахароза 1 лактоза мальтоза триоза раффиноза. Разделение и определение 2) Вода 3) Акт. уголь 4) Вытеснитель—40/о-ный раствор фенола 5) Интерферометрический 172 [c.264]

Обсуждение. Определение времени, необходимого для образования озазона, часто оказывает значительную помощь в том отношении, что позволяет отличить один вид сахара от другого. Малликен приводит следующие данные о времени, которое необходимо для выпадения озазона из горячего раствора озазон фруктозы — 2 мин. глюкозы — 4—5 мин. ксилозы — 1 мин. арабинозы—10 мин. галактозы—15—19 мин. рафинозы — 60 мин. маннозы — 0,5 мин. (гидразон) сахарозы — 30 мин., причем после гидролиза образуется глюкозазон. Озазоны лактозы и мальтозы растворимы в горячей воде. [c.122]

Образование осадка заканчивается через 24 часа. Осадок собирают на стеклянном фильтре, промывают 40 мл воды, высушивают в течение 3 час. при 100°, оставляют на открытом воздухе на 3 часа и затем взвешивают. Установлено, что в условиях определения 1. мг флороглюцида соответствует 2,135 мг фруктозы или 4,045 мг сахарозы. [c.333]

По мнению Вемера [49], сок белой березы (Betula alba L.) содержит глюкозу и фруктозу, но не содержит сахарозы (по общему признанию природа этих компонентов еще точно не установлена). С введением простых хроматографических методов возможно быстрое исследование извлекаемых холодной водой экстрактивных веществ древесины и точное определение присутствия или отсутствия более простых сахаров. [c.542]

С целью разработки быстрого метода разделения о-фруктозы, сахарозы, лактозы и сорбита, который мог бы найти применение в анализе пищевых продуктов, было изучено поведение при хроматографии на тонкоизмельченном силикагеле (размер частиц 5 мкм) обычно встречающихся сахаров и полиолов в водных системах, содержащих различные количества этилфор-миата и метанола [11]. Определенный успех в данном направлении был достигнут. Оказалось, что разделение такой смеси можно провести менее чем за 20 мин на стальной колонке (150Х Х4,6 мм), заполненной силикагелем (размер частиц 5 мкм), при элюировании смесью этилформиат — метанол — вода (6 2 1) со скоростью 0,9 мл/мин. Однако двумя группами исследователей было установлено [И, 12], что в случае близких по строению сахаров данный метод анализа неприемлем. [c.8]

Для характеристики чистых сахаров (не загрязненных даже следами других сахаров) имеет определенное значение время, необходимое для появления озазона после погружения пробирки в кипящую воду. Как правило, на образование фенилозазонов различных сахаров требуется различное время манноза 0,5—1 мин., фруктоза 1—2 мин., глюкоза 4—5 мин., ксилоза 6—8мин., рамноза 7—9 мин., арабиноза 9—Юмин., галактоза 14—16мин., гидролизат сахарозы 20—30 мин. фенилозазоны мальтозы и лактозы кристаллизуются при охлаждении. Следует отметить, что время в минутах, приведенное выше, является приблизительным и что срок появления озазонов зависит от количества сахара, воды и реагента, а также от pH раствора. [c.446]

В качестве маркеров для определения 14, предлагались различные соединения первый выходящий из хроматографической колонки компонент (первый пик на хроматограмме) растворы неорганических солей (в режиме обращенно-фазной хроматографии) — ионные образцы (нитрат или нитрит натрия, хлорид или йодид калия, бихромат калия) фруктоза, бензойная кислота, бензоат натрия, ацетон, N,N-димeтилфopмaмид и др. При этом рекомендовано выбирать маркеры таким образом, чтобы вещества позволяли проводить хроматографический анализ с использованием наиболее распространенного ультрафиолетового детектирования. Наряду с неорганическими солями в режиме обращенно-фазной хроматографии (отметим, что большинство анализов в ВЭЖХ, около 80%, выполняется именно в обращенно-фазном режиме) в качестве соединений-маркеров могут быть рекомендованы тяжелая вода, а также дейтерирован-ные компоненты подвижной фазы метанол, ацетонитрил, тетрагидрофуран. При работе с рефрактометрическим детектором предпочтение отдается тяжелой воде ВгО. [c.238]

Создана опытная установка для непрерывного ферментативного получения глюкозы из целлюлозосодержащих отходов промышленности и сельского хозяйства (М. Л. Рабинович А. А. Клёсов, 1986). В колонну, содержащую целлюлозу, вводится раствор ферментов целлюлаз, способных гидролизовать целлюлозу вплоть до глюкозы. Ферменты при определенных условиях настолько прочно адсорбируются на целлюлозе, что их можно рассматривать как иммобилизованные. Вместе с тем они осуществляют эффективный гидролиз своего носителя и образующийся глюкозный сироп выносится потоком воды из колонны, в колонну непрерывно подаются новые порции целлюлозы, которые также подвергаются гидролизу, и т. д. В итоге однократно введенный в колонну фермент может несколько месяцев непрерывно гидролизовать целлюлозу при многократной загрузке ее в реактор. Этим открываются возможности экономически эффективного использования возобновляемого растительного сырья для получения глюкозы, которая затем может быть превращена в этанол, фруктозу, кормовой белок и другие продукты микробиологического синтеза. Приведенные примеры показывают, что применение иммобилизованных ферментов в промышленности превращается в достаточно мощную отрасль, которая уже сейчас достигла уровня ежегодного мирового производства продукции в сотни тысяч и миллионы тонн [c.31]

Определение доброкачественности сока. Ко времени уборки сахарная свекла содержит в среднем 75 % воды и 25 % сухих веществ, из которых 17,5 % приходится иа долю сахарозы, а 7,5 % составляют нерастворимые и растворимые несахара. Нерастворимые сахара (около 5 % общего количества несахаров) состоят из клетчатки (2,5 %), п еЕг1 иновых веществ. (2,4 %), белков и золы (около 0,1 %) К растворимым несаха рам (2,5 %) относятся фруктоза, глюкоза и другие [c.147]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология