Разработка метода кислотного гидролиза

РАЗРАБОТКА МЕТОДА КИСЛОТНОГО ГИДРОЛИЗА [c.313]

По-видимому, универсальный (гипотетический) метод определения конфигурации гликозидных связей в полисахаридах можно представить себе следующим образом. Это должен быть такой метод расщепления гликозидных связей, который приводил бы количественно к производным моносахаридов подобно кислотному гидролизу. Но с той, однако, разницей, что структура этих производных должна зависеть от конфигурации расщепляемой гликозидной связи исходного остатка. Тогда мы имели бы метод мономерного анализа, который одновременно давал бы информацию и о природе каждого мономерного звена, и о конфигурации его гликозидной связи. К сожалению, ничем похожим на такое идеальное решение углеводная химия пока не располагает (хотя препятствий принципиального характера к разработке подобного метода не видно). Наилучшее доступное сейчас приближение к идеалу — это окисление ацетатов полисахаридов хромовым ангидридом в уксусной кислоте. Суть этого метода состоит в следующем. [c.96]

Для анализа, и контроля производства ПАВ используют физикохимические и химические методы, дозволяющие определить как содержание целевых групп соединений, так и содержание побочных продуктов, непрореагировавших соединений, минеральных солей, воды и т. д. Наиболее универсальными являются хроматографические методы, они широко и эффективно применяются для разделения и анализа всех классов ПАВ. Наряду с методами жидкостной колоночной, тонкослойной и газо-жидкостной хроматографии, используемыми для анализа и контроля сырья и полупродуктов для ПАВ (см. часть I), для анализа анионоактивных, катионоактивных и не-ионогенных ПАВ, кроме того, нашли применение методы кислотной и щелочной пиролизной хроматографии. Из других менее универсальных современных методов важную роль в анализе и контроле играют метод двухфазного титрования (определение содержания анионоактивных ПАВ) и метод ЯМР (анализ неионогенных ПАВ). Методические разработки последних лет позволяют также применять. (в зависимости от конкретных условий и целей) такие известные классические методы разделения и анализа, как экстракция, гидролиз, ИК-спектроскопия,спектрофотометрия и т. д. [c.178]

Все это побудило к поиску и разработке более совершенных методов предварительной обработки лигноцеллюлозного сырья. Исследования ряда авторов (Ветров и др., 1984) показали, что щелочной или кислотный гидролиз целлюлозосодержащих материалов может быть заменен радиационной обработкой. Эффективность и универсальность действия ионизирующих излучений делают перспективным применение радиолиза для решения проблемы получения кормовых продуктов из отходов (Ветров и др., 1984). Ионизирующее излучение способно разрушать структуру древесины, соломы, в результате чего их составные части становятся водно-растворимыми и доступными для микроорганизмов пищеварительного тракта животных (Скворцов, 1986). Например, облучение сосновых опилок (2,5 МГр) повышает их переваримость с 6 до 45%, обработка древесины осины — с 53 до 78%. [c.100]

Ферментативный способ получения моносахаридов во многом лишен недостатков, присущих способу, основанному на кислотном гидролизе, поскольку осуществляется в гораздо более мягких условиях по температуре, давлению и кислотности среды Это требует значительно меньших расходов энергии, предотвращает деструкцию сахаров и образование трудно утилизируемых отходов, снижающих биологическую ценность гидролизатов Наконец, следует иметь в виду возможность решения экологических проблем, связанных с необходимостью создания биотехнологических методов утилизации отходов и вторичных продуктов промышленной и сельскохозяйственной переработки растительного сырья В данной работе рассмотрены теоретические аспекты ферментативной деструкции природных полисахаридов — компонентов растительного сырья Интерес к исследованию этой проблемы обусловлен необходимостью разработки научных основ тех направлений физико-химической энзимологии и ферментативной кинетики, которые связаны с функционированием полифермент-ных систем, особенно с ферментативными реакциями со сложной стехиометрией (когда субстрат является полимером, а промежуточные и конечные продукты — олиго- или мономерами) [c.4]

В данном сообщении приведены результаты исследований пектиновых веществ в лаборатории биохимии растений Института биологии Молдавского филиала АН СССР, начатые в связи с разработкой отечественного производства пектина. Первым этапом работы была разработка метода выделения пектина из плодов кормового арбуза itrullus olo ynthoides, в котором мы давно установили высокое содержание желирующего пектина. Арбузный пектин, полученный кислотным гидролизом с последующим осаждением хлористым кальцием, по основным показателям сходен с отечественным подсолнечным и свекловичным, содержит 84—85% га-лактуроновой кислоты, 7,1% метоксильных групп, обладает высокой студнеобразующей способностью, в 2,5 раза превосходящей таковую свекловичного пектина [10]. [c.256]

Остающаяся нерастворимая в воде часть крахмала называется а-милопектином. После разработки методов разделения крахмала на фракции (извлечение амилозы теплой водой, избирательное осаждение бутанолом и т. п.) были получены чистые препараты компонентов крахмала и выяснено их химическое строение. В основе строения молекул амилозы и амилопектина лежит глюкоза, что доказывается образованием из крахмала при кислотном гидролизе только одного сахара — глюкозы. Различие их заключается, в том, что амилоза имеет в основном чисто цепочечное строение, а амилопектин—ветвисто-цепочечное строение. [c.87]

При разработке колориметрического метода определения исследуемых пестицидов в продуктах растительного происхождения ш биосредах используют количественное выделение сероуглерода при кислотном гидролизе соединений на основе дитиокарбаматов [1]. При этом выбирают оптимальные условия, обеспечивающие полноту гидролиза каждого из указанных пестицидов. Для определения выделившегося сероуглерода используют его реакцию со вторичными аминами и солями меди. Сопутствующие сернистый газ или сульфиды поглощают TOj% -ным водным раствором ацетата свинца, а сероуглерод — 1,5%-ным спиртовым раствором диэтил-амина. При взаимодействии образовавшегося продукта реакции с ацетатом меди образуется диэтилдитиокарбамат меди, окрашенный в желто-бурый цвет (Ятах = 430 нм). Установлено, что для полного гидролиза поликарбацина необходима более концентрированная серная кислота (7N), чем для цирама, цинвба и других этилен-бис-дитиокарбаматов (5Л . Как показали наши исследования, количество выделившегося при этом сероуглерода составляет 95% от теоретически рассчитанного по стехиометрическому уравнению-Чувствительность определения 20мкг в пробе (500—200 г), что составляет 0,04—0,1 мг/кг. [c.21]

Для деградации нуклеиновых кислот был описан ряд других методов (см.Grossman, Moldave, 1967), в частности кислотный гидролиз и гидразинолиз ДНК для получения соответственно пиримидиновых и пуриновых олигонуклеотидов. Применение этих методов для структурного анализа ДНК требует разработки обших подходов к определению полных последовательностей. [c.47]

Для триптофана достаточно простого кислотного гидролиза [28], Льюис и Олкотт [46] предложили метод селективного удаления глютаминовой кислоты из белковых гидролизатов путем ее превращения в пирролидонкарбоновую кислоту с последующим экстрагированием этилаце-датом. Дальнейшая разработка аналогичных методов гселективного удаления других аминокислот из белко- вьщ гидролизатов должна привести к ценным результатам. По уехнике проведения методы анализа аминокислот очень похожи друг на друга, а также на методы анализа витаминов. [c.193]

Успехи в разработке методов изучения белков, в особенности хроматографического метода, позволили Сэнгеру установить строение инсулина. Этому способствовала также обнаруженная им реакция, о которой говорилось выше динитрофе-нильная группа (ДНФ) способна присоединяться к свободным аминогруппам с образованием желтого соединения. ДНФ-группа остается присоединенной к аминокислотному остатку даже после гидролиза, который проводят с целью расш епления пептидов это дает возможность идентифицировать концевой остаток аминокислоты. Применив ДНФ-ме-тод, Сэнгер первым показал, что молекула инсулина состоит из двух цепочек, которые удерживаются одна около другой дисульфидными (3 — 8) связями остатков цистина. Эти связи можно разрушить мягким окислением. Таким способом были получены обе ненарушенные цепочки было доказано, что в одной из них содержится 21 аминокислота, а в другой — 30. Каждая цепочка была подвергнута кислотному гидролизу с образованием небольших фрагментов, аминокислоты которых были определены хроматографичрски. Концевые аминокислоты каждого фрагмента были идентифицированы ДНФ-методом. Постепенно расщепляя цепочки на множество мелких пептидов и определяя содержащиеся в них аминокислоты и последовательность их расположения, Сэнгеру ну- [c.319]

Дегидроаминокислоты широко используют в синтезе устойчивых к ферментативному расщеплению пептидов [137]. Их асимметрическое гидрирование — один из наиболее перспективных способов синтеза естественных и модифицированных аминокислот. Предложено также использование дегидроаминокислот в твердофазном синтезе пептидамидов, основанное на применении дегидро-аланина для непосредственного связывания с полимером (с кислотным гидролизом полученного продукта в соответствующий пептидамид и кетокислоту на последней стадии синтеза). Поэтому исследователи большое внимание уделяют разработке удобных методов синтеза дегидроаминокислот и их производных. [c.66]

Метильная енольно-эфирная группа легко отщепляется при кислотном или щелочном гидролизе с образованием колхицеина. Изучение этой реакции привело Цейзеля к разработке носящего его имя метода определения метоксильных групп (см. том I 8.37). Трополоновое кольцо С легко перегруппировывается в ароматическое. Колхицин претерпевает перегруппировку типа бензиловой с образованием аллоколхи-цеина, но колхицеин перегруппировывается только в присутствии окислителей так, при действии щелочной перекиси водорода получается Ы-ацетилколхинол. [c.496]

РАЗРАБОТКА И ОПТИМИЗАЦИЯ ЩЕЛОЧНОГО И КИСЛОТНОГО МЕТОДОВ ГИДРОЛИЗА КЕРАТИНСОДЕРЖАЩЕГО СЫРЬЯ [c.36]

Разработка и оптимизация щелочного и кислотного методов гидролиза кератинсодержащего сырья............................36 [c.183]

Получение медно-аммиачного лигнина. Медно-аммиачный лигнин (лигнин Фрейденберга) получают попеременной обработкой древесной муки кипящим 1...2%-м раствором Нз804 и холодным медноаммиачным реактивом - раствором [Си(МНз)4](ОН)2. Кислота катализирует гидролиз связей лигнина с гемицеллюлозами, а медно-аммиачный реактив растворяет полисахариды. В остатке получается медно-аммиачный лигнин светлого цвета, нерастворимый вследствие сохранения сетчатой структуры природного лигнина. Выход препарата около 80% по отношению к лигнину Класона в случае хвойной древесины и 55% - в случае лиственной. Кислотная обработка вызывает реакции конденсации, но изменения при этом менее глубокие, чем при получении кислотных лигнинов с концентрированными кислотами. Раньше препараты медно-аммиачного лигнина часто использовали для изучения строения лигнина, но позднее интерес к ним понизился вследствие разработки менее трудоемких методов выделения растворимых препаратов лигнина, по химическому строению более близких к природному. [c.368]

Изучение закономерностей кислотного и щелочного гидролиза кремнийгидрадов может представить определенный интерес при разработке новых методов синтеза полиорганосилоксанов из соединений типа R2SIH2. В последнее время появились данные, указывающие на возможность получения полиорганосилоксанов, содержащих эфирные и гидроксильные группы в органических радикалах, именно таким путем [48, 336]. Водороды связей Si—Н такого рода мономеров могут быть также при определенных условиях замещены на группы ОН [493, 498], 0R, OO R или галогены. [c.460]