Хлоропласты разрушенные

Хлоропласты содержат рибосомы, несколько отличающиеся от рибосом цитоплазмы. Поскольку при получении гомогенатов листьев хлоропласты разрушаются, обе разновидности рибосом должны присутствовать в препаратах рибосом листьев. [c.28]

При большой интенсивности освещения граны хлоропластов разрушаются, в отсутствие окрашенных каротиноидов они подвергаются окислительной деструкции, изменяется липидный состав мембран хлоропластов. [c.86]

Часть образовавшейся перекиси водорода неферментативным путем декарбоксилирует глиоксилат (при этом образуются формиат и СО2), но основная ее часть, вероятно, разрушается в пероксисомах под действием пероксидаз или каталазы (последний фермент, как это ни странно, отсутствует в хлоропластах — видимо, в этом состоит одна из причин, почему окисление гликолата происходит именно в микро- [c.57]

Незрелые плоды имеют обычно зеленую окраску и содержат функционирующие хлоропласты. Во многих случаях, когда плоды созревают, хлоропласты превращаются в нефотосинтезирующие хромопласты. По мере потери хлоропластами фотосинтетической активности разрушается и хлорофилл. Иногда разрушаются и хлоропластные каротиноиды, но часто вместо них образуется гораздо большее количество других каротиноидов, которые и придают окраску зрелым плодам. Хорошо известным примером такой замены служат плоды томата, которые приобретают красную окраску в результате интенсивного синтеза ликопина (10.23). [c.365]

Биологическое действие ультразвуковых волн известно давно. Замечали, что вблизи источников ультразвука мелкие рыбы и лягушки гибли крупные клетки, особенно нитеобразной формы, разрывались, в мелких клетках разрушалась протоплазма и хлоропласт дрожжевые клетки утрачивали способность размножаться молоко становилось стерильным. [c.358]

Опыты с изолированными хлоропластами [185, 203] показали, что их наружная мембрана легко разрушается. После того как [c.15]

Если ядра разрушились в процессе получения гомогената, то фрагменты ядер будут оседать вместе с хлоропластами, от которых их можно отделить путем центрифугирования в градиенте [c.12]

Изолированные хлоропласты шпината разрушали ультразвуком и центрифугировали при [c.78]

Насколько можно наблюдать при помощи электронного микроскопа, физические или химические силы, влияющие на химизм синтеза хлорофилла или на молекулы хлорофилла, разрушают ламеллярную структуру хлоропласта и его фото-синтетическую активность. Ламеллы матрицы также, по-видимому, важны для фотосинтеза (Томас, 1956). [c.308]

Экспериментальным путем установлено, что триазины разрушают хлоропласты. [c.324]

Медь входит в состав окислительных ферментов и играет очень важную роль в метаболизме растений. Она локализована в хлоропластах при недостатке ее разрушается хлорофилл и растения страдают от хлороза. [c.26]

Во время процесса дедифференциации, который у всех клеток сходен, клетки должны утратить характерные черты исходной ткани. В первую очередь они теряют запасные вещества — крахмал, белки, липиды. В них разрушаются специализированные клеточные органеллы, в частности хлоропласты, но возрастает число ами-лопластов. Кроме того, разрушается аппарат Гольджи, перестраиваются эндоплазматический ретикулюм и элементы цитоскелета. [c.165]

По-видимому, должен существовать общий механизм, который регулирует образование хлоропласта в целом. Как осуществляются при этом тонкие взаимодействия компонентов и их контроль, не известно, однако были обнаружены тесные генетические взаимосвязи между ними. Должны синтезироваться все компоненты, и все они должны быть доступны для включения в тилакоидные мембраны. В противном случае синтетические процессы подавляются. Например, действие некоторых гербицидов заключается в подавлении биосинтеза каротиноидов. Если этиолированные проростки или культуры водорослей Euglena, выращенные в темноте, обработать такими гербицидами, то нормальные каротиноиды хлоропластов не образуются и, следовательно, не включаются в фотосинтетические мембраны. В результате не синтезируются и другие компоненты хлоропластов, в том числе хлорофилл, и, следовательно, не происходит развития хлоропласта в целом. Даже если это было бы и не так, то подавление образования каротиноидов привело бы к тому, что весь синтезированный хлорофилл и зарождающиеся фотосинтетические мембраны оказались бы без защиты от фотоокисления (разд. 10.4.2) и разрушались бы. Поэтому гербициды, подавляющие биосинтез каротиноидов в растениях, очень эффективны. [c.363]

Уменьшение количества пигментов идет в первую очередь за счет каротина, а потом начинают убывать хлорофилл и ксантофилл. Каротин, как известно из литературы, слабее связан с лвпопротеидами хлоропласта, чем другие пигменты, поэтому он быстрее разрушается под влиянием триазинов. [c.27]

Установив наличие водорастворимых фенольных соединений в хлоропластах, мы попытались определить их относительное содержание в этих органеллах. Сделать это оказалось не так просто, поскольку большая часть хлоропластов при их выделении разрушается. Поэтому пришлось использовать косвёйный путь рассчитать выход хлоропластов по сОдёржаний [c.178]

У растений фотосинтез происходит внутри высокоспециализированных органелл, называемых пластидами. Если клетки разрушить и выделить из них чистую фракцию пластид, то оказывается, что пластиды в присутствии соответствующих субстратов и кофакторов способны осуществлять все реакции фотосинтеза. В зеленых растениях, в том числе и в зеленых одноклеточных организмах, например у водорослей hlorella и S enedesmus, а также у простейшего Euglena, пластиды содержат хлорофилл и называются хлоропластами. Число, размеры и форма хлоропластов у разных организмов различны. В клетках хлореллы, например, имеется только одна пластида чашеобразной формы большинство же других водорослей, а также зеленые клетки высших растений содержат много хлоропластов. [c.315]

Когда неноврезкденные клетки сперва экспонировались в темноте, а затем разрушались и выставлялись на свет, не наблюдалось никакого перехода активности из водной фазы к хлоронластам. Таким образом, акцептор, повидимому, только рыхло связан с хлоро-нластами, так что он может быть удален кратковременной обработкой раствором глюкозы более вероятно, что он совсем не содержится в хлоропластах, а находится скорее в цитоплазме или в клеточном соке. Неповрежденные клетки, повидимому, обусловливают как его новообразование, так и восстановление на свету. Рубен с сотрудниками получили следующие данные по химической природе комплекса двуокись углерода — акцептор в клетках hlorella. Свыше 70% активного вещества осаждается ионами бария в 80-процентном этиловом спирте и 30—50% активной соли бария переходит в карбонат при сухой перегонке. [c.213]

Сернистый ангидрид и окислы азота. Изучая отравление фотосинтетического аппарата сернистым ангидридом и окислами азота, Ноак с сотрудниками [4] исходили из следующих представлений. Во-первых, катализатором фотосинтеза служит содержащееся в хлоропластах железо, которое дает цветную реакцию с гематоксилином и потому находится в форме органических или неорганических солей, а не в форме органических комплексов (см. главу XIV). Во-вторых, когда фотосинтез тормозится, световая энергия, поглощенная хлорофиллом, направляется на разрушительные фотодина-мические процессы, которые окисляют и разрушают как протоплазму, так и пигмент (см. главу XIX). Исходя из этих двух положений, Ноак провел испытание соединений, реагирующих с некомплексным железом и обладающих разрушительным действием на пигменты и клетки. Хорошо известно действие сернистых и азотистых газов на растительность. Они в первую очередь поражают ассимиляционную ткань. [c.326]

Чирх [9] выдвинул положение о существовании у хлоропластов мембраны, утверждая, что она предохраняет хлоропласты от срастайся и защищает хлорофилл от разрушения органическими кислотами, присутствующими в соке многих растений. Другие исследователи, например Шмитц [7], считали мембрану оптической ил.люзией. В более позднее время Вилер [34] подтвердил существование мембраны у хлоропластов Elodea anadensis, а Граник [50] установил, что полупроницаемая мембрана позволяет изолированным хлоропластам томатов и табака оставаться неразрушенными в течение нескольких часов в 0,5 Ж растворе глюкозы. Изолированные хлоропласты, помещенные в дестиллированную воду, набухают, вакуоли-зируются и разрушаются [57]. [c.361]

В модели хлоропласта (фиг. 59) предполагается, что все молекулы хлорофилла находятся в одинаковом состоянии, кроме тех, которые находятся во внешних слоях гранул, соприкасающихся со стромой. Если одна гранула состоит из 20—30 пигментных слоев, то на эти поверхностные слои придется всего 5% хлорофилла или 107о> если принимать, что в поверхностных слоях молекулы хлорофилла находятся в вертикальном положении, а не в наклонном, которое они принимают в мономолекулярных слоях (см. гл. XVI). Эти хлорофильные молекулы в строме могут быть связаны с белками и оставаться в соединении с ними, когда гранулы разрушаются водными липофильными растворителями. Возможно, это объясняет наблюдение Нейша [148], который нашел, что большую часть хло- [c.396]

Вызываемое светом изменение поглощения происходит не только при зеленении этиолированных листьев. Путем изучения разностных спектров Кок [193—195] показал, что в водорослях и хлоропластах присутствует какой-то пигмент (Р700) с максимумом поглощения около 700 нм, который, вероятно, представляет собой одну из форм хлорофилла а. По-видимому,- при освещении дальним красным светом или при вспышках белого света высокой интенсивности (ртутная дуговая лампа) этот пигмент быстро выцветает или разрушается, так как его поглощение быстро падает. Судя по изменениям поглощения при [c.44]

Хемиосмотическая гипотеза Митчелла связывает образование АТФ из АДФ с возникновением отрицательного градиента pH в хлоропластах но отношению к внешней среде при транспорте электронов под действием света (протонная помпа) [49]. Трансмембранный градиент pH в хлоропластах создает электрохимический потенциал, обеспечивающий фосфорилирование. Ингибиторы фосфорилирования и так называемые разобщители (среди них ионы аммония) могут уменьшить трансмембранный градиент pH из-за повышения проницаемости мембран хлоропластов, а не разрушать промежуточный X. Доводом в пользу хемиосмотической гипотезы является то, что синтез АДФ—>-АТФ возможен и в темноте, без всякого действия света, если в изолированных хлоропластах создать искусственно градиент pH [50]. Для этого их сначала помещают в раствор с низким pH, а затем быстро в раствор с высоким pH. Существует мнение о конкурентном образовании АТФ и трансмембранного протонного градиента из макроэргиче-ского соединения X [c.34]

Перед извлечением хлоропластов рекомендуетоя в течение определенного времени (12—14 часов) выдержать листья в темноте или при слабом освещении, чтобы гидролизовался крахмал и исчезли крахмальные зерна,. которые содержатся в хлоропластах и разрушают их при центрифугировании. [c.135]

Пероксисомы представляют собой микротела диаметром 0,5—1,0 микрон, имеющие плотную гранулярную строму, окруженную простой мембраной. Мембрана легко разрушается при выделении пероксисом, и заключенные в них ферменты вымываются. Этим можно объяснить, почему раньше считали местом локализации гликолатоксидазы цитоплазму. Несмотря на все усилия, пероксисомы не обнаружены в хлоропластах. [c.183]

При такой обработке разрушаются не только клеточные стенки, но и ядерные мембраны и происходит освобождение субъядерных компонентов. При такой обработке сильно повреждаются также ядрышки. Профильтрованный гомогенат затем центрифугируют нри таких скоростях, которые недостаточны для осаждения митохондрий (4000 g в течение 30 мин). Полученный осадок содержит крахмальные зерна, на которые наслоены хроматин и фрагменты ядер. Хлоропласты и фрагменты хлоропластов, если они присутствовали в исходной ткани, также обнаруживаются в этом осадке. Студенистый слой отделяют от нижележащего крахмального слоя, ресуспендируют в среде для растирания и вновь центрифугируют несколько раз для удаления крахмала. Неочищенный хроматин затем очищают центрифугированием в градиенте плотности сахарозы (0,0— 1,8 М). Для полного осаждения хроматина необходимо центрифугирование в течение 2 час при 22 ООО об/мин на 8р1псо 8 У 25 [25]. Нехромосомный материал удаляется главным образом на этой последней стадии, которая может быть повторена. Непосредственное выделение хроматина из тканей не требует большой затраты времени и позволяет получить до 95% присутствовавшего в исходной ткани хроматина, причем степень чистоты препарата в данном случае такая же, какая достигается и нри выделении хроматина из изолированных ядер. [c.31]

Вопрос о структуре хлоропласта, несомненно, связан с его функцией. Достаточно подействовать тем или иным способом на синтез новых хлорофильных молекул или отобрать магний из молекулы хлорофилла (создавая полосу феофитина), чтобы прекратилось образование и начали разрушаться ламеллярные структуры. Изучение структуры тесно связано с изучением всех функций пластиды. Здесь следует иметь в виду не только фотосинтез, но и тот специфический обмен вещества яластид во внутриклеточной среде, который должен быть им присущ, как живым образованиям. Изучение этого обмена для познания фотосинтеза и связанной с ним структуры хлоропластов столь же важно, сколь и сложно. Обмен и структура не существуют независимо друг от друга. Поэтому кажется совершенно необходимым иметь более подробные данные о значении ряда соединений, входящих в состав пластид. [c.309]

Обработка выросших на свету растений гербицидами, ингибирующими биосинтез каротиноидов, вначале вызывает появление хлоротических симптомов, затем растения погибают, израсходовав весь запас питательных веществ. В результате фотоокисления разрушаются и связанные с мембранами рибосомы хлоропластов, сохраняются только цитоплазматические рибосомы. Распад хлоропластов можно объяснить отсутствием каротиноидов, в нормальных условиях защищающих хлоропласты от фотоокисления. Гербициды подавляют биосинтез окрашенных каротиноидов, образуются только их природные предшественники (фитоин и фитофлуин, являющиеся бесцветными каротиноидами). При интенсивности света выше 15 лк ослабевает и биосинтез фитоина. После обработки растений гербицидами данной группы хлоропласты не содержат гран и рибосом, остается только незначительное количество концентрически расположенных тилакоидов. Следовательно, ультраструктура хлоропластов нарушена. [c.85]

Хотя электрон- и протоптрапснортирующие реакции фотосинтеза легче всего изучать на препаратах хлоропластов, у которых внутренняя и наружная мембраны разрушены и удалены, такие хлоропласты не способны к фотосинтетической фиксации СО2 из-за отсутствия ряда важных веществ, в нормальных условиях имеющихся в строме. Но хлоропласты можно выделить и так, что их внутренняя мембрана останется неповрежденной. На таких препаратах можно показать, что внутренняя мембрана обладает избирательной проницаемостью и, значит, содержит специальные белки-переносчики. Например, значительная часть глицеральдегид-3-фосфата, образующегося в строме при фиксации углерода, выводится из хлоропластов с помощью эффективной системы антипорта, обменивающей трехуглеродные фосфосахара на неорганический фосфат. [c.476]

Внутриклеточные компартменты, общие для всех эукариотических клеток, показаны на рис. 8-1. Ддро содержит основную часть генома и является главным местом синтеза ДНК и РНК. Окружающая ядро цитоплазма состоит из цитозоля и расположенных в нем цитоплазматических органелл. Объем цитозоля составляет чуть больше половины от общего объема клетки. Именно в нем синтезируется белок и протекает большинство реакций так называемого промежуточного обмена - т. е. реакций, в которых одни малые молекулы разрушаются, а другие образуются, обеспечивая необходимые строительные блоки для синтеза макромолекул. Около половины всех мембран клетки ограничивают похожие на лабиринт полости эидоплазматического ретикулума (ЭР). На обращенной к цитозолю стороне ЭР находится множество рибосом. Эти рибосомы заняты синтезом интегральных мембранных белков и растворимых белков, предназначенных для секреции или для других органелл. В ЭР также синтезируются липиды для всей остальной клетки. Аппарат Гольджи состоит из правильных стопок уплощенных мембранных мешочков, называемых цистернами Гольджи он получает из ЭР белки и липиды и отправляет эти молекулы в различные пункты внутри клетки, попутно подвергая их ковалентным модификациям. Митохондрии и хлоропласти растительных клеток производят большую часть АТР. используемого в реакциях биосинтеза, требующих поступления свободной энергии. Лизосомы содержат пищеварительные ферменты, которые разрушают отработанные органеллы, а также частицы и молекулы, поглощенные клеткой извне путем эндоцитоза. На пути к лизосомам поглощенные молекулы и частицы должны пройти серию органелл, называемых эндосомами. Наконец, пероксисомы ( известные также [c.6]

Пероксисомы специализируются на проееОении окислительных реакций с использованием молекулярного кислороОа. Они вырабатывают перекись водорода (которая им нужна для окисления), разрушая ее избыток с помощью каталазы. Считают, что, подобно митохондриям и хлоропластам. пероксисомы являются самовоспроизводящимися органеллами Однако они не содержат ДНК или рибосом. Полагают, что в их состав входит уникальный мембранный рецептор, позволяющий вносить внутрь органеллы все белки (включая и сам рецептор) путем избирательного транспорта из цитозоля. [c.38]

Смотреть страницы где упоминается термин Хлоропласты разрушенные: [c.409] [c.165] [c.217] [c.82] [c.210] [c.365] [c.396] [c.211] [c.275] [c.13] [c.572] [c.35] [c.98] [c.110] [c.226] [c.165] [c.318] [c.276] [c.13] [c.476] [c.183]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология