Гуанин спектры

С помощью рентгеновских спектров было установлено, что дезокси-нуклеиновые кислоты, ио-видимому, представляют собой двойные молекулы , состоящие из двух цепей, одна из которых винтообразно обвивает другую. Основания, входящие в состав одной цепи, связываются водородной связью с основаниями другой (например, гуанин с цитозином, аденин с тиминам). Дезоксинуклеиновые кислоты, вероятно, составляют основу или существенную часть генов. Они всегда содержатся в хромосомах, но отсутствуют в других частях клеток. [c.1049]

Исследованы спектры флуоресценции ряда пуринов, представляющих интерес с биологической точки зрения [26—30]. Эти спектры весьма характерны для различных пуриновых производных и, как правило, зависят от pH. Гуанин, например, имеет флуоресцентный эмиссионный максимум при pH 11, равный 340 ммк, а при pH 2—355 ммк [30]. [c.210]

Рис. 15.3. Спектры ПМР (100 МГц) 5%-ных растворов пурина (а), аденина (б) и гуанина (в) в ОаО при 25 °С [8].

Впрочем, иной раз даже и не зная точного происхождения полос, можно исследовать с их помощью явления чрезвычайно важные. Так, известно, что двойная спираль ДНК удерживается за счет образования связей между парами оснований аденин—тимин и гуанин — цитозин. Первоначально доказать это удалось с великим трудом. Между тем есть возможность подтвердить это очень простым и наглядным экспериментом. Дело в том, что эти пары соединений настолько удачно стыкуются друг с другом, что немедленно образуют комплексы даже при простом смешении их растворов. Поэтому в ИК-спектре смеси гуанина с цитозином появляются полосы 3300 и 3488 см , которых нет в спектре ни одного из оснований. Если же изучить, как зависят высоты этих полос от отношения концентраций взятых веществ, оказывается, что по мере добавления, скажем, цитозина к гуанину они вначале растут, а потом остаются постоянными. Причем достигается этот максимальный уровень именно тогда, когда концентрации оснований равны. Итак, полосы сообщают интересные сведе- [c.157]

Исходя из спектров кругового дихроизма, был сделан, кроме того, вывод о малой способности к ассоциации гуанина Однако [c.244]

Спектры денатурации РНК позволяют также приближенно оценить содержание пар гуанин цитозин и аденин урацил в двухспиральных участках, если пренебречь малым вкладом, вносимым в спектры односпиральными участками [c.289]

Дальнейшее изучение спектрофотометрического кислотного титрования ДНК (из зобной железы теленка) показало, что изменения в ее спектрах до начала денатурации (т. е. до начала быстрого возрастания оптического поглощения), которые происходят при pH 2,59 и 0 и при pH 3,32 и 30°, обусловлены протонированием цитозиновых остатков 1273]. Был сделан вывод, что при 0°, когда каждый адениновый и цитозиновый остатки протонированы, структура стабильна, а поэтому титрование обратимо вплоть до этой точки но в том случае, когда протонируются гуаниновые остатки, происходит денатурация (что находится в соответствии с ранними наблюдениями). Контролируемые изменения pH или температуры, приводящие к частичной денатурации, указывают на гетерогенность ДНК [273]. Однако определение области значений pH, при которых происходит денатурация, и изучение изменений значений рН1/2 (pH, при которых денатурация происходит на 50%) для ДНК, содержащих различные количества гуанина и цитозина, указывали на то, что, хотя кислотная денатурация при высокой ионной силе происходит скачкообразно, ее все же нельзя отнести к процессам типа все или ничего . Гетерогенность по составу сама по себе еще не объясняет расширения области структурного перехода при кислотной денатурации [274]. Можно ожидать, что, для того чтобы вызвать денатурацию при более низких температурах, необходима более высокая степень протонирования, причем кривые должны быть смещены в сторону более низких значений pH. Так, при 30° рН1 2 равен 3,07 (для ДНК из зобной железы теленка, ц = 0,1 М), а при 0° это значение снижается до 2,25. Увеличение содержания гуанин-цитозиновых пар также понижает pH, при которых происходит денатурация, но это смещение относительно мало [274]. [c.594]

На рис. 1 приведены спектры поглощения аденина, гуанина и анализируемого растительного образца в ультрафиолетовой области спектра. При нахождении калибровочных коэффициентов погашения, а также при проведении анализов, концентрации аденина и гуанина в растворе должны быть такими, чтобы оптическая плотность в максимуме полосы поглощения была в пределах от [c.231]

Аденин (рис. 15.3,6) и гуанин (рис. 15.3, в) в водных растворах дают очень простые спектры, содержащие пики протонов при С-8 в слабом поле. Протон при С-2 в аденине экранирован несколько сильнее, чем протоны при С-8. Протон при С-8 в гуанине более экранирован, чем в аденине. [c.408]

Наличие гуанина в моче человека показано Вейссманом, Бромбергом и Гутманом [207, 208]. Сообщается о выделении из сапропеля аналога витамина Bi2, который содержит гуанин и рибозу [209, 210]. На основании данных ультрафиолетового спектра предположено, что рибоза присоединена к седьмому атому пуринового ядра. По своему строению этот аналог близок витамину Bi2, только вместо бензимидазольного заместителя в нем содержится гуаниновый остаток. Сходный гуанинсодержащий аналог витамина В12 выделен из ферментативной жидкости No ardia [211]. Нуклеотид, в состав которого входят гуанин и фукоза, выделен из овечьего молока [212]. Гуанин обнаружен также в нуклеотидном ферменте (гуанозиндифосфат маннозы), который содержится в дрожжах [213—215]. [c.137]

Для пуринов подробно изучены и обсуждены инфракрасные спектры [8, 16—21], которые подтверждают, что оксипурины в твердом состоянии в основном существуют в амидной форме [2], а меркаптопурины — в тионной 12, 18]. На основании данных ИК-спектров можно сделать вывод, что у гуанина в твердом состоянии преобладает кетоаминная структура, а у аденина — аминная [20]. [c.209]

Сдвиги относительно ДСС как эталона. Синглет при 2т в спектре (а) принадлежит протону гуанина при С-8. Дублеты при 2 ж 4 т в спектре (в) относятся к протонам цитидииа при С-6 и С-5 соответственно. [c.413]

Реагенты, способные реагировать со свободными аминогруппами. В качестве такого реагента в химии нуклеиновых кислот часто используется формальдегид он реагирует со свободными аминогруппами цитозина, гуанина и аденина, образуя соответствующие оксиметильные производные (или — после дегидратации — шиффовы основания). Эта реакция сопровождается изменением спектра поглощения (смещением максимума в сторону длинных волн и усилением поглощения в области максимума) поэтому ее можно прослеживать спектрофотометрически. Все основания двухцепочечной ДНК в ее нативной конформации, а также больший или меньший процент оснований в других упорядоченных полинуклеотидах защищены от этой реакции, т. е. не реагируют с формальдегидом, если соблюдаются определенные меры предосторожности (нейтральное значение pH, низкая температура, низкая концентрация), сводящие к минимуму конформационные изменения, которые могут происходить даже в условиях, когда новые ковалентные связи не образуются. [c.145]

УФ-Спектры катионных форм 7-метилгуанина и 7-метилдез-оксигуанозин-5 -фосфата аналогичны спектрам протонированных гуанина и дезоксигуанозин-5 -фосфата. Следовательно, вероятно протонирование по N-7 гуанина. [c.180]

На рис. 4.2 в качестве примера приводится сопоставление спектров ЯМР 1-метилцитозина, 9-этилгуанина и их эквимольной смеси в диметилсульфоксиде. Из данных, приведенных на рисунке, следует, что в образовании водородных связей участвуют протоны аминогрупп цитозина и гуанина и иминогруппы гуанина. Аналогичные изменения в спектрах ЯМР по сравнению со спектрами индивидуальных оснований происходят при смешении в этом же [c.219]

Тот же вывод, но с еще большей очевидностью следует и из спектров ЯМР смесей нуклеозидов и их аналогов в различных растворителях . Так, если гуанозин с цитидином сильно взаимодействуют в диметилсульфоксиде, то взаимодействие между 9-этиладенином и 1-циклогексилурацилом удается наблюдать лишь в малополярных растворителях, например в дейтерохлороформе . Тем не менее и в этом случае специфичность взаимодействия сохраняется. Следует отметить, что при высоких концентрациях наблюдается также незначительная гомоассоциация производных аденина и гуанина. [c.221]

Легко видеть, что при 255 и 270 ммк вклад в изменение спектра от разрушения пар аденин-урацил и гуанин - цитозин при денатурации одинаков, в результате чего при денатурации изменение оптической плотности тРНК в этих точках не должно зависеть от нуклеотидного состава РНК-Гипохромный эффект при 255 ммк, вызванный разрушением пар оснований, может быть оценен по данным плавления двухспиральных комплексов (поли-А)-(поли-и) и (поли-С) (поли-С). Процентная [c.288]

Оценка количества спаренных оснований в молекуле 5S РНК проведена несколькими способами. Исходя из различий гипохромии при 255 ммк 306 нативной и обработанной формальдегидом 5S РНК из Е. соН (см. стр. 288), было сделано заключение о том, что в двухспиральные участки входит от 63% до 67—72% от общего числа нуклеотидов молекулы. Оценка относительного содержания комплементарных пар оснований аденин урацил и гуанин-цитозин з , проведенная по спектрам денатурации (см. стр. 288), дает величину 60—70% пар гуанин цитозин. При окислении адениновых ядер молекулы 5S РНК из Е. соИ моноперфталевой кислотой при 20° С реакционноспособными оказываются только 43,7% оснований, т. е. 23 адениновых звена, что согласуется с количеством пар аденин урацил, оцениваемым на основании спектров денатурации 3 . Таким образом, для 5S РНК, как и для тРНК, наблюдается высокая степень спирализации молекулы. [c.299]

Необходимость для реакции незамещенных экзоциклической аминогруппы и атома N-1 подтверждается тем, что 2-э зо-Ы-диме-тилгуанин и 1-Ы-метилгуанин не способны вступать в эту реакцию напротив, 8-бромгуанозин и 7-(р-оксиэтил)-гуанин дают продукты аналогичного типа. Спектр ЯМР продуктов реакции согласуется со структурой XII. [c.413]

Спектры ЭПР других облученных оснований (аденина, гуанина, урацила, цитозина) представляют собой синглеты, иногда с очень слабо разрешенной СТС [216] (рис. VI, 19, б—д). В облученных ну-клеозидах и нуклеотидах спектры ЭПР радикалов идентичны спектрам облученных оснований. Радиационный выход радикалов при облучении азотистых оснований лежит в пределах 0,1—1,5 1216], при облучении /)-рибозы при 300° К он равен 4 -f- 6, при 100° К G (R) = 2 -ь 4 (табл. VI.4). [c.311]

Возможности применения метода ультрафиолетовой спектроскопии для идентификации неизвестных соединений особенно хорошо выявляются при изучении нуклеотидной последовательности в молекулах тРНК [38]. В процессе исследования получали индивидуальные рибонуклеотиды и определяли, какие именно — пуриновые или пиримидиновые основания содержатся в данном продукте аденин, гуанин, цитозин, урацил или их производные (так называемые минорные основания) [39]. Ультрафиолетовые спектры поглощения З -рибонуклеотидов этих четырех оснований приведены на рис. 9.15. Наличие системы сопряженных двойных связей в этих молекулах приводит к появлению полос поглощения между 190 и 280 нм. Их спектры поглощения [c.521]

Так, например, максимум длинноволновой полосы поглощения в спектре нейтрального водного раствора ГМФ находится при 255 нм, ЦМФ — при 271 нм, УМФ — при 262 нм, а АМФ — при 259 нм [40]. Простое определение положения первого максимума поглощения дает возможность более или менее определенно идентифицировать ГМФ и ЦМФ, тогда как сделать выбор между АМФ и УМФ таким путем довольно трудно. Однако с помощью спектров поглощения этих нуклеотидов при экстремальных значениях pH можно решить и эту задачу. При высоких значениях pH атомы водорода, связанные с атомами азота кольца, в случае урацила и гуанина диссоциируют, и это приводит к изменению я-электронной системы этих оснований. Поэтому спектры поглощения УМФ и ГМФ (но не ЦМФ и АМФ) при pH 7 и 12 сильно различаются (рис. 9.15). Таким образом, измерение спектров поглощения при pH 7 и 12 дает возможность сделать однозначный выбор между АМФ, ЦМФ, ГМФ и УМФ Для идентификации содержащихся в тРНК производных аде пина, цитозина, гуанина и урацила (т. е. минорных оснований) аналитическая процедура включает изучение спектров погло щения при низких значениях pH [41] с последующим сопостав лением результатов с данными, полученными другими методами и в частности методом бумажной хроматографии [42]. [c.522]

Изменение интенсивности поглощения света с длиной волны около 260 нм, наблюдаемое в спектре ДНК, молено понять на основе приведенных ниже рассуждений [52]. Поглощение при 260 нм связано с наиболее длинноволновыми я-> я -переходами аденина, гуанина, цитозина и тимина. При комнатной температуре величина поглощения в случае ДНК намного меньше на 40%) того поглощения, которого можно было бы ожидать, если бы спектральные свойства ароматических колец оснований в мононуклеотидах и в молекулах ДНК не различались. Гипохромизм, предсказываемый Тиноко для этой полосы поглощения, должен иметь место при условии, что днпольные. моменты [c.528]

Смотреть страницы где упоминается термин Гуанин спектры: [c.142] [c.138] [c.199] [c.199] [c.409] [c.125] [c.180] [c.293] [c.379] [c.673] [c.557] [c.228] [c.230] [c.433] [c.506] [c.506] [c.409] [c.177] [c.283] [c.213] [c.220]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология