Гипертоническая среда II III

Плазмолиз. В обычных условиях концентрация сахаров и солей-осмотически активных веществ-внутри клетки выше, чем в окружающей среде. Содержимое кЛетки по осмотическому давлению эквивалентно 10-20%-ному раствору сахарозы, и в клетку поступает столько воды, с црлько допускает растяжимость ее стенки. Если повысить осмотиче-сЩе давление внешней среды (например, путем добавления сахаров или мочевины), вода будет оттягиваться из клетки. В конце концов протопласт сожмется и плазматическая мембрана отделится от клеточной стенки. Такой процесс, происходящий в гипертонической среде, называют плазмолизом. Именно явление плазмолиза у крупных бактериальных клеток позволяет нам убедиться в том, что плазматическая мембрана у них окружена клеточной стенкой. Как плазматическую мембрану, так и клеточную стенку окрашивает водорастворимый основной краситель виктория синий. [c.50]

Перенос в гипертоническую среду вызывает сжатие [c.10]

Значение осмотического давления как одного из важных факторов, обеспечивающих возможность нормального осуществления клетками их физиологических функций, может быть легко показано на некоторых подвижных клетках, например сперматозоидах. Сперматозоиды млекопитающих быстро утрачивают свою подвижность в гипо- и гипертонических средах, в то время как в изоосмотических (изотонических) физиологических растворах сохраняют in vitro способность к оживленному движению в течение многих часов. [c.393]

Рис. 13.2. Влияние растворов различной концентрации на растительные клетки. В растворе, водный потенциал которого выше, чем водный потенциал клетки (гипотоническая среда), вода за счет осмоса будет проникать в клетку и каетка набухает (становится тургесцентной). Если водный потенциал раствора ниже, чем водный потенциал клетки (гипертоническая среда), то вода покидает ее за счет осмоса, и живая часть клетки (протопласт) отстает от клеточной стенки и следует за сокращающейся вакуолью (плазмолиз). Если водные потенциалы клетки и раствора одинаковы (изотоническая среда), то никаких изменений не происходит.

С позиций коллоидной химии микробная клетка представляет собой коллоидную систему, где дисперсионной средой является вода, а дисперсной фазой биополимеры, в состав которых входят перечисленные выше органические вещества клетки. Лишь часть воды, содержащейся в живой бактериальной клетке, находится в свободном состоянии. Остальная вода во всех компонентах клетки имеет форму связанной воды. Гипертонические растворы солей или сахаров во внешней среде приводят к потере бактериальной клеткой не только свободной, но и части связанной воды. [c.37]

Биохимические особенности. Микоплазмы отличаются от большинства других бактерий не только отсутствием клеточной стенки, но и рядом биохимических признаков. Они растут только в изотонических или гипертонических средах (с добавлением сорбитола или сахарозы) и нуждаются в пуринах, пиримидинах и липидах, в том числе стероидах. Отсутствие у микоплазм хинонов и цитохромов дает основание заключить, что у них весьма ограниченная цепь дыхания. [c.126]

На фотографии вид ы те изменения, которые происходят при переносе хлоропластов из гипертонической среды для выделения, содержащей сахарозу в гипотоническую реакционную среду [c.287]

При повышенной концентрации солей в плазме эритроциты оказываются в гипертонической среде (рис. 30, в). Вода будет выходить из эритроцитов, что приведет к их сморщиванию, сжатию цитоплазмы и потере функции. Такое явление называется плазмолизом. Плазмолиз является одной из причин гибели организма при обезвоживании. [c.79]

Под влиянием указанной выше термодинамической силы, пропорциональной разности кривизны вне- и внутриклеточных кристаллов, происходит перенос внутриклеточной воды через клеточную мембрану наружу, сопровождающийся растворением кристаллов в клетке, ибо кристаллы вне клеток, как правило, велики по сравнению с внутриклеточными. Характерное время растворения внутриклеточных кристаллов в период температурной остановки совпадает с временем релаксации клеточного объема к квазиравновесному значению в гипертонической среде и определяется выражением [c.66]

Изменение осмотического давления среды вызывает сморщивание или набухание клеток. В гипертонической среде также происходит модификация внутриклеточного диффузионного окружения (рис. 7). В этих условиях Dsh изменяется в 2 раза, а Тс только на 18 %. Полученные данные показывают, что препятствия для диффузии становятся ближе друг к другу, так как в результате изменений осмотического давления размер клетки уменьшается. [c.313]

Большая часть внутренней воды многослойных липосом осмотически активна, благодаря чему они обладают свойствами идеального осмометра, меняя свой объем в ответ на изменение концентрации наружного раствора. В гипотонических растворах вода устремляется внутрь липосом и они быстро набухают. В гипертонических средах липосомы сморщиваются за счет потери воды из межла-меллярного пространства. Однако часть воды в липосомах остается осмотически неактивной. Например, у яичного фосфатидилхолина на 1 молекулу липида приходится около 25 молекул осмотически неактивной воды, что отвечает минимальной ширине межламелляр-ного пространства в , 2—1,4 нм. [c.576]

Применение. В гистохимии (с добавкой или без добавйи сахарозы) в качестве гипертонической среды для защиты ферментов от разрушения [1] и диффузии ферментов в инкубационную среду [2], В микроскопии в качестве основы водорастворимых сред для заключения объектов. Такие среды отличаются хорошей совместимостью с красителями, они обеспечивают сохранность красителей, используемых во многих гистохимических методах (ЩИК) альциановый -синий, целестиновый голубой, альдегид-фуксин и др.), образование пузырьков при использовании поливинилпирролидона в качестве среды для заливки минИ мально [3]. В медицинской практике для получения кровезаменяющнх растворов, пролонгации действия некоторых лекарственных средств и для целей дезинтоксикации. В косметической промышленности для изготовления лаков, кремов, губной помады и др. [c.320]

Применение, В качестве субстрата для выявления амилсукразы [1], дек странсукразы [2] и инвертазы [3] в гистохимии (в добавкой или без добавкй поливинилпирролидона) в качестве гипертонической среды для защиты фермен-ii тов от разрушения [4], в частности для сохранения активности р-глюкурони-5 дазы [Пирс, 341] для бактериологических целей. [c.351]

Антибиотик пенициллин действует главным образом на грам-положительные бактерии (стафилококки и пневмококки а т Щ торые грам-отрицательные клетки (гонококки, менингококки, энтеробактерии), убивая их. Однако его бактерицидному действию подвержены только растугцие бактерии нерастущие, покоящиеся клетки остаются незатронутыми. Самый примечательный феномен, наблюдаемый при воздействии пенициллина,-это появление так называемых L-форм, которые образуются из нормальных бактериальных клеток в результате несбалансированного роста в длину и в толщину. При этом исходные палочковидные клетки увеличиваются в объеме во много раз (см. разд. 3.19). На агаризованных питательных средах такие гигантские клетки могут некоторое время сохранять жизнеспособность. Если воздействовать пенициллином на растущие клетки в гипотоническом растворе, то они лопаются. В изо- и гипертонических средах палочки превращаются в шаровидные образования (рис. 2.26), получившие название L-форм или сферопластов . Последние отличаются от протопластов тем, что сохраняют остатки клеточной сТенки (анализ обнаруживает следы мурамовой и диаминопимелиновой кислот). Пенициллин нарушает процесс образования клеточной стенки. — ----------- [c.55]

Протонная помпа может играть большую роль в изменении объема хлоропластов. Способность хлоропластов изменять объем была обнаружена давно. В начале нашего века рядом авторов было показано, что хлоропласты набухают в воде. Позже было обнаружено и детально изучено свойство хлоропластов сжиматься в гипертонической среде и принимать первоначальный вид при обратном перемещении в изо-или гипотонический раствор. Хлоропласты 1п vivo тоже могут изменять свой объем. В 1942 году Бюннинг сообщил о суточной периодичности изменения формы хлоропластов у некоторых растений. В более поздних публикациях многих авторов этот факт был [c.214]

Проведенные измерения в опытах с отрезками колеоптилей свидетельствуют о том, что мИУК в гипотонической среде в два раза увеличивает прирост отрезков колеоптилей кукурузы в длину. В слабогипертоиической среде (0,45 AI маннит) прирост отрезков в длину крайне незначителен и действие ауксина на рост растяжением полностью ингибировано. Ниже показано влияние мИУК (5 мг/л на прирост отрезков колеоптилей кукурузы в длину за 24 часа инкубации в гипотонической (вода) и гипертонической средах. [c.162]

Осмотические явления, связанные с переносом различных веществ через избирательно проницаемые мембраны, вносят значительный вклад в повреждение и защиту клеточных мембран на различных этапах криоконсервации. Каков ответ замкнутой системы (везикулы или клетки), окруженной избирательно-проницаемой мембраной, на перенос из одной среды в другую , которая отличается от первой составом (гипертоническая среда при изотермических условиях) Упрощенный анализ протекающих при этом процессов позволяет выявить ряд физических причин и закономерностей криоповреждения и криозащиты мембранных структур, особенно на начальном и конечном этапах цикла криоконсервирования. [c.35]

При некоторых условиях через мембрану быстрее, чем вода, проникают молекулы других растворенных веществ. Так, через мембраны эритроцитов человека в области температур выше 25 С быстрее проникают анионы хлора, а не молекулы воды. В связи с этим контакт эритроцитов с гипо- или гипертонической средой при температурах выше 25°С, в первую очередь, приводит к перераспределению между клеткой и окружающей ее средой С1", что, в свою очередь, влечет изменение мембранного потенциала эритроцитов (М. Брумен, 1979). Сдвиг потенциала на 45 мВ приводит к резкому увеличению проницаемости мембраны эритроцита для катионов — к диэлектрическому пробою и к гибели клетки. [c.37]

Возвращение клеток в изотонический раствор после контакта с гипертоническим раствором часто приводит к разрушению их мембран. Это явление называется постгипертоническим лизисом. Одна из его физических причин заключается в следующем. Если в гипертонической среде внутрь клеток проникает достаточно большое количество растворенных веществ, то при переносе в изотонический раствор внутрь клеток должно проникнуть значительно больше воды, чем ее было удалено на стадии обезвоживания (прежде, чем концентрация растворенных внутри клеток веществ уменьшится до изотонической). При этом мембраны растягиваются до такой степени, что наступает их механическое разрушение. [c.37]

Часто в эксперименте, чтобы исключить образование внутри- клеточных кристаллов льда, снижают скорость охлаждения настолько, что под влиянием длительной экспозиции в гипертонической среде происходит гибель клеток. Видимо, именно так обстоит дело с большинством клеток млекопитающих, если не принимаются особые меры для их криозащиты. Например, при скорости охлаждения от 0,3 до 600°С/мин менее чем 2% клеток костного мозга мышей остаются живыми. Однако в присутствии криопротектора большая часть клеток переносит такое замораживание. Добавление криопротектора к клеточной суспензии, как правило, приводит к сдвигу оптимальной скорости охлаждения в сторону меньших значений. Это обстоятельство, скорее всего, связано со способностью криопротекторов затруднять кристаллообразование, рост кристаллов и достижение минимального бъема, а также с эффектом разбавления электролитов (в соответствии с гипотезой солевой денатурации Лавлока). [c.61]

Энергия активации и коэффициенты проницаемости для молекул воды в мембранах оплодотворенных и неоплодотворенных яйцеклеток практически одинаковы. Жесткая оболочка, окружающая избирательно проницаемую мембрану мышиного эмбриона, хорошо проницаема не только для молекул воды, но и для компонентов с молекулярной массой до 1200, но непроницаема для молекул с молекулярной массой 10 000. Поэтому эта оболочка испытывает лишь незначительные деформационные нагрузки в гипо- и гипертонических средах. Эксперимент показывает, что выживаемость эмбрионов мыши существенно падает при увеличении скорости охлаждения от 0,25 до 2,5°С/мин и снижается до нуля при скорости охлаждения около 5°С/мин. Повреждение наступает при тех же скоростях охлаждения, при которых в клетках появляется внутриклеточный лед, т. е. наблюдается прямая зависимость между наличием в клетках кристаллов льда и их гибелью, что согласуется с двухфакторной теори- [c.71]

Функционально активные митохондрии можно получить только в том случае, если при выделении органелл соблюдаются определенные условия. Так как митохондрии вследствие осмотического шока легко повреждаются в гипотонической или гипертонической среде, при выделении обычно используют 0,3—0,6 М сахарозу или маннит. Кроме компонента, обеспечивающего изотоничность среды выделения, в ее состав вводят фосфатный или трис-буфер pH = 7,0—7,8, а также этилендиаминтетраацетат (ЭДТА), альбумин и другие соединения (аскорбат, цистеин). Добавление ЭДТА способствует рассеиванию примесей, загрязняющих препарат, и связыванию ионов кальция, которые освобождаются при разрушении ткани. Хелатирующее действие ЭДТА связывают с полианионными свойствами его молекулы, содержащей четыре карбоксильных группы. Альбумин адсорбирует образующиеся при выделении митохондрий жирные кислоты, которые обладают разобщающим действием на процессы окислительного фосфорилирования. [c.154]

У Е. oli существует специальный механизм экспорта К+ из клетки на повышение осмолярности среды Е. oli отвечает поглощением ионов К+ через -систему. Увеличение К+вн препятствует созданию осмотического дисбаланса между цитоплазмой и гипертонической средой. Неудивительно, что снижение осмотического давления среды ведет к выходу ионов К+ из клетки. Однако этот выход происходит с участием уже иного механизма, отличающегося от TrkA по меньшей мере двумя свойствами он не может использовать Rb+ вместо К+ и тормозится блокаторами калиевых каналов плазмалеммы эукариот. Энергетический аспект системы экспорта К" остается неясным. [c.148]

Мембрана хлоропластов непроницаема для меченого декст-рапа, но, как было установлено, при помощи фильтрации центрифугированием, через нее легко проходят все испытанные соединения сравнительно низкой молекулярной массы. Опыты с использованием меченой сахарозы позволили обнаружить корреляцию между степенью проницаемости для этих соединений и объемом между двумя мембранами оболочки, который в гипертонической среде увеличивается (разд. 8.10). Таким образом, это проницаемое для сахарозы пространство можно рассматривать как межмембранное (рис. 8.9,Б), причем из двух мембран, ограничивающих его, специфической проницаемостью обладает только внутренняя мембрана. Селективность проницаемости этой мембраны на редкость удивительна так, иапример, транспорт ортофосфата через мембрану хлоропластов шпината осуществляется с очеиь большой скоростью, в то время как пирофосфат почти не проходит через нее (рис. 8.15, 8.17 и 8.21), а О-глюкоза проникает в 25 раз быстрее, чем L-глюкoзa. [c.247]

Производное птеридина — фолиевая кислота (51), природный фактор роста, который необходим для жизнедеятельности всех высших животных. Фолиевая кислота принимает участие в биологических превращениях серина в глицин и гомоцистеина в метионин. Синтетическая фолиевая кислота, отличающаяся от природной отсутствием двух атомов азота, применяется в качестве сильн шего противоопухолевого средства [73]. Рибофлавин (витамин Вг) (52), производное бензо[ ]птеридина, встречается в фосфорилированной форме в проросшем зерне, молоке и яйцах. Феназиновая циклическая система входит в состав некоторых синтетических красителей и природных пигментов [например, голубой бактериальный пигмент пиоциании (53)]. Среди производных хиназолина встречаются соединения, примшяемые в качестве лекарственных препаратов иапример, седативное средство метакуалон (54) и празозии (55), применяемый для лечения гипертонической болезни. [c.327]

Здесь представляется уместным сделать еще один экскурс в классическую, домолекулярную эмбриологию. Давно было продемонстрировано, что эктодермальные эксплантаты при культивировании в неоптимальных условиях (экстремальные значения pH, пшо- или гипертонические среды) или в присутствии веществ, оказывающих токсическое действие, превращаются в нервную ткань. Это привело к предположению о том. что в эктодерме гаструлы амфибий имеются клетки, содержащие нейрализующие факторы в неактивной форме. При ряде неспецифических воздействий эти эндогенные факторы могут активироваться и вызывать нейрализацию эктодермальных клеток по механизму ау-то- и (или) паракринной регуляции. [c.82]

Оказалось, что из клеток грамотрицательных бактерий, подвергнутых на холоду осмотическому шоку (быстрому переносу из гипертонической среды в гипотоническую в присутствии ЭДТА), освобождается ряд периплазматических ферментов и наряду с ними белки, способные активно связывать некоторые субстраты, образуя с ними прочные комплексы с константами диссоциации, близкими к величинам Кт, для соответствующих транспортных систем. Одновременно с освобождением периплазматических белков нарушается транспорт этих субстратов в клетки бактерий, а добавление шоковой жидкости или очищенных связывающих белков в некоторых случаях восстанавливает нормальный транспортный процесс. Синтез связывающих белков индуцируется параллельно с индукцией транспортной системы, а у мутантов, дефектных по транспорту, соответствующие связываюпдие белки отсутствуют. Таким образом, участие связывающих белков в транспорте не вызывает сомнений. [c.55]

В 1957 г. Джошуа Ледерберг (Joshua Lederberg) показал, что бактерии, в обычных условиях чувствительные к пенициллину, могут расти в присутствии этого антибиотика, если используется гипертоническая среда. Выращенные таким образом микроорганизмы, так называемые протопласты, ли- [c.224]

Загидуллин 3. Ш., Давлетшина Г. Б., Коныш Л. П., Суиргулова 3. А. Распространение гипертонической болезни, атеросклеротического-кардиосклероза среди работников нефтеперерабатывающего завода и нефтепромыслов Ишимбая.— Труды Бакширск. мед. ин-та ,. [c.307]

Применение. В микроскопии в качестве гипертонического фиксирующего раствора [Берстон, 23] и в гистохимии ферментов как добавка для сохранения активности -глюкуронидазы и эстеразы, а также для предотвращения диффузии кислой фосфатазы в инкубационную среду [I, Пирс, 341, 398]. В химической, текстильной, полиграфической, керамической, бумажной, медицинской, пищевой промышленностях и в сельском хозяйстве в качестве стабилизатора, эмульгатора, загустителя, связующего и клеющего вещества. [c.236]

Можно избежать полного разрушения бактериальных стенок, проводя лизис в изотоническом или слабо гипертоническом (ОЛ -0,2 М) растворе сахарозы. В этих условиях под действием лизоцима из клеток образуются чрезвычайно чувствительные к осмотическим условиям округлые протопласты . В гипертонических и изотонических средах протопласты стабильны в гипотонических средах они лопаются, после чего остаются лишь тени (остатки плазматических мембран). Прото-пластами следует называть только такие округлившиеся клетки, у которых нет никаких остатков клеточной стенк1 т.е. нельзя обнаружить [c.54]

Любые два раствора, имеющие одинаковое осмотическое давление, называются изотоническими. Если один из двух растворов имеет более низкое осмотическое давление, он называется гипотоническим по отношению ко второму. (Следовательно, если красные кровяные тельца поместить в гипотоническую среду, они гемолизируются.) Если один из двух растворов имеет более высокое осмотическое давление, говорят, что он гипертоничен по сравнениюс другим. (Следовательно, красные кровяные тельца в гипертоническом растворе подвергаются сморщиванию.) [c.109]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология