Типы биологических образцов

Коррозионные данные, полученные при экспозиции образцов на больших океанских глубинах, должны служить критерием при оценке надежности результатов лабораторных экспериментов. Это справедливо не только в отношении экспериментов по электрохимической коррозии, но и в отношении исследования биологических факторов в коррозии. В лабораторных исследованиях глубоководной коррозии следует воспроизводить параметры, характерные для больших океанских глубин (высокое гидростатическое давление, содержание растворенных газов, низкая температура, растворенные вещества, тип донных отложений и биологический состав). Для биологической коррозии наибольшее значение имеют гидростатическое давление н низкая температура. [c.440]

Типы биологических образцов [c.268]

В настоящее время установлено, что пучки высокоэнергетических электронов, используемые в электронной микроскопии и микроанализе, могут разрушающе действовать на образец. Такое повреждение пучком обычно более значительно в органических и биологических образцах 180], и важно знать о таких вызываемых пучком изменениях, как большие разрушения образца, потери органического материала и испарение летучих элементов. Хотя в настоящее время возможно проводить анализ при низких токах пучка (0,1—5 нА), при этом все же имеют место значительные потери материала. Естественно, количество теряемого из образца материала зависит как от образца, так и от тока пучка, но обычно оно составляет около 30% [181], хотя в литературе имеются данные о потерях, составляющих почти 90% [182]. Потеря массы органического материала является серьезной проблемой, особенно в случаях, когда количественные измерения выполняются с использованием спектра непрерывного излучения (см. разд. 7.7.6) и все зависит от точной меры локальной массы в процессе анализа. Потери массы органического материала в любых типах электронно-зондовых приборов можно уменьшить за счет охлаждения образца. В работе [183] и позднее в, [181 и 180] было показано, что потери массы значительно уменьшаются, если образец находится прн низких температурах. В этом заключается другое преимущество использования замороженных в гидратированном состоянии образцов, хотя последние исследования показали, что даже охлаждение образца до температур жидкого азота недостаточно для полного исключения потерь массы. [c.71]

Высокоспецифичные детекторы незаменимы в определениях следовых количеств соединений, содержащих определенные элементы или группировки. Особое значение они приобрели в анализах пестицидов, лекарственных препаратов, нефтехимических продуктов и биологических образцов, содержащих галогены, фосфор, серу или азот. Большим преимуществом таких детекторов является то, что они требуют лишь минимальной очистки (удаления мешающих примесей) детектируемых образцов, поскольку такой детектор попросту слеп по отношению к соединениям другого типа. Между тем в большинстве анализов очистка поглощает много труда и времени. [c.431]

Применение метода внутреннего стандарта к биологическим образцам требует, однако, учета дополнительных факторов, связанных с особенностями АРП. В отличие от традиционного метода внутреннего стандарта (когда в хроматограф вводится непосредственно раствор со стандартом), при использовании АРП необходимо учитывать не только чувствительность хроматографического детектора к этиловому спирту и стандарту, но и тип анализируемого объекта — цельная кровь, плазма, сыворотка [46] (различие коэффициентов распределения, см. раздел 1.4). Если содержание стандарта поддерживать постоянным и строго воспроизводить условия подготовки пробы к анализу (количество добавляемых реагентов, температура и соотношение объемов фаз в сосуде для установления равновесия), то абсолютное значение концентрации стандарта может не [c.127]

Биофизика мембран. Биологические мембраны — это тонкие (- 80 А) листки из липидов и белков. Они играют ключевую роль во многих жизненных процессах, но об их структуре известно мало. Большая часть физических экспериментов (например, ЯМР) не может быть осуществлена на отдельной мембране, поскольку она содержит слишком мало вещества. Однако можно создать модельную систему из липидов и воды или даже из липида, белка и воды [58], имеющую ламеллярную (слоистую) структуру. Предполагается, что каждый отдельный слой будет в некотором смысле аналогом мембраны. Можно использовать достаточно большие образцы объемной фазы этого типа, чтобы проводить точные физические исследования ). [c.34]

Образцы из камня и минералов перед облучением размельчают в агатовой шаровой мельнице [10]. Образцы из тканей и биологические образцы высушивают на воздухе. После этого образцы заключают в полиэтиленовую упаковку медицинского типа [11] или обертывают в полиэтиленовый лист. Б некоторых случаях эти упаковки даже из самого чистого материала для контейнеров, который нам удавалось достать, оказывались настолько загрязненными после облучения, что образец приходилось извлекать перед обработкой. В случае биологических тканей количество загрязнений от контейнера было пренебрежимо малым и упаковку можно было обрабатывать целиком. [c.154]

Ценность электронного микроскопа заключается в его способности разрешать объекты, которые не разрешаются оптическим микроскопом в видимом или ультрафиолетовом свете. Короткая длина волны электронов, которая уменьшается в прямой зависимости от подаваемого ускоряющего напряжения, позволяет разрешать, т. е. различать как отдельные объекты, отстоящие друг от друга всего на 2А (0,2 нм или 0,0002 мкм) или даже меньше, в то время как предел разрешения световой оптики лежит вблизи 0,2 мкм (он зависит от длины волны используемого света). На практике самые лучшие современные электронные микроскопы просвечивающего типа в самых оптимальных условиях работы (т. е. при при соответствующих вакууме, центрировке линз, ускоряющем напряжении, чистоте прибора, физической стабильности и качестве приготовленного образца) дают разрешение в диапазоне 0,5—1,0 нм. Но биологические образцы имеют вполне определенную толщину реально предел разрешения для срезов достигает около 2,5 нм, а для негативно контрастированных препаратов — около 1,0 нм. Чтобы улучшить разрешение, нужны мастерство и хорошо налаженный прибор. Образцы и поддерживающие пленки-подложки с большой толщиной увели- [c.92]

При поступлении новых образцов, в документации необходимо указать дату начала формирования данного локального реестра (записи) и присвоить индекс данному происшествию. Контейнер для сбора первичных образцов должен быть маркирован водостойкими чернилами, с уникальным идентификатором, то есть видом происшествия, номером образца, типом образца, даты отбора биологического образца и инициалами сборщика. [c.36]

I. Все биологические образцы должны быть четко маркированы с указанием источника происхождения, типа ткани, и даты сбора. Ярлыки должны быть помещены внутрь тары для хранения. Вторая, такая же запись, должна быть сделана и храниться отдельно. Неправильно маркированный биологический материал может быть так же бесполезен, как и немаркированный образец, поэтому на данном этапе работы необходима очень большая тщательность и осторожность. Биологические образцы должны в точности соот- [c.37]

До последнего времени микростроение поверхности минералов и пород проводили в просвечивающих электронных микроскопах с помощью реплик и ультратонких срезов [1—6]. Методика подготовки образцов к исследованию трудоемка и длительна [5,6]. Наличие большого количества операций в какой-то степени искажает истинное строение изучаемой поверхности минерала и требует многократной проверки и повторения. Кроме того, часто проявляется разрушающее объект влияние вакуума и вредное действие потока электронов [9]. Недостатком указанных методов является и то обстоятельство, что при работе с использованием максимального разрешения оптический и электронный микроскопы имеют малую глубину фокуса и поэтому микрофотографии дают изображение объекта в двух измерениях [10]. Применение сканирующего электронного микроскопа Л5М-2 (Япония) позволяет лучше изучить поверхностную структуру и получить изображение объекта в трех измерениях с большой глубиной резкости. Для проведения исследований на сканирующем микроскопе можно быстро и просто приготовить образцы к исследованию, наблюдать массивные объекты в виде монокристаллов или осадки любой дисперсности. При этом можно увидеть общую картину, ультраструктуру поверхности, ее пористость и агрегацию. Анализирующий электронный луч, сканирующий по объекту, имеет очень малую мощность, поэтому взаимодействие его с объектом не приводит к нагреву и разрушению даже весьма чувствительных биологических объектов. С помощью сканирующего электронного микроскопа впервые удалось различить типы красных кровяных клеток, которые трудно идентифицируются с помощью оптической микроскопии [10]. [c.27]

Как следует из таблицы 1, количество материала, требуемого для анализа, может варьировать в зависимости от типа анализа и вида ткани. При использовании метода ферментативной амплификации ДНК вполне достаточно миллиграмма образца. Действие ДНК-аз играет определяющую роль в деградации ДНК биологических образцов. Хранение биоматериала при низкой температуре значительно снижает ферментативную деградацию ДНК. [c.41]

В последние годы предложен новый тип создания ЯМР-образцов, позволяющий изучать структуры на надмолекулярном уровне и непосредственно из спектральных данных получать реальное объемное изображение объекта — ЯМР-интроскопия, которая находит все более широкое применение при изучении строения и процессов функционирования биологических объектов, для диагностики заболеваний и является перспективной для неразрушающего контроля качества [c.733]

При любом детальном исследовании биологического материала следует сравнивать информацию, получаемую с помощью широкого набора приборов. Во многих случаях полезно начинать исследования с РЭМ, поскольку его диап азон увеличений включает в себя область увеличений от получаемых с хорошей лупой до получаемых в просвечивающем электронном микроскопе высокого разрешения. В РЭМ также мы получаем привычное нам изображение. Сравнительные исследования относительно просто выполнять, подготавливая образец либо для просвечивающего электронного микроскопа, либо для оптического микроскопа после изучения образца в РЭМ. Пример сравнительного исследования приведен на рис. 11.3, а дальнейшие подробности можно найти в статьях [316—319] и в книге [320]. В работе [321] подробно описываются методы, которые могут быть использованы для сравнения всех трех типов изображений с гистохимическими данными, а в статье [322] дается подробное описание сравнительных исследований в световом микроскопе методом авторадиографии и в РЭМ. [c.220]

Установка этого типа может применяться для облучения электронами с энергией 0,3 Мэе пленок и покрытий из полимерных материалов толщиной до 0,5 мм при мощности дозы в несколько миллионов рад в секунду. Установка компактна и может быть размещена в обычных помещениях. Кроме того, она проста в эксплуатации. На установке можно облучать не только экспериментальные образцы, используемые для научных исследований, но также изделия, выпускаемые промышленностью, в частности провода с полимерной изоляцией, трубки и т. п. Вследствие того, что эффективность образования рентгеновских лучей при взаимодействии электронов, обладающих энергией 0,3 Мэе, с полимерами, алюминием и аналогичными материалами очень мала, биологическая защита обеспечивается при помощи простейших средств. [c.30]

Отбор проб многофазных гетерогенных систем типа суспензий, эмульсий (латексы, биологические системы и др.) следует проводить после тщательного перемешивания образца, и размер пробы при этом должен превышать не менее чем на порядок размер распределенных в образце частиц. [c.110]

Реагенты с относительно высокой удельной радиоактивностью широко используют в определениях стероидов и стеринов, содержащихся в экстрактах биологических жидкостей, путем ацетилирования гидроксильных групп этих соединений. Концентрации этих соединений в таких экстрактах очень низки, так что в пробе может содержаться менее 1 мкг анализируемого соединения. В анализируемых объектах присутствуют первичные, вторичные и третичные гидроксильные группы, а некоторые стероиды (например, гидрокортизон) могут содержать гидроксильные группы всех трех типов. Кроме ожидаемых трудностей из-за различий в реакционной способности, обусловленных этими тремя типами гидроксильных групп, анализ таких соединений затрудняют и значительные различия в скорости ацетилирования вторичных гидроксильных групп, которая зависит от положения такой группы в молекуле [89]. Поскольку в анализируемых образцах содержатся лишь микро- или полумикроколичества соединений с гидроксильными группами, для их определения лучше всего подходят методы с использованием двух радиоактивных изотопов. Один — сравнительный изотоп — служит для определения количества производного, выделенного с помощью хроматографии, а второй — индикаторный изотоп — позволяет установить выход определяемого соединения, степень превращения и чистоту продукта. Сравнительный изотоп всегда находится в ангидриде, которым обрабатывают [c.71]

В хороших масспектрометрах рассмотренного типа можно довести точность до 1% и лучше от определяемого отношения, если абсолютное содержание определяемого изотопа не ниже 1%. Эта точность не всегда удовлетворяет. Мы дальше увидим, что для решения важных геохимических задач нужно уметь находить меньшие изменения изотопного состава. В биологических исследованиях эта точность также недостаточна, если вводимый в организм меченый атом слишком сильно в нем разбавляется тем же элементом с нормальным изотопным составом. На стр. 63 будет упомянут дифференциальный масспектрометр, в котором непосредственно сравнивают пики двух образцов, что позволяет измерять разницу в 0,02% в их изотопном составе. [c.38]

Как указывалось ранее, биолог должен выбрать компромисс между свойствами образца и условиями, в которых должен проводиться анализ. Оказывается, компромисс за счет рабочих характеристик приборов дает малый выигрыш, и это означает, что мы должны внимательно рассматривать способы препарирования биологического материала. Большая часть разработанных процедур основывается на методах, используемых в просве-чиваюш,ей электронной микроскопии. Это неоптимальное наследие, так как просвечивающая электронная микроскопия полагается на адекватную сохранность макромолекул, в то время как в рентгеновском микроанализаторе определяются элементы и он, таким образом, лучше всего подходит для анализа неорганических материалов. Тщательные исследования, проведенные в работе [184], показывают, что на всех этапах стандартных гистологических методов имеют место огромная потеря и перераспределение почти всех элементов. Потеря вещества также далеко неоднородна, например, большое количество калия удаляется, а количество удаляемого фосфора различно и зависит от строения ткани. Концентрации элементов, которые могут быть введены в ткань в процессе препарирования, должны быть одинаковы. Методы препарирования при рассмотрении делятся на две группы (проводимые при обычной температуре и проводимые при низкой температуре) и представлены в поряде проведения процедуры препарирования от лживого объекта до образца, исследуемого внутри рентгеновского микроанализатора. Мы кратко обсудим высокотемпературный метод препарирования — микроозоление . Для достижения необходимого представления о состоянии и перспективе методов препарирования мы в первую очередь рассмотрим виды аналитических исследований в применении к биологическим системам, типы исследуемых образцов, а также стратегию и критерии препарирования. [c.267]

Инкапсуляция. Если из образца будут изготавливаться срезы или изломы, то может оказаться необходимой инкапсуляция в инертном веществе, растворимом в физиологически совместимой жидкости. Инкапсуляция накладывает дополнительные механические напряже11ия на образец при замораживании. Эта процедура особенно важна для небольших мягких биологических образцов и для растительного материала с его толстыми целлюлозными стенками. Типы материалов, которые могут быть использованы, включают агар, сыворотку бычьего альбумина, декстран, поливинилпирролидон, оксиэтилированный крахмал в концентрации 10—30%. Наиболее важной является проверка того, какое физиологическое воздействие эти вещества могут оказать на функциональную активность исследуемой ткани. [c.288]

Результаты длительных и краткосрочных коррозионных испытаний конструкционной углеродистой стали в естественных водных средах свидетельствуют о существенном влиянии морских организмов на скорости коррозии сплавов на основе железа в морской воде. В начальный период экспозиции, пока обрастание макроорганизмами не привело к образованию сплошного покрытия, наблюдались очень высокие скорости коррозии (до 400 мкм/год). Продолжительность этого начального периода, тип и интенсивность обрастания, а также коррозионные потери в течение первого года экспозиции в разных местах могут значительно отличаться. К концу первых 1—1,5 лег экспозиции большинство исследованных образцов было покрыто толстым слоем морских организмов, участвующих в обрастании. Хотя состав этих естественных покрытий сильно изменялся в зависимости от географического положения места испытаний, все они оказывали существенное защитное влияние на стальные пластины. Защитные свойства естественных покрытий, образующихся при обрастании, значительно уменьшаются, когда они становятся достаточно толстыми (биологически активными) и препятствуют проникновению кислорода к поверхности металла. В этих условиях процесс коррозии контролируется сульфатвосстанавливающими бактериями, активными в анаэробной среде на поверхности металла, сохраняющейся благодаря самозалечивающемуся покрытию, возникшему при обрастании. Скорость коррозии стали приобретает стационарное значение, причем для различных мест эти значения очень близки. [c.453]

Проблема определения большого числа элементов с помощью фотоэлектрических детекторов еще не получила удовлетворительного решения, особенно при исследовании неизвестных образцов. Это означает, что проведение одновременного многоэлементного анализа с помощью лазерного испарения обычно позволяет определить сравнительно мало элементов — в зависимости от типа имеющегося спектрометра, предусмотренного для данного прибора. Наглядные примеры, иллюстрирующие современное состояние в данной проблеме, приведены Мериком и др. [46] для анализа цементных руд и Трейтлом и др. [35] для биологических образцов. [c.107]

В настоящее время наиболее распространенным прибором для исследования деформационных свойств материалов при растяжении является испытательная машина типа Йнстрон . Образцы, которые можно изучать с помощью этой машины, должны иметь площадь поперечного сечения не меньше 10 м , а длина базы должна быть не менее 0,01 м. Типичное значение скорости растяжения равно. 100% в минуту. Этот прибор также позволяет измерять релаксацию напряжений во времени при фиксированном удлинении. При исследовании механических свойств различных материалов также определяют их динамические характеристики, в частности максимумы механических потерь [4]. Проводились исследования также биологических волокон [5]. [c.32]

Создание магнитометров со сверхпроводящими квантовыми интерфе-рометрическими датчиками (сквидами) существенно расширило возможности техники измерения магнитного поля. Чувствительность сквид-магнитометров на несколько порядков превосходит чувствительность магнитометрических приборов других типов. На основе этих датчиков были сконструированы магнитометры для измерения магнитных моментов небольших образцов, например стандартных цилиндров из породы при палеомагнитных исследованиях или биологических образцов с малым содержанием магнетита, представляющих интерес с точки зрения биомагнетизма. Измеряя магнитный момент образца без приложения внешнего магнитного поля, мы получаем остаточную намагниченность при наличии же внешнего поля можно определить магнитную восприимчивость образца. С помощью сквид-градиентомет-ров были сняты магнитные кардио- и энцефалограммы, причем для этого нужно было зарегистрировать индукцию поля порядка нескольких фемтотесла (микрогамм) [c.147]

Трудности третьего типа возникают тогда, когда меченое соединение биологически не идентично немеченому, т. е. когда имеет 1есто так называемый изотопный эффект . К счастью, биологический изотопный эффект имеет ту же самую основу и подчинЯ ется тем же правилам, что и эффекты химических систем поэтому его учет не представляет больших сложностей для химика. В частности, изотопные эффекты обычно проявляются только у изотопов водорода. Следует иметь в виду, что радиоактивные изотопы обычно занимают только небольшую часть меченых полох<ений . Так, в образце [ 1- С,2-ЗН] ацетата большая часть молекул не содержит ни одного изотопа, практически нет молекул, имеющих оба изотопа, и совершенно отсутствуют соединения, содержащие более одного атома трития. Так, если образец превращается химическим или биологическим путем в СНС СОК, не следует ожидать, что 2/3 всего количества трития будет потеряно наиболее вероятный результат будет зависеть от тонких деталей механизмов превращений. Ситуация складывается совершенно иначе, если все возможные положения действительно заняты атомами изотопа, как это обычно бывает в случае тяжелых изотопов, например [2-2Нз] ацетата. Так, для определения числа атомов водорода, переносимых вместе с атомом углерода в процессе С-метилирования, обычно используют [Ме-2Нз] метионин (при этом основным методом анализа служит масс-спектрометрия). Стереоспецифическое введение метки, например частичное включение в прохираль-ную СНг-группу, широко применяется для изучения стереохимии процессов биосинтеза. В любом случае, однако, следует помнить, что скорость реакций меченых соединений может отличаться от скорости реакций немеченых аналогов, и интерпретировать результаты с необходимой осторох<ностью в общем случае предпочтительным является эксперимент, дающий ответ типа да — нет, а не тот, который можно интерпретировать только на основе неопределенных в количественном отношении изотопных эффектов. [c.469]

Практически во всех методиках хемилюминесцентного иммуноанализа используются производные люминола или акридина. В соответствующих условиях соединения указанных двух типов окисляются с образованием возбужденных молекул и последующим излучением света. Предполагаемые реакции приведены на рис. 13.1. В обоих случаях квантовый выход реактщи может достигать 10 - 15%, хотя в общем случае он зависит от природы реакции. Следует отметить, что в реакциях с люминолом необходимы катализатор, которым может быть простое вещество, например катион переходного металла, или сложная макромолекула, например микропёроксидаза. Каталитический характер реакции усложняет выполнение анализа, так как в биологических образцах могут содержаться различные соединения, способные влиять на люминесцентную реакцию. Поэтому при использовании систем с люминолом или родственными соединениями люминесцентную реакцию можно проводить только после полного удаления всех мешающих определению веществ, образующихся в ходе иммуноанализа. Такие ограничения нехарактерны для некаталитических систем, в которых применяются только окислительный агент и щелбчная среда. [c.179]

При обсуждении методов количественного анализа удобно рассмотреть по отдельности различные типы образцов. Массивными образцами являются такие, толщина которых значительно превышает глубину проникновения падающих электронов толстые среды на массивных подложках — это такие образцы, толщина которых немного меньше глубины проникновения электронов, а тонкие образцы на очень тонких подложках — это образцы, толщина которых много меньше глубины проникновения падающих электронов. К этим трем категориям можно добавить еще два рода образцов, требующих краткого рассмотрения толстые образцы на очень тонких подложках и микрокапеаьки. Следует, однако, напомнить, что в основном рентгеновский микроанализ биологических материалов производится на срезах, монтируемых на тонких подложках. [c.70]

Радиохимические методы имеют чрезвычайно высокую чувствительность и благодаря этому особенно ценны при определениях меркаптогрупп в очень низких концентрациях в образцах биологического происхождения. Особый интерес представляет определение структур типа тиоспиртов в различных белках, в которых эти структуры присутствуют в форме связанной аминокислоты, ь-ци-стеина (ь-2-амино-3-меркаптопропановая кислота). Для проведения анализа низкомолекулярных тиоспиртов можно модифицировать некоторые широко распространенные методы определения меркаптогрупп в белках. В определении макроколичеств меркаптанов можно использовать радиометрическое титрование и прямое изотопное разбавление. Для анализа некоторых ароматических меркаптанов применим, по-видимому, и метод, основанный на изотопном обмене. [c.353]

Неоднородность волокон целлюлозы, проявляющаяся при ацетилировании, была показана также и в других опытах [42, 43]. Многочисленные эксперименты [44] с различными образцами древесных целлюлоз показали, что метод определения доступности по кривым растворимости продуктов гетерогенного ацетилирования целлюлоз позволяет надежно дифференцировать их в отношении доступности. При сравнении кривых растворимости опытной целлюлозы и стандартной, или эталонной , зарекомендовавшей себя на производстве, этим методом можно оценить пригодность данной целлюлозы для химической переработки ее путем ацетилирования. Отличительной особенностью большинства природных целлюлоз является то, что основная масса целлюлозы реагирует и растворяется сравнительно быстро и однородно, из чего можно заключить, что основу строения целлюлозы составляют однородные реакционноспособные элементы. Плохая же реакционная способность целлюлозы, наблюдаемая в некоторых случаях, связана прежде всего с морфологическими признаками ее волокон биологическим типом клеток, из которых получена целлюлоза, их ультратекстурой, видом пор, степенью их открытости , наличием остатков инкрустирующих и адкрустирующих веществ и т. п. Наиболее однородной и химически чистой является хлопковая целлюлоза, хотя и она обладает, как было сказано, некоторой морфологической неоднородностью своих волокон. В случае же древесных целлюлоз многообразие морфологически различных типов клеток, трудности равномерной делигнификации и др. факторы приводят к значительным колебаниям наблюдаемой на практике реакционной способности . Однако этим термином часто подменяется понятие доступности целлюлозы или даже более широкое — пригодности целлюлозы для получения растворимых продуктов ее химических реакций. Последние же факторы определяются прежде всего, как мы видим, морфологическим типом волокон целлюлозы и ее однородностью. Поэтому первым требованием к качеству целлюлозы является ее наибольшая однородность, чего можно достичь в основном только в процессе ее получения и очистки. Что же касается собственно реакционной способности целлюлозы, то она достигается при разрушении или ослаблении связей в ассоциатах пачечных молекул путем воздействия на ее клапанную структуру. В некоторых случаях эта реакционная способность достигается автоматически в результате воздействия реакционной среды и самой реакции, в других случаях приходится прибегать к специальной предварительной активации. [c.43]

Метод определения ртути в биологических объектах основан на сжигании пробы в токе кислорода, поглощении выделившейся ртути раствором иода, восстановлении ртути дигидроксималеиновой кислотой (ДМК) и хлоридом олова и исследовании холодного пара методом НААА [332]. При этом используют способность ДМК окисляться в присутствии хлорида ртути с восстановлением ртути до элементного состояния. Устройство для сжигания образца представляет собой кварцевую трубку с широкой частью (диаметром 1,7 см, длиной 20 см) и узкой частью (диаметром 0,6 см, длиной 40 см). Конец трубки изогнут вниз и заканчивается ситчатым дном. Трубка подогревается двумя микропечами типа СУОЛ-015 длиной 6 и 20 см, В широкую часть трубки помещают кварцевую лодочку размером 0,7 X13 см с образцом. Узкая часть трубки служит для дополнительного сжигания твер дых частиц, выделившихся при нагревании образца. К навеске пробы 50— 500 мг добавляют 500 мг оксида магния и 50 мг оксида ванадия (V) и смесь тщательно растирают в агатовой ступке. Оксид магния предварительно прокаливают 1 ч при 1100°С для удаления следов ртути. Смесь переносят в лодочку, затем ее устанавливают в широкой части трубки, которую помещают в электропечи, и закрывают пробкой с поглотительным раствором (2,5 мл 0,05 н. раствора иода). Температура второй печи 800 °С, температура первой печи сначала 100 °С, затем в течение 5—6 мин ее повышают до 800 °С, Расход кислорода 4 мл/с. [c.236]

При помощи ионного микроскопа (ИМ) Попп и Уолчер [1] исследовали изменения во времени ионного изображения образца биологической ткани, укреиленного на аноде из инвара (36% N1, 64 Ге). При использованных токах накала (температурах) они получали три типа изображепия в разные интервалы времени — так называемые первичное, промежуточное и конечное изображения. Беглое исследование конечного изображения показывает, что оно является негативным по отношению к первичному ( обращение изображения ), Масс-сиектрометрическое исследование изменений со временем ионной эмиссии из таких образцов ткани было проделано Гофманом [2]. Он использовал термоионный источник с анодом из вольфрама, имеющий конструкцию, отличную от применяемой в ИМ. Для всех исследованных температур он обнаружил, что сначала эмиссия ионов калия значительно превышает эмиссию ионов натрия, а затем, с уменьшением эмиссии К (при постоянном нагреве) начинает возрастать [c.130]

Таким образом, в разных по типу, а очевидно и по культурному состоянию, почвах бактерии кишечной грунпы могут суш,ествовать не одииаковый период времени. Это объясняется как химическими, так и биологическими особенностями того или иного образца почвы. [c.384]

Торсионные весы, например весы марки ШН (ПНР) имеют ограниченное применение — в основном для взвешивания биологических материалов и образцов почв (навески 10 мг). Весами торсионного типа с успехом можно пользоваться в ультрамикрообласти. Описание таких ультрамикровесов приведено в монографиях [68—70]. [c.15]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология