Калий в биологическом материале

Отличием от глицерина может служить отсутствие образования акролеина при нагревании исследуемой жидкости с бисульфатом натрия (калия). Эта реакция неприменима для исследования дистиллятов из биологического материала. [c.103]

В качестве примера подобного рода анализа может служить изучение дыхания в пробе биологического материала. В боковую трубку реакционной склянки вводят 0,5 мл 3 н. раствора серной кислоты, а в центральную вставку—0,2 мл 6 и. раствора едкого кали. Реактивы выдерживают в термостате до установления постоянной температуры в незаполненную часть колбы помещают [c.364]

ЛО экспериментальных данных, но для модельных систем имеются данные, указывающие на потери хлора, натрия, калия, фосфора и серы таким образом, есть основания ожидать, что это явление также имеет место в биологических образцах. Недавний обзор [184] этого вопроса показал, что потеря анализируемых элементов из образцов представляет серьезную проблему. Единственным проблеском является надежда на то, что потери элементов, подобно потере массы, значительно уменьшаются при низких температурах, хотя и полностью не исключаются. Кроме того, покрытие тонкой проводящей пленкой может уменьшить подвод тепла к образцу, а также удержать подвижные фрагменты органического материала, которые в противном случае испаряются в микроанализаторе [180]. Проводящие покрытия следует использовать с осторожностью, так как осажденный проводящий слой может поглощать испускаемое рентгеновское излучение, ослаблять первичный пучок и во многих случаях приводить к появлению рентгеновских линий, которые влияют на интересуемый сигнал. [c.72]

Экстракция из биологических субстратов (кровь, печень, почки, легкие, селезенка, мышечные ткани, жир, мозг, кал, моча). Для анализа берут 1—2 г материала, тщательно измельчают, помещают в колбу с притертой пробкой, заливают-30 мл ацетона (из крови и мочи экстрагируют диэтиловым эфиром) и оставляют на 1 ч, периодически встряхивая. Сливают растворитель, заливают пробу повторно и оставляют на 30 мин. Экстракты объединяют, сушат безводным сернокислым натрием (3—5 г) и упаривают растворитель, как описано выше. [c.125]

Так, описан [115] К -селективный электрод с мембраной на основе биологических материалов, потенциал которого зависит от активности ионов калия в растворе по уравнению Нернста. Другой электрод с константами селективности и Kk°-nh4 = 10 , обнаруживающий мгновенную реакцию на К% изготовлен на основе полимерного материала, содержащего макро-циклический антибиотик (точный состав не назван) [116]. Последний период ознаменовался энергичными разработками твердых мембран на основе соединений, связывающих в комплекс и переносящих ион калия через полимерную матрицу, в которой содержится комплексующий агент. Разработаны электроды с мембранами из силиконового каучука, содержащими валиномицин (см. его структуру в главе о жидких мембранах), с применением и без применения пластификатора оценены их селективность к иону калия, стабильность, воспроизводимость [117]. В табл. VII.7 приведены некоторые характеристики различных мембран, содержащих валиномицин. Селективность к К+ этих электродов по сравнению с селективностью к большинству ионов щелочных и щелочноземельных металлов [118] почти такая же (табл. VII.8), как у обычных электродов с жидкими мембранами (фильтр из милли-пора, пропитанный раствором валиномицина в дифениловом эфире) [119]. Для определения ионов щелочных металлов испытывали также электрод с мембраной из силиконового каучука, содержа-198 [c.198]

О содержании воды можно судить по интенсивности желтоватозеленой окраски, появляющейся при окислении дихроматом калия биологического материала, например мякоти плодов манго и дынного дерева [75]. Интенсивность окраски измеряют при 660 нм и с помощью градуировочного графика определяют примерное содержание воды. [c.359]

Как указывалось ранее, биолог должен выбрать компромисс между свойствами образца и условиями, в которых должен проводиться анализ. Оказывается, компромисс за счет рабочих характеристик приборов дает малый выигрыш, и это означает, что мы должны внимательно рассматривать способы препарирования биологического материала. Большая часть разработанных процедур основывается на методах, используемых в просве-чиваюш,ей электронной микроскопии. Это неоптимальное наследие, так как просвечивающая электронная микроскопия полагается на адекватную сохранность макромолекул, в то время как в рентгеновском микроанализаторе определяются элементы и он, таким образом, лучше всего подходит для анализа неорганических материалов. Тщательные исследования, проведенные в работе [184], показывают, что на всех этапах стандартных гистологических методов имеют место огромная потеря и перераспределение почти всех элементов. Потеря вещества также далеко неоднородна, например, большое количество калия удаляется, а количество удаляемого фосфора различно и зависит от строения ткани. Концентрации элементов, которые могут быть введены в ткань в процессе препарирования, должны быть одинаковы. Методы препарирования при рассмотрении делятся на две группы (проводимые при обычной температуре и проводимые при низкой температуре) и представлены в поряде проведения процедуры препарирования от лживого объекта до образца, исследуемого внутри рентгеновского микроанализатора. Мы кратко обсудим высокотемпературный метод препарирования — микроозоление . Для достижения необходимого представления о состоянии и перспективе методов препарирования мы в первую очередь рассмотрим виды аналитических исследований в применении к биологическим системам, типы исследуемых образцов, а также стратегию и критерии препарирования. [c.267]

При анализе биологического материала на содержание пропиловых спиртов техника определения полностью соответствует приведенной в указанных работах, за исключением следующего температура инкубации исследуемого образца с раствором бихромата калия должна быть повышена до 70° время инкубации увеличено до 3 ч вместо 0,05 и. раствора бихромата желательно использовать 0,075 н. Константа Видмарка, используемая для окончательного расчета содержания пропилового спирта в исследуемом материале, составляет 0,043 при определении изопропилового спирта эта константа равна 0,046 (Neymark, 1938). (Константа Видмарка для этилового спирта равна 0,113.) [c.179]

Оба соединения устойчивы в цитратно-фосфатном буфере при pH 2,2—8,0 в течение 6 ч, а при pH 7 — при нагревании на водяной бане в течение 30 мин, так что затруднений при извлечении этих соединений из биологического материала не возникает. При однократном введении с пищей меченного в нафталиновом цикле соединения самкам крыс через 4 дня выводилось с мочой 78% метки и с калом — 5,2%. Выделение метки происходило быстрее всего в течение первых суток и по существу заканчивалось через 48 ч. В сравнимых условиях с мочой выводилось 90% метки из С-а-нафтола и только 67% метки из а-нафтилглюкозида, меченного в углеводной части. Приблизительно 19% метки выводилось в виде исходного соединения — неизменного глюкозида. Введение метки в углеводный остаток показало, что приблизительно 50% введенного глюкозида предварительно расщепляется, а выделяющийся при этом а-нафтол конъюгирует и выводится из организма в виде глюкуронида и сульфата. Кроме того, часть а-нафтола выделяется в неизменном виде. Только 1% глюкозида окисляется до соответствующего глюкуронида [222]. [c.102]

Жидкий образец анализируемого биологического материала, содержащий 0,05—0,3 цмоль (2—12 y) калия, помещают в пробирку из стекла викор и добавляют 3 капли смеси равных количеств концентрированных серной, азотной и хлорной кислот и 0,05 лы раствора для озоления. Раствор в течение часа или более, если нужно, нагревают при температуре 130°, упаривая до 0,3 мл. Разложение заканчивают, нагревая в течение часа при 280°, а затем также в течение часа при 450°. Охлаждают и закрывают резиновой пробкой, обернутой алюминиевой фольгой. Твердые анализируемые образцы (органические ткани) весом вплоть до 150 лг можно обрабатывать этим же способом. [c.663]

Выделение эфиров из биологического материала проводят (после удаления белков) путем перевода их в бариевую соль и добавления этанола до концентрации 80%. Для хрол1атографирования ио Мортимеру бариевую соль растворяют в 0,5 п. соляной кислоте, добавляют для осаждения бария сернокислый калий или сернокислый аммоний и доводят раствор до pH 5. В таком виде раствор сохраняется при температуре 4°. Хроматографирование фосфорных эфиров в виде калиевых или аммониевых солей более целесообразно, чем хроматографирование свободных эфиров, полученных при обессоливании раствора катионитом. [c.286]

Описано много вариантов метола разложения по такому принципу, которые отличаются соотношением кислот и некоторыми деталями исполнения. Например, рекомендуется окисление смесью азотной (пл. 1,4 г/см ) и серной кислот в соотношении 1 1с последующим добавлением, если требуется, азотной кислоты [5.1188], окисление смесью кислот в отношении 4 1 [5.1162] и окисление сначала азотной кислотой (в присутствии солей марганца как катализатора), затем с добавлением серной кислоты [5.1156]. Последние два метода разработаны для разложения образцов массой 250—ЗОО г. Другие варианты включают применение серной кислоты в смеси с твердыми нитратом аммония [5.1189 ], нитратом натрия [5.1190] или калия [5.1191], нитрозилсерной кислотой [5.1192] и оксидамп азота, которые барботируют через горячий раствор концентрированной серной кислоты, содержащий образец [5.1193]. Следует указать на применение трехкомпонентных смесей азотной, серной и фосфорной кислот для определения ртути в биологических материалах [5.1194], а также азотной, серной кислот и сульфата калия. В последнем случае разложение заканчивают сплавлением с дисульфатом [5.1195]. Небольшие количества оксидов азота, оставшиеся в растворе после окисления материала, могут мешать фотометрическому определению, поэтому их необходимо полностью удалять [5.1161, 5.1196]. [c.215]

Пептапласт можно использовать в качестве конструкционного материала для аппаратуры, подвергающейся воздействию растворов иодида и бромида калия различных концентраций с примесью иода при температуре до 70 С [45, с. 18], кислорода и щелочи при температуре 100 °С [45, с. 27], морской воды [45, с. 68], молочной кислоты и технологических сред производства различных пищевых продуктов [45, с. 21 194] и витаминов [45, с. 82]. В последних случаях важную роль играет биологическая нейтральность пентапласта в сочетании с определенными типами термостабилизаторов [45, с. 56 194]. [c.62]

Наиболее распространенными на поверхности Земли элементами являются кислород, кремний, алюминий и железо (соответственно 46,5, 28, 8 и 5%)- На долю кальция, натрия, калия, магния, титана и водорода приходится лишь несколько процентов (на долю водорода — 0,2%) (Pauling, 1947). Теоретически в состав живой материи могли бы входить 88 элементов (если исключить весьма редкие и искусственные). Однако в живых организмах найдено всего 68 из них. Основными элементами живой природы являются водород, углерод, азот и кислород они составляют 96—99% веса мягких тканей. Обычно в живых организмах содержатся элементы с низким атомным весом исключение составляет йод (атомный вес 127). По относительному содержанию (распространенности) элементов биологические ткани более сходны с космосом, чем с литосферой. Связано это с высоким содержанием воды в живых организмах. Водород входит в состав почти всех биохимических соединений, а углерод уникален в том отношении, что он образует большее число таких соединений, чем все прочие элементы вместе взятые (Asimov, 1962 Needham, 1965). [c.91]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология