Рыбы гемоглобин

Наиболее опасным компонентом является избыточный растворенный азот. Организм рыб может частично компенсировать влияние избытка кислорода путем изменения эффективности его переноса гемоглобином, но для азота такие компенсирующие механизмы отсутствуют. [c.95]

Наиболее замечательный пример секреции газов [201 представляют явления, происходящие в плавательном пузыре глубоководных рыб. Рыба уравновешивает давление окружающей ее воды, создавая в своем пузыре равное давление газа. У глубоководных рыб Этот газ состоит главным образом из кислорода, и давление его может достигать нескольких сот атмосфер. Между тем кислород рыба получает из воды, где он находится не в большей концентрации, чем та, которая соответствует равновесию с атмосферным воздухом. Потребляемый из воды кислород поглощается гемоглобином крови, а затем специальная кислородная железа производит секрецию его в плавательный пузырь. [c.104]

Об интенсивности обмена веществ, оснащенности организма рыб, как и других животных, гемоглобином обычно судят по скорости газообмена, являющейся интегральным показателем окислительно-восстановительных процессов в организме. Сравнительные данные по биохимии дыхания различных видов рыб свидетельствуют о теснейшей связи газообмена, прел<де всего потребления кислорода, с особенностями экологии рыб. [c.73]

Раствор крови 1 250 (для рыб) 1 мл (берут кровь 0,02 мл пипеткой для гемоглобина и разбалтывают в 5 мл дистиллированной воды) [c.74]

Сточные воды многих видов производства, а также отдельные ингредиенты обладают выраженным гемолитическим действием, т. е. преимущественно воздействуют на систему крови рыб. В связи с этим для раннего выявления токсического действия этой группы веществ целесообразно использовать некоторые гематологические показатели, и прежде всего содержание гемоглобина крови и уровень осмотической резистентности эритроцитов. Поскольку определение содержания гемоглобина и осмотической резистентности эритроцитов ведут с помощью фотоэлемента, метод оценки токсичности с помощью этих гематологических показателей условно назван нами фотометрическим. [c.84]

Если же в токсикологическом эксперименте пользоваться ка-кими-либо односторонними показателями (выживаемость, содержание гемоглобина, количество эритроцитов), то установленные при этом ПДК могут оказаться завышенными (рис. 2,а,б,г), так как они будут изменять чувствительные показатели и оказывать тем самым отрицательное влияние на рыб. Лишь комплексная оценка по чувствительным показателям позволяет избежать подобных ошибок и надежно установить ПДК для рыб (рис. 2, б д, е. ж). I [c.121]

Концентрации веществ минимальной токсичности не вызывают выраженных изменений в показателях гемоглобина и эритроцитов (рис. 3, 3, м), количество же лейкоцитов при этом снижается на 20—25% (большинство случаев) или увеличивается на 6—10% (редкие случаи) (рис. 3, е, дас). Полученные данные свидетельствуют о высокой чувствительности лейкоцитов при отравлении рыб. [c.124]

Фотометрическая методика определения токсичности (по содержанию гемоглобина крови и осмотической резистентности эритроцитов рыб). В. И. Лукьяненко. Сб. Методики биологических исследований по водной токсикологии . Изд-во Наука , 1971, стр. 84—86. [c.293]

Известно, что у многих позвоночных, в том числе у костистых рыб, ионы Н+ уменьшают сродство гемоглобина к Ог. Это, возможно, содействует освобождению кислорода в плавательном пузыре при низких давлениях, но не позволяет [c.355]

Хотя при высокой интенсивности обмена организму выгодно иметь гемоглобин с сильно выраженным эффектом Бора, возможны случаи, когда чрезмерная чувствительность НЬ к отрицательной модуляции ионами водорода оказывается невыгодной. У некоторых очень активных рыб во время напряженной работы мышц в крови создаются чрезвычайно высокие концентрации лактата. В этих условиях pH крови может настолько снизиться, что эффект Бора будет сильно подавлять связывание Ог гемоглобином в жабрах. Известно, что рыбы иногда погибают от явного удушья во время или после напряженной мышечной активности. [c.371]

У некоторых особенно активных рыб были найдены варианты гемоглобина, не обнаруживающие эффекта Бора. Эти нечувствительные к Н+ варианты обычно составляют лишь небольшую долю всех молекул гемоглобина. Однако они, весьма вероятно, служат для системы транспорта О2 важным аварийным резервом , который может быть использован в любом случае, когда основные формы гемоглобина будут испытывать сильную отрицательную модуляцию в результате метаболического ацидоза. [c.371]

Пауэрс (личное сообщение) установил, что гемоглобины без эффекта Бора отличаются от обычных концевыми аминокислотами а- и 3-цепей. Известно, что у млекопитающих за эффект Бора ответственны главным образом С-концевые остатки гистидина в р-цепях и свободные N-концевые аминогруппы -цепей. В одном гемоглобине рыб, не обнаруживающем эффекта Бора, С-концевой аминокислотой р-цепей оказался не гистидин и, кроме того, N-концевые группы а-цепей были блокированы. [c.372]

Влияние температуры на функцию гемоглобина, вероятно, представляет особенно острую проблему для тех водных организмов, которые сталкиваются с большими колебаниями температуры в течение периодов, измеряемых минутами или часами. Известно, что для таких подвижных лососевых рыб, как форели или тихоокеанские лососи, пониженное содержание кислорода при температурах выше примерно 18°С служит фактором, лимитирующим интенсивность обмена, связанного с активностью. [c.372]

С. Вероятно, сама морская вода насыщена кислородом, и количество О2, которое может перейти в кровь и транспортироваться ею, в этих условиях чрезвычайно велико. Кроме того, содержание кислорода в воде в течение всего года почти постоянно, и поэтому роль гемоглобина как буфера, стабилизирующего концентрацию свободного кислорода, сводится к минимуму. И наконец, в связи с экспоненциальным увеличением вязкости жидких сред при снижении температуры антарктическим рыбам может быть выгодно уменьшить количество клеток, а тем самым и вязкость циркулирующих жидкостей тела. [c.375]

Биологическое значение маскировки а-аминогрупп недостаточно ясно возможно, она защищает белок от атаки аминопептидаз или способствует закреплению N-концевой части полипептида в аполярном окружении либо на молекуле рецептора, либо внутри самого белка, чтобы препятствовать его контакту с раствором. Это предположение не относится к метилированию а-аминогруппы, обнаруженному в рибосомных белках, выделенных из Es heri hia oli [135], поскольку метилирование не элиминирует заряд. Физиологическая роль ацетилирования а-аминогруппы совершенно ясна в случае некоторых гемоглобинов рыб такая модификация помогает сохранять способность к связыванию кислорода независимо от рН-среды, что предотвращает выделение избыточного кислорода в плавательный пузырь [136] (разд. 10.3). [c.72]

Одним из преимуществ является и улучшенный вариант эффекта Хальдана [668, 669], который заключается в освобождении протонов при присоединении молекулярного кислорода к гемоглобину, и наоборот. Этот эффект важен для транспорта молекулярного кислорода из легких к потребляющим кислород тканям, а также для транспорта протонов из этих тканей к легким. Кроме того, с помощью разных тнпов гемоглобина, которые имеют различную чувствительность к концентрации ионов водорода, некоторые типы рыб могут использовать О2 для двух раздельно контролируемых функций для наполнения воздушного пузыря и для перевода молекулярного кислорода в пути метаболизма [136]. Большое значение имеет также возможность использования некоторых специальных органических фос-форильиых соединений, таких, как 2,3-дифосфоглицерат (ДФГ) [c.257]

Показатели крови. Наиболее важно отметить изменения в показателях функций дыхательной (число эритроцитов, количество гемоглобина) и защитной (общее количество лейкоцитов, число моноцитов и лимфоцитов). Кровь для определений берут у рыб из сердца, или из жаберной артерии, или из хвостовой артерии с помощью острого капилляра. Прямой подсчет эритроцитов производят ш.ироко распространенным методом в специальной камере ( Коржуев, 1962). Кр01вь, взятую смесителем и разбавленную в 200 раз раствором хлористого натрия (6 г/л), хорошо перемешивают и после выпуска двух-трех капель на фильтровальную бумагу (удалить разбавленную кровь из стержня пипетки) наносят на счетную камеру. Закрывают камеру покровным стеклом, которое хорошо притирают , и затем подсчитывают число эритроцитов в 80 малых. квадратах. Высота камеры 0,1 мм, а сторона малого квадрата 0,05 мм. Объем жидкости над малым квадратом равен 0,00025 мм . Число эритроцитов выражают в 1 мм . Для этого, учитывая произведенное разведение в 200 раз, полученное число эритроц.итов на 80 малых квадратах умножают на 10 000. При хорошей работе ошибка подсчета эритроцитов не превышает 12%. [c.55]

Оценкарезультатов. Токсическое действие исследуемых веществ или сточных вод проявляется в снижении по сравнению с нормальной величиной концентрации гемоглобина и уровня осмотической резистентности эритроцитов. В качестве нормальной величины следует принять М 2 б, т. е. среднеарифметическую, варьирующую в пределах удвоенной величины стандартного отклонения. В случае, если обнаружены различия между подопытными и контрольными рыбами, обязательно следует проверить статистическую достоверность этого различия. [c.86]

СТОЯЩИЙ опыт исследований должен быть взят такой комплекс работ, который бы позволял уловить количественную и качест-венную особенность реагирования различных систем и всего организма, а также популяции вида на токсическое начало. Исходя из этих требований, токсикологические опыты с рыбами оцениваются нами по комплексу следующих показателей 1) выживаемость 2) изменение клинического и патолого-анатомического состояния рыб 3) изменения суммарного веса рыб и прироста биомассы за период опыта 4) количественной и качественной оценок содержания гемоглобина, числа эритроцитов и лейкоцитов, лей-коформулы, а также морфологии форменных элементов крови. [c.121]

Общие. изменения показателей крови под влиянием различных концентраций некоторых ПАВ (поверхностно-активных веществ) можно видеть из материалов рис. 3. Так, концентрация веществ высокой и средней токсичности вызывает увеличение содержания гемоглобина у рыб (максимум на 17—23%), числа эритроцитов (максимум на 500—700 тыс. на 1 мм ) и резкое уменьшение количества лейкоцитов (максимум на 21—24 тыс. на 1 мм см. рис. 3, с, й). В это время на мазках крови отмечается шисто-цитоз. Развивающаяся острая лейкопения и шистоцитоз указывают на угнетение ретикуло-эндотелиальной системы и подавление защитных сил организма под влиянием ядовитых веществ. Увеличение гемоглобина и числа эритроцитов является общей компенсаторной реакцией, которую вызывают абиотические и биотические факторы среды, нарушающие газообмен в организме рыб. [c.124]

Показана возможность использования некоторых гематологических сдвигов у рыб в качестве показателей токсического действия загрязненной водной среды. Дается методика определения снижения гемоглобина и осмотической резистенции эритроцитов. В оценке результатов в качестве нормальной величины принимается среднеарифметическое отклонение, варьирующее в пределах удвоенной величины стандартного отклонения. [c.293]

Организм животных может синтезировать лишь определенные аминокислоты другие происходят из белков нищи, как уже указывалось выше. Поэтому недостаточно, чтобы пища животных содержала определенное количество белков (определенный процент азота) она должна содержать достаточное количество каждой незаменимой аминокислоты. Белки молока, мяса, рыбы, яиц, мозга, сыворотки, фибрина, сои и пшеничного зародыша содержат незаменимые аминокислоты в адекватном количестве эти белки могут заменять друг друга без какого-либо ущерба. Нанротив, в гемоглобине, желатине и многих белках растений (см. зеин) наблюдается дефицит некоторых незаменимых аминокислот (см. табл. 14). Потребление с пищей исключительно этих белков приводит к серьезным расстройствам (например, к нервным расстройствам у крыс в отсутствие валина). Отсутствие незаменимых аминокислот в белках пищи ярко проявляется на молодых животных, рост которых прекращается или замедляется. Эти явления исчезают при введении в их диету молока. [c.443]

Сапонины крайне токсичны при введении в кровь животного, но сравнительно безопасны в случае пероральпого введения. Даже в небольшой концентрации они производят гемолиз, т.е. разрушают красные кровяные шарики, выделяя гемоглобин. Эго свойство сапонинов, повидимому, обусловлено их очень резко выраженной способностью к фиксированию на поверхностях раздела фаз и понижению поверхностного натяжения воды. Сапонины очень токсичны для рыб. Они применяются в медицине, а также в огнетушителях. [c.929]

Влияние на водные о р г а н и з м ы. Токсическое действие аммиака на рыб объясняется его способностью соединяться с кислородом крови, рыбы гибнут от удушья [0-54]. Концентрация аммиака в воде 1 мг/л снижает способность гемоглобина соединяться с кислородом крови, а концентрация даже мс сс 0.3 ыг/л вьиыиаег заметное уменьшение содержания кислорода в крова рыб [3]. [c.20]

Косвенным путем были получены значения ДЯ координации кислорода, исходя из температурной зависимости Р /2 (т. е. ДС), однако лишь в двух случаях были проведены прямые калориметрические изменения. Все приведенные ниже данные взяты из работы [8], если не оговорен другой источник. Значения ДЯ для миоглобинов находится в интервале от —54 до —67 кДж/моль (от —13 до —16 ккал/моль,) однако для миоглобина лошади ДЯ = = —86,2 кДж/моль (—20,6 ккал/моль). Изолированные а- и 3-цепи гемоглобина также характеризуются значениями —56,6 кДж/моль (—13,5 ккал/моль). Значения ДЯ для гемоглобйнов изменяются в более Широком интервале и обычно зависят от pH. По калориметрическим данным, для гемоглобина быка ДЯ равны —39,3 и —56,1 кДж/моль (—9,4 и —13,4 ккал/моль) при pH 6,8 и 9,5 соответственно. Для других гемоглобйнов млекопитающих ДЯ равно примерно —42 кДж/моль (—Юккал/моль) при pH 7 и от —54 до —63 кДж/моль (от —13 до —15 ккал/моль) при pH 9,5. Изменение ДЯ для НЬ IV форели гораздо больше от —25 кДж/моль (—6 ккал/моль) при pH 7 до —59 кДж/моль (—14 ккал/моль) при pH около 9 [24]. Однако для НЬ I форели и для гемоглобина тунца найдены очень низкие и независящие от pH значения ДЯ, равные —12 и —7,5 кДж/моль (—3 и —1,8 ккал/моль) соответственно [24, 190]. Все эти данные относятся к координации газообразного кислорода, поэтому в них следует внести поправку на теплоту растворения кислорода ДЯ = —12 кДж/моль (—3 ккал/моль) [24]. Эта поправка приводит к ДЯ = О и + 4 кДж/моль (О и 1 ккал/моль) для последних двух гемоглобйнов рыб. Таким образом, ДЯ варьирует от +4 до —75 кДж/моль (от 1 до —18 ккал/моль). [c.169]

Поразительно то, что когда период химической подготовки — период интенсивных и разнообразных превращений, о которых можно-строить лишь осторожные гипотезы, сменился периодом биологической эволюции, химическая эволюция словно затормозилась. Развитие организмов в общем очень слабо отразилось на основных чертах строения" белков и ферментов. Пролоне произвел анализ гемоглобина кистеперой рыбы и нашел, что аминокислотный состав и в этом случае не представляет чего-либо необычного и близок к составу гемоглобина позвоночных. [c.22]

Удалось поймать несколько целакантусов, а совсем недавно одного из них поместили в аквариум для тщательного изучения. С точки зрения биохимии эта находка имела особое значение. Исследование организма рыбы древнего вида позволяет выяснить, насколько изменился химический состав за миллионы лет биологической эволюции. Сравнение данных анализа гемоглобина крови целакантуса и современных рыб показало, что между их гемоглобинами нет существенной разницы. Это означает, что химическая эволюция, т. е. перестройка отдельных узлов биохимических механизмов, если и идет, то крайне медленно словно природа нашла удачный набор исходных веществ и принялась строить из него всевозможные формы живых существ. Химик, изучавший только состав отдельных молекул, конечно, не мог бы предвидеть всего этого. [c.6]

Рис. 111. В.чияние pH на присоединение и отдачу кис.торода гемоглобином рыбы эффект Рута и эффект Бора.

О значении адаптации регуляторной функции гемоглобина (в отличие от адаптации, касающейся только общей кислородной емкости крови) свидетельствует то, что у многих видов рыб, почти не различающихся по общей кислородной емкости крови, существуют заметные различия в регуляции использования этого свойства. У более активных видов гемоглобин обладает гораздо большей способностью отдавать связанный кислород тканям против крутого градиента концентрации Оа. Мануэлл и Бейкер высказали предположение, что гетерозис , отмеченный у одного гибрида рыб из сем. Сеп1гагсЬ1(1ае, обусловлен более выраженной 5-образной формой кривой насыщения его гемоглобина (т. е. большей способностью НЬ отдавать Ог). Это еще один случай, когда адаптация к среде связана с появлением улучшенного варианта определенной молекулы, а не просто с повышением общей концентрации данного вещества. [c.371]

В гл. 7 мы рассматривали противоточные теплообменные системы, которые у таких рыб, как крупные тунцы, позволяют определенным тканям сохранять значительное количество метаболического тепла. Но так как величины Рэо у большинства гемоглобинов зависят от температуры, теплообменная система тунцов, по-видимому, должна создавать большие затруднения для транспорта газов. Ведь когда сравнительно холодная и сильно насыщенная кислородом кровь поступает в теплообменник, изменение Рьо в связи с ее нагревом порождает две серь-. езные проблемы. Во-первых, гемоглобин должен высвобождать большие количества Ог раньше, чем артериальная кровь дойдет до наиболее активно дышащих тканей. Во-вторых (и это еще опаснее), освобождение кислорода в крови, согревающейся в теплообменнике, может оказаться настолько быстрым, что приведет к перенасыщению нагретой плазмы. Но кислород может выделяться из жидкой фазы в виде пузырьков, и эти пузырьки, попадая с кровью в мелкие сосуды, могут вызывать эмболию, возможно даже со смертельным исходом. [c.376]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология