Хлорфенол определение в воде

Определение вкуса допустимо только в таких пробах, относительно которых есть уверенность, что в нпх отсутствуют возбудители болезней и токсичные вещества. Если на этот счет имеются сомнения, то удовлетворяются результатами химического и бактериологического анализа. Питьевую воду можно испытывать на вкус без каких-либо сомнений, если результаты осмотра местности оказались безупречными или если анализируют питьевую воду, подготовленную химически — хлорированием или озонированием. На вкус могут быть обнаружены фенолы, хлорфенолы и минеральные масла. [c.44]

Оптимизация процессов пробоподготовки при определении супертоксикантов (диоксины, дибензофураны, ПАУ, ПХБ, пестициды, хлорфенолы и др.) способствует получению представительной пробы загрязнений воздуха, воды и почвы и, как следствие, повышению надежности идентификации целевых компонентов. [c.575]

Предложена методика колориметрического определения хлорфенолов в технических гербицидных препаратах. Образец гербицида растворяют в дистиллированной воде. Аликвотную часть раствора смешивают с водным раствором пирамидона, раствором красной кровяной соли и аммиачным буферным раствором (pH 8,2). Через 10—15 мин. наблюдают оранжево-красное окрашивание раствора. Количественное определение проводят методами калибровочного графика, добавок и дифференциальной фотометрии. [c.161]

Фенолы (или хлорфенолы), находящиеся в сточных водах производства инсектицидов, не мешают определению, так как они количественно удаляются при выпаривании бензольной вытяжки. [c.139]

Фенолы растворяют найлон, вероятно, за счет разрыва межмолекулярных водородных связей между полиамидными цепями полимеров, поскольку эффективность их как растворителей найлона коррелируется со способностью образовывать водородные связи. Фенолы не так устойчивы, как муравьиная кислота, но они слабые кислоты, и спектр поглощения красителя в фенолах гораздо меньше отличается от такового в нейтральной среде, чем спектр в муравьиной кислоте. Для растворения найлона 66, окрашенного дисперсными, кислотными и активными красителями, применялся о-хлорфенол [6]. Использовался также жидкий фенол (фенол без добавок стабилизаторов), но оказалось, что поглощение некоторых красителей изменяется, и поэтому была использована смесь о-хлорфенол — пиридин. Однако в работах [62] и [63] применяли водный фенол фенол — вода 3 10) при определении кислотных красителей в найлоне. л-Крезол использовали для растворения найлона, окрашенного хромовыми комплексами [54]. Найлон 6 [64] и найлон 66 [65], окрашенные кислотными красителями, растворялись в 20% растворе хлорида кальция в метаноле или этаноле, а матирующая добавка удалялась центрифугированием. Упомянутый этанольный раствор является наименее [c.533]

Разработанная методика положена в основу количественного определения хлорфенолов в технических гербицидных препаратах группы 2,4-Д. Для этого точную навеску образца гербицида (1,0—1,5 г) растворяют в 100 мл дистиллированной воды и проводят количественное определение тремя методами 1) по калибровочному графику, 2) методом добавок и 3) методом дифференциальной фотометрии. [c.29]

Метод определения эфирсульфоната в растениях [1], основанный на гидролизе его до га-хлорфенола в щелочной среде, был модифицирован нами и применен для его определения в воде водоема. Реакции проходят по следующей схеме [c.44]

Методика 42. Определение фенолов в сточных водах. При процессах термического разложения древесины в значительных количествах образуются фенолы, которые при переработке жижки и смолы частично попадают в сточные воды. Содержание фенолов в водоемах бытового пользования допускается не более чем 0,001 мг/л. Вместо количественного определения фенолов в таких концентрациях пользуются оценкой их присутствия по характерному аптечному запаху при хлорировании пробы воды, появляющемуся в результате образования хлорфенола. Контроль за сточными водами должен обеспечивать, чтобы содержание в них фенолов допускало спуск их в водоемы без превышения указанной нормы. Для определения фенолов в сточных водах известно много методов ниже описаны основные черты важнейших из них. [c.99]

Контроль за содержанием примесей органических соединений в питьевой воде, обладающих токсическим (например, канцерогенным или мутагенным) действием, является актуальной задачей в санитарно-химическом анализе. К настоящему времени установлено, что в обычной водопроводной воде обнаруживаются примеси многих химических веществ фенолы, хлорфенолы, галогенсодержащие соединения других классов, ароматические углеводороды, альдегиды, кетоны, спирты, эфиры, нафтены, парафины и другие — всего более 70-80 потенциальных экотоксикантов, содержание которых необходимо контролировать. Наиболее опасными для здоровья человека являются низшие хлоралканы (хлороформ, четыреххлористый углерод), появляющиеся в водопроводной воде в результате ее хлорирования на водоочистительных станциях. Содержание хлороформа в водопроводной воде различных крупных городов мира ( 20 мкг/л) примерно на порядок превышает содержание четыреххлористого углерода ( 1 мкг/л), поэтому именно на разработку простых и надежных методик определения хлороформа в питьевых водах направлено внимание специалистов санитарнохимических служб. В большинстве стран НЛК хлороформа в питьевых водах установлена на уровне 30-100 мкг/л, следовательно, необходимо иметь возможность контролировать и значительно меньшее его содержание в анализируемом образце (вплоть до 1-5 мкг/л). [c.528]

На примере фенолов было показано, что при определенных условиях легко осуществляются реакции замещения с образованием соответствующих хлорфенолов, которые характерны и для других загрязнений воды в процессе ее хлорирования. В некоторых случаях хлорпроизводные различных соединений обладают сильным хлороформенным запахом и привкусом. [c.341]

Циглер и Филлипс [15] описали быструю и несложную методику ТСХ-определения нескольких растворимых в воде хлорфенолов [c.470]

Такие методики используют ЕРА и ЕС (Европейское сообщество) для определения фенолов и хлорфенолов в воде и почве [99]. После превращения целевых компонентов в ацетаты (см. также гл. VIII) по реакции с уксусным ангидридом с последующей жидкостной или твердофазной экстракцией производных их хроматографируют на капиллярной колонке с масс-спктро-метрическим детектором. Надежность идентификации достигает 100%, а j составляет 5-20 ppt. [c.318]

При определении низких содержаний хлорфенолов в воде используют стандартные методики ЕРА и ЕС [99], основанные на жидкостной или твердофазной экстракции целевых компонентов, переводе их в ацетаты и хроматографировании на капиллярной колонке с масс-спектрометром в качестве детектора (см. также гл. VIII). Информативность идентификации хлорфенолов в такой методике может приближаться к 95—100%. [c.337]

Изучение мембранных явлений на живых организмах — чрезвычайно сложная экспериментальная задача. В 1962 г. П. Мюллер и сотрудники разработали методику приготовления бимолекулярных фосфолипидных мембран, что предоставило возможность модельного исследования ионного транспорта через мембраны. Для приготовления искусственной мембраны каплю экстракта мозговых липидов в углеводородах наносят иа отверстие в тефлоновом стаканчике (рис. VI. 15). Искусственные мембраны имеют более простое строение, чем естественные (ср. рис. VI. 13 и VI. 15,6), но приближаются к последним по таким параметрам, как толщина, электрическая емкость, межфазное натяжение, проницаемость для воды и некоторых органических веществ. Однако электрическое сопротивление искусственных мембран на 4—5 порядков выше. Проводимость мембран увеличивают, добавляя ионофоры жирорастворимые кислоты (2,4-динитрофенол, дикумарол, пента-хлорфенол и др.) или полипептиды (валиномицин, грамицидины А, В и С, аламетицин и др.). Мембрана, модифицированная валиномицином, имеет сопротивление порядка 10= Ом/см , а ее проницаемость по К+ в - 400 раз выше, чем по Na+. На модифицированных моделях был изучен механизм селективной проницаемости мембран. В определенных условиях при добавлении белковых [c.161]

По органолептическому показателю установлены следующие значения (в мг/л) гексахлорциклопентадиен — 0,001, крезилдитиофосфат — 0,001, ге-дихлорбензол — 0,002, дихлорфенол — 0,002, изопрен — 0,005, три-хлорфенол — 0,0004, фенол — 0,001 [0-5]. При комбинированном действии ПДК для каждого компонента практически находятся ниже возможности эффективной очистки сточных вод и чувствительности определения в воде каждого компонента. [c.12]

Хлорфенолы (см. также раздел 5.3), которые относятся к приоритетным загрязнениям воды, почвы и воздуха, можно надежно идентифицировать и определять количественно в сложных смесях с другими ЛОС в виде ацетилпроизводных (высокохлорированные фенолы) или в форме пентафторбензилпроиз-водных (низкохлорированные фенолы) [161]. В дервом случае для получения производных пентахлорфенола применяют диазометан или уксусный ангидрид с последующим определением продуктов реакции (этиловые и метиловые эфиры) с помощью ПИД [103]. Снизить С , например, при определении хлорфенолов в воздухе рабочей зоны, можно, применяя ЭЗД [162,163]. [c.337]

Определенной вехой в истории активного угля считается 1927 г. в Чикаго удалось предотвратить загрязнение питьевой воды хлорфенолом благодаря применению порошкового активного угля в сочетании с медленно фильтрующим песчаным фильтром. Сотни водопроводных станций, особенно в США, перешли на этот способ водоподготовки. Примерно в то же время в Германии на водопроводной станции города Хамма в Вестфалии был установлен угольный фильтр для очистки питьевой воды, которую ранее практически невозможно было употреблять из-за неприятного привкуса. Поскольку примеси в воде почти исключительно состояли из фенола, уголь приходилось регенерировать водяным паром в течение нескольких недель в интервалах между циклами очистки. Водопроводная станция города Кенигсберга в Восточной Пруссии уже давно использовала порошковый активный уголь для устранения затхлого привкуса водорослей, появлявшегося в определенное время года при этом доза порошкового угля составляла 5 г/м . [c.146]

Для выделения хлорорганических инсектицидов из воды применена экстракция. В качестве методов определения были использованы фотоколориметрия (ДДТ, эфирсульфонат), бумажная хроматография (ДДТ, ГХЦГ, гептахлор) и тонкослойная хроматография (ДДТ, ГХЦГ, альдрин и дильдрин). Метод определения эфирсульфоната основан на гидролизе его до п-хлорфенола и определении последнего с [c.161]

Количественное определение 2, 4, 5-трихлорфенола и 2, 2, 4, 4, 5, 5-гексахлордифенплампна нами не проводилось. Качественно же методом ТОНКОСЛОЙНО хроматографии (сорбент окись алюминия- 11111С, растворитель — (ХЦ, проявитель — пары йода) ни одно из этих соединен в сухом твердом продукте реакп не обнаружено. Отсутствие 2, 4, 5-тр хлорфенола в твердом продукте реакции не является. од ако. свидетельство> того, что это соединение в данном процессе не образуется. Поскольку 2, 4, 5-трихлорфенол имеет относительно высоку 0 растворимость в воде, при обработке реак-ционно массы, Б лгр жаемо з ампулы, он. может вымываться из твердого продукта промывными водами в фильтрат. [c.135]

Согласно приведенным выше исследованиям, а также соответствующим нашим исследованиям, выполняемым в Институте общей химии со сточными водами иного проис.хождения, несмотря на сравнительно большие дозы СЮг, аналитические определения показывают еще содержание фенолов и хлорфенолов в количестве от 10 до 20% начального их содержания. Это связано с состоянием равновесия в данных условиях, так как количество епрореагировавшей СЮг тоже значительно (на основании исследований были составлены кривые равновесия). [c.391]

В связи с этим в табл. 16 специально обозначено, что нормируется фенол, образующий хлорфенол, иначе говоря, пока не предложены предельно допустимые концентрации для различных фенолов (одно-, д ух- трехатомных и фенолопроизводных) и не уточнены методы их раздельного определения в воде, вопрос о применении принятого для фенола норматива (0,001 мг/л) как и более общий вопрос об условиях спуска сточных вод, содержащих фенолы, должен решаться а первую оче- [c.194]

Тонкослойную хроматографию применяют для разделения и идентификации различных органических веществ. Пятна проявляются после обработки различными реактивами или УФ-лу-чами. Тонкослойную хроматографию используют для определения в сточных водах фенолов [5, с. 124], углеводородов, масел [5, с. 150], пестицидов [5, с. 163], хлорфенолов [34], хлоруглеводородов, полициклических ароматических углеводородов [35], хлорофоса, дихло-фоса [36] и др. [c.22]

Циглер и Филлипс [32] использовали двумерное ТСХ-разделение для идентификации и обнаружения хлорфено гов в пробах воды до и после ее обработки на очистном заводе. Пробу объемом 1 л подкисляли до pH = 1,5 и экстрагировали петролейным эфи-ром. Экстракт упаривали постепенно до объема в,1 мл и наносили на слой сорбента. Для разделения использовали пластинки с оксидом алюминия, активированные при 120 °С в течение 1 ч [33]. Разделение в сэндвич-камере прекращали, когда фронт элюента (бензол) перемещался на расстояние 7—10 см. Это разделение, проводили для удаления нежелательных примесей и в случае необходимости его можно повторить. Стандарты хлорфенолов (0,05— 0,5 мкг) наносили над линией фронта бензола на одном уровне с пробами. После этого пластинки поворачивали на 90° и дальнейшее разделение проводили 6%-ным раствором 1 н. NaOH в ацетоне. При проявлении хроматограммы серебряным реактивом зоны окрашивались в светло- или темно-коричневый цвет. Реактив готовили следующим образом 0,5 г нитрата серебра растворяли в 5 мл дистиллированной воды, добавляли 100 мл 2-феноксиэтанола, 3 капли 30%-ной Н2О2 и полученную смесь доводили до объема в 1 л ацетоном. Можно использовать также реактив с 4-аминоантипирином, но он менее чувствителен. Полнота извлечения хлорфенола в ходе описанных операций достигала 75—100% от первоначального количества, а предел определения составлял менее 0,1 мкг хлорфенола на 1 л пробы. [c.593]

Предпочтительным способом определения фенолов в воде является извлечение этих загрязнителей из воды с помощью картриджей для ТФЭ, содержащих 1 г ХМК-С18. Фенольные соединения в пробах воды в виде ацетатов (этилфенолы, диметилфенолы, хлорфенолы, ди- и трихлорфенолы, 4-хлор-2-метилфенол и 4,6-дихлоррезорцин с пределом обнаружения 1-10 нг/л) определены методом капиллярной газовой хроматографии с масс-селективным детектированием. Идентификация фенолов в пробах воды производится по временам удерживания и масс-спектрам стандартных растворов, содержащих до 5 10 % отдельных фенолов. Картриджи с ХМК-С18 используются также для определения в воде по сходным методикам хлор-, азот-, фосфорорганических пестицидов, полихлорированных и полибромированных бифенилов, полиядерных ароматических углеводородов, а при использовании концентрирования на патронах с ХМК-С18 и патронах с силикагелем и/или флоризилом — для определения гербицидов на основе феноксиуксусных кислот или фенилмочевины и пиразона, триазиновых гербицидов. Подробные методики приведены в работе [26]. В России для определения 10 приоритетных фенолов в природных водах разработана методика ТФЭ с применением концентрируюищх патронов Диапак С16 [16]. [c.387]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология