Индикаторы для бумажной хроматографии

Наиболее распространенным и простым методом оценки диспергирующих свойств масел является метод бумажной хроматографии. Сущность метода заключается в нанесении капли работавшего масла на фильтровальную бумагу и определении величины и характера пятна, получаемого после впитывания масла. Изменение характера пятна служит также индикатором наличия в масле охлаждающей жидкости, а также разжижения масла топливом. [c.220]

Теории и практике люминесцентного анализа различных объектов посвящены руководства [27, 36] и многочисленные работы М. А. Константиновой-Шлезингер [25, 26, 28] и других авторов [7, 12, 15, 20, 33, 35, 40, 41, 51, 63, 77, 80, 86, 97]. Указания на принципы флуоресцентного анализа и описание определения отдельных элементов содержатся в ряде руководств по аналитической химии [2, 18, 23, 37, 50, 62, 72, 75, 93, 98]. Флуориметрия и титрование с флуоресцентными индикаторами систематически обобщаются в обзорах ряда авторов [4, 5, 6, 29, 52, 68, 70, 87, 96, 102, 103]. Применение флуоресцентных реакций в капельном анализе и в бумажной хроматографии приведено в некоторых руководствах и журнальных статьях [21, 30, 60, 82, 85, 92]. Теоретическим и практическим вопросам люминесценции твердых кристаллических систем (искусственных фосфоров, минералов и др.) посвящено несколько отечественных и зарубежных монографий [1, 24, 31, 47, 55, 61, 63а, 78]. [c.21]

Весьма перспективна комбинация бумажной хроматографии с радиоактивными индикаторами. Содержание последних в отдельных пятнах определяется либо при помощи фотопластинки, либо счетчиком Гейгера. Применяя радиоактивную углекислоту, удалось таким путем выяснить, какие вещества (сахара и аминокислоты) образуются в растении при ассимиляции углекислоты [c.220]

Распределительная хроматография. При этом способе используется свойство составных частей смеси различно растворяться и распределяться между двумя несмешивающимися растворителями. Разновидностью является бумажная хроматография , когда разделение смеси наблюдают на полосе фильтровальной бумаги, обработанной индикаторами. Отдельные компоненты смеси проникают через поры бумаги, опущенной концом в растворители, и поднимаются по ней с различной скоростью. Это и позволяет находить границы между составными частями смеси. [c.35]

Биоавтография является вариантом бумажной хроматографии, когда рост бактерий используется как высокочувствительный индикатор для выявления положения определенных веществ на хроматограмме. Метод имеет преимущества специфического определения веществ с биологической активностью, чего лишены химическая и радиоизотопная системы их обнаружения. Он применим при определении положения на хроматограммах факторов роста из супернатантов культур или клеточных экстрактов, когда концентрация этих факторов настолько низка, что их нельзя обнаружить другими обычными методами. Например, с помощью биоавтографии можно определить на хроматограмме 5—10 нг фолиевой кислоты. Примеры использования биоавтографии для определения факторов роста в клеточных экстрактах приведены в работе [15]. Биоавтографию широко используют также в фармацевтической промышленности для обнаружения антибиотиков на бумажных хроматограммах [22]. [c.367]

Органических реагентов в сотни раз больше, чем неорганических. Это позволяет выбрать лучшие из них. Чрезвычайно широко органические реагенты используют в методах разделения ионов, обнаружения и концентрирования. Их применяют в капельном анализе, колориметрическом, титриметрическом и гравиметрическом анализах, в бумажной и тонкослойной хроматографии и используют в качестве индикаторов. Многие органические соединения дают с ионами металлов малорастворимые осадки, ярко окрашенные и слабо ионизирующие. [c.55]

Бумага также может быть использована для получения хроматограмм. В настоящее время бумажная распределительная хроматография находит широкое применение, особенно в биохимии, в связи с использованием радиоактивных индикаторов [c.466]

Перед началом анализа исследуемой смеси на хроматографе надо включить тумблер Печать 9, тем самым подготавливая цифропечатающее устройство к работе. Далее, одновременно с вводом пробы в хроматограф нажать кнопку Пуск , при этом загорается сигнальная лампочка 6. В автоматическом режиме в момент выхода пика, когда наклон сигнала достигнет заданного значения чувствительности по наклону, начинается интегрирование и загорается лампочка 8, которая по окончании интегрирования пика гаснет. При этом площадь и время удерживания хроматографического пика выводятся на табло цифровых индикаторов 16 и одновременно печатается на бумажной ленте. Сброс результатов с цифрового табло происходит в положении максимума следующего пика. В ручном режиме интегрирование пика производится нажатием кнопки Интегрирование , которая работает только с включенной кнопкой Пуск . Момент начала и конца интегрирования определяется в этом случае по регистрирующему прибору хроматографа (самопишущему потенциометру). После выхода пика прекращают интегрирование, вторично нажимая кнопку Интегрирование . Так же как и в автоматическом режиме, в процессе интегрирования в ручном режиме горит лампочка 8. После завершения анализа исследуемой смеси нажать кнопку Пуск и лампочка 6 должна погаснуть. По окончании работы на интеграторе выключить сначала тумблер Печать , а затем тумблер Сеть . [c.220]

Реагенты-индикаторы для -детектирования пятен в бумажной и тонкослойной хроматографии [c.413]

Бромфеноловый синий является кислотно-йсновным индикатором с переходом окраски от желтой к пурлурной в интервале pH 3,0—4,6. Применяется при определении концентрации водородных ионов, при бумажной хроматографии и т. п. [c.54]

Использование радиоизотопов в бумажной хроматографии позволило во многих отношениях расширить возможности этого метода. Особенно при количественных определениях радиометрические методы имеют ряд преимуществ благодаря их высокой чувствительности. Особая сложность в бумажной хроматографии заключается в том, чтобы сделать видимыми на бумаге пятна вещества. В большинстве случаев это осуществляется при помощи цветных реакций. Разделение и количественное определение многих веществ неосуществимо из-за отсутствия соответствующих цветных реакций. При радиометрических определениях цветные реакции не нужны. В тех случаях, когда неактивные вещества могут быть переведены в меченые соединения при помощи радиоактивных индикаторов, они определяются и идентифицируются по излучению. В тех случаях, когда неактивные вещества (элементы), разделенные методом бумажной хроматографии, имеют большое эффективное сечение захвата нейтронов, хроматограммы можно облучать нейтронами в реакторе и измерять радиометрически. За последние годы удалось методом бумажной хроматографии разделить ряд радиоизотопов без носителя. Таким образом, бумажная хроматография стала одним из основных методов получения и разделения радиоактивных изотопов без носителя [8, 9]. Для бумажнохроматографического разделения в среднем используют 60—80 у вещества. Без носителя 1 милликюри Н23 Ю4 соответствует 6,8-мг, 1 милликюри Нз Р Ю4 — 1 жг, т. е. общий вес веществ, соответствующих активности 1 мкюри серной кислоты и 1 мкюри фосфорной кислоты, составляет 78у, и они могут быть разделены методом бумажной хроматографии. Даже при менее благоприятных условиях можно производить разделение или очистку радиоактивных веществ. [c.265]

Обогатился также ассортимент химических реактивов, применяемых в аналитической практике. Появились новые высокочувствительные реактивы на катионы, анионы и функциональные группы химических соединений внедрены в производство методы получения ряда комплексонов и индикаторов для комплексометрического титрования организован выпуск редких и рассеянных металлов, их окислов, гидроокисей и солей создан ассортимент сорбентов, инертных носителей, неподвижных фаз, растворителей, хроматографически чистых эталонов для газовой, газо-жидкостной, ионообменной и бумажной хроматографии резко расширилась номенклатура специальных реактивов и препаратов для научных исследований в области биологической химии, молекулярной биологии и смежных с ними наук значительно пополнился ассортимент реактивов для медицинских анализов и диагностики. [c.9]

В литературе описано разделение сульфо- и бромсульфо-фталеиновых индикаторов методами бумажной хроматографии и электрофореза на бумаге [1—4]. При этом авторы на основании подвижностей веществ считают хроматографический метод разделения более эффективным, чем электрофоретический. Однако на практике чаще всего приходится иметь дело не со смесью различных индикаторов, а с одним индикатором, представляющим собой зачастую неоднородный препарат. [c.75]

Малеиновый ангидрид является сырьем в производстве иетилтетрагидрофталевого ангидрида (МТГФА). Присутствий малеинового ангидрида отрицательно сказывается на свойствах МТГФА. Для определения малеинового ангидрида в МТГФА нами применен метод бумажной хроматографии [1]. Сущность метода состоит в следующем. Каплю ацетонового раствора МТГФА наносят на полоску фильтровальной бумаги, которую погружают в этиловый эфир. Когда фронт растворителя поднимется на 10—15 см, полоску вынимают, сушат и опускают в ванночку со смешанным индикатором. В случае присутствия малеинового ангидрида в месте нанесения капли на синем фоне бумаги появляется пятно, окрашенное в красный цвет, а МТГФА образует окрашенную зону, расположенную у фронта растворителя. Если ацетоновый раствор МТГФА наносить на бумагу, смоченную индикатором, то в случае присутствия малеинового ангидрида в месте нанесения капли появляется красное пятно сразу, а в отсутствие его через 1— [c.159]

В работах [78, 79] было показано, что хорошим радиореагентом для определения некоторых стероидов путем замеш.ения их кетогруппы оказался семикарбазид- 5. Тиосемикарбазоны при этом образуются с хорошим выходом, а удельная радиоактивность реагента может быть достаточно большой и обеспечить тем самым высокую чувствительность анализа. Эти производные характеризуются заметным сродством к бумаге и силикагелю, и поэтому для их разделения методом бумажной или тонкослойной хроматографии требуются большие количества подвижной фазы (например, в анализе стероидов). Полярность тиосемикарбазонов уменьшается, при их ацетилировании, в результате чего образуются 2,4-диацетилпроиз-водные, что требует, однако, больших затрат вещества. Продукты ацетилирования меньше адсорбируются стеклом, и потому ацетилирование уменьшает потери, обусловленные этой адсорбцией. Если в анализируемую пробу биологической жидкости добавить определенное количество анализируемого стероида, меченного тритием, то по этому стероиду можно будет определить полный выход веществ в анализе и упростить его проведение. Желательно, чтобы добавляемый стероид имел настолько высокую удельную радиоактивность, что его можно было добавить в количестве, пренебрежимо малом по сравнению с количеством стероида в анализируемой пробе (см. гл. 1 и 2 об использовании второго радиоизотопа в качестве индикатора). Измерение радиоактивности пары с помощью жидкостного сцинтилляционного счетчика можно осуществить на тех же приборах, что и измерение радиоактивности для пары В работе [80] описана модификация этого метода для одновременного определения и 5 в условиях переменного тушения излучений. [c.113]

Продукты распада могут быть разделены фракционным осаждением их кальциевых солей [118] сахаринаты можно исследовать с помощью бумажной распределительной хроматографии, используя смесь растворителей этилацетат — уксусная кислота — вода (объемное отношение 10 1,3 1) кислоты обнаруживают индикатором марки ВОН-4,5, а лактоны — с помощью проявляющего реагента гидроксиламин — хлорное железо [2]. [c.324]

Тонкослойная хроматография. Обычно в зоне абсцизовой кислоты на бумажной хроматограмме находятся сопутствующие вещества (возможно фенольной природы), которые затрудняют идентификацию этого ингибитора. Поэтому для дальнейшей очистки мы применяли метод тонкослойной хроматографии. Для этого ингибирующую зону, определенную по биотесту, вырезают из бумажной хроматограммы и элюируют 96%-ным этиловым спиртом 2— 3 раза. Спирт упаривают под вакуумом при температуре 40° до небольшого объема и этот объем наносят на пластинки с тонким слоем в виде полосы, отступая от края пластинки на 1,5 см. При приготовлении пластинок применяли общепринятую методику [7]. В качестве адсорбента использовали селикагель Н , который очень удобен при определении ростовых веществ, так как не содержит соединений, мешающих проведению биологических тестов. Удобны готовые пластинки Силуфол ЦУ -254 с люминисцентным индикатором, что значительно облегчает идентификацию веществ по флюоресценции или поглощению в УФ-свете. [c.92]

После проявления хроматограммы и испарения растворителя ее обрабатывают раствором индикатора, который вызывает окрашивание хроматографируемых веществ и таким образом позволяет определить их положение на бумаге. Раствором индикатора (табл. 25) обычно опрыскивают поверхность бумажной полоски, где прошел растворитель. Выбор индикатора полностью зависит от природы хроматографируемого вещества. Например, при хроматографии аминокислот широко применяют нингидрин (трикето-гидринденгидрат). При опрыскивании хроматограммы 0,1—0,2%-ным раствором нингидрина в бутаноле-1 или этаноле окрашенные пятна появляются через 24 часа. Реакцию можно ускорить осторожным нагреванием хроматограммы после опрыскивания при 90—100° в течение 10 мин. В случае окрашенных соединений (красители, нитросоединения и т. п.) применения индикатора не требуется, хотя для увеличения интенсивности окраски пятен хроматограмму часто опрыскивают сильно разведенными растворами щелочей и комплексообразующих агентов. Флуоресцирующие при облучении ультрафиолетовым светом вен ества часто обнаруживают облучением хроматограммы маленькой ультрафиолетовой лампой. Для распыле- [c.363]