Определение количества гемоглобина

Методы исследования количества гемоглобина и форменных элементов крови. В настоящее время количественное определение гемоглобина проводится с помощью объективного и точного метода фотоколориметрии. С этой целью используются приборы ФЭК-Н, ФЭК-Н-54, эритрогемометры (Г. В. Дер-виз, А. И. Воробьев, 1959 В. И. Запускалов, Б. И. Шмидт, 1955 И. И. Красовский, 1953) и др. Для этого 30 мм крови разводят в соотношении 1 200 0,04% раствором аммиака (4 мл) и колориметрируют при зеленом светофильтре (л = 500 та, кювета шириной 10 мм). [c.220]

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛИЧЕСТВА ГЕМОГЛОБИНА [c.241]

Определение количества гемоглобина в крови имеет очень большое диагностическое значение при распознавании малокровия и как симптом при различных заболеваниях. [c.241]

На основании различных вычислений при экспериментальных исследованиях предложен коэффициент отравления окисью углерода, который равен отношению карбоксигемоглобина к общему количеству гемоглобина в определенном объеме крови, умноженному на 100. Таким образом, коэффициентам 0,1—0,2—0,3 соответствует 10, 20 и 30% карбоксигемоглобина. [c.212]

Колориметрический анализ является наименее точным из всех рассмотренных выше методов количественного анализа. Однако он находит большое применение в тех случаях, когда определяют весьма малые количества вещества. Широко применяется этот метод в санитарно-гигиенической практике для определения нитритов и нитратов, аммиака и других веществ в воде, для определения тяжелых металлов (меди, свинца), для определения ртути в воздухе и т. д. В медицине колориметрическим методом определяют, например, количество гемоглобина в крови. Колориметрический анализ применяют и в ряде методик биологической химии. [c.194]

Растворимость белков в воде варьирует в широких пределах. Одни белки легко растворяются в воде, не содержащей солей, другие, наоборот, растворяются только в воде, содержащей определенное количество солей белки третьей группы нерастворимы в воде, но растворяются в смеси воды и спирта белки четвертой группы — склеропротеины — не растворяются ни в каких растворителях. Эти особенности белков послужили основой для разделения их на альбумины, глобулиноподобные белки, проламины и склеропротеины. Такая классификация является более или менее искусственной, и значение ее ограниченно. Так, например, одни гемоглобины легко растворимы в воде, не содержащей солей, другие же почти нерастворимы в отсутствие солей, но легко растворяются при их добавлении. [c.111]

Определение количества гемоглобина является наиболее простым и доступным способом диагностики анемии, поскольку понижение содержания гемоглобина в крови наблюдается при анемиях различной [c.445]

При смешивании крови с соляной кислотой образуется солянокислый гематин бурого цвета. Этот раствор разводят до стандарта, соответствующего определенному количеству гемоглобина. [c.170]

Определенные количества карбоксигемоглобина находятся в крови курящих людей. Согласно работе [Н 8Е,1984], в крови некурящих содержание КОГ составляет 0,1 - 2,5% (от общего количества гемоглобина), а у курильщиков может достигать 5 - 15%. Там же утверждается, что смерть может наступить при содержании КОГ в крови 70 - 80%, а при содержании 80 - 90% смерть наступает в течение считанных минут. [c.392]

При внутрисосудистом гемолизе гемоглобин из разрушенных эритроцитов поступает непосредственно в кровь, соединяется с гаптоглобином (белок из группы глобулинов) в высокомолекулярный комплекс—гемо-глобин-гаптоглобин, е проходящий через почечный фильтр и не выделяющийся с мочой. Поступая в дальнейшем в печень, этот гемоглобин в ретикуло-эндотели-альной системе проходит тот же путь, что и при внутриклеточном механизме гемолиза. Однако содержание гап-тоглобина в крови невелико и может связать лишь определенное количество гемоглобина (100—135 мг%). В связи с этим при более интенсивном, особенно бурном гемолизе недостаточность механизмов реутилизации гемоглобина и его дериватов приводит к поступлению гемоглобина в мочу, т. е. к гемоглобинурии. [c.226]

Каждый механизм энергообразования имеет определенные резервы, которые раскрываются или развиваются в процессе адаптации к специфической физической тренировке. Аэробная производительность спортсменов, специализирующихся в видах спорта на выносливость, зависит от адаптационных изменений мощности и емкости аэробного механизма энергообеспечения мышечной деятельности. Емкость аэробного механизма, которая в значительной степени определяется запасами гликогена в скелетных мышцах и печени, а также уровнем утилизации О2 мышцами, существенно повышается уже в течение 1,5—2 месяцев тренировки на выносливость (рис. 132). Мощность аэробного механизма, которая зависит от МПК и активности окислительных ферментов, также увеличивается в процессе адаптации к мышечной деятельности через 2—3 месяца тренировки. Значительно повышается активность окислительных ферментов (табл. 24). Более медленно происходит увеличение емкости капилляров и доставка кислорода в мышцы. Увеличивается количество гемоглобина в крови и миоглобина в мышцах, количество, величина и плотность митохондрий, что повышает способность мышц утилизировать кислород и осуществлять аэробный ресинтез АТФ. В таких условиях повышается способность тренированных мышц окислять пировиноградную кислоту, что предотвращает накопление молочной кислоты, а также усиливает окисление жиров. Это обеспечивает более эффективное выполнение длительной работы. [c.323]

Потребность в минеральных веществах зависит от физиологического состояния организма. Она особенно велика при беременности, при высокой продуктивности молока у коров, шерсти у овец, во время яйценоскости кур, у растущего организма. В этом случае особенно нужен кальций и фосфор. При этом очень важно не только достаточное количество этих веществ, но и определенная пропорция их в пище. Соотношение между количеством кальция и количеством фосфора в пище должно составлять 1 2. При изменении этого соотношения нарушается обмен кальция и фосфора, что вызывает в растущем организме рахит. При недостатке в пище железа уменьшается количество гемоглобина в крови. Организм нуждается в определенных количественных соотношениях и ряда других элементов (иода, фтора, марганца, кобальта и др.). [c.418]

Для определения необходимого количества обменника полезно определить его фактическую емкость для данного биополимера (приводимые иногда паспортные данные для гемоглобина могут служить лишь для очень грубой ориентировки). С этой целью можно поступить следуюш,им образом. 50 мг обменника суспендируют в 10 мл буфера (0,1 М) при значении pH, гарантирующем полную сорбцию, добавляют определенными порциями раствор биополимера, перемешивают каждый раз в течение 10 мин и определяют (например, по УФ-поглощению) концентрацию биополимера в отстое ( j). По известному суммарному количеству добавленного вещества и объему суспензии подсчитывают полную концентрацию вещества в этом объеме (Со) и строят график зависимости = f( ), как показано на рис. 116. Выход зависимости на прямую линию, идущую под углом 45°, указывает момент насыщения обменника. Фактическую его емкость для данного биополимера (Е) можно подсчитать по формуле [c.288]

Существует доказательство того, что органические вещества в черных сланцах представляют собой остатки биологических организмов, деятельность которых привела к разделению металлов. Сланцы и нефть содержат небольшие количества порфиринов ванадия — веществ, которые могли бы служить для определенных биологических систем аналогом порфиринов железа, входящих в гемоглобин крови (см. рис. 23.18). [c.446]

Определение количества гемоглобина фотометрическим методом проводится следующим образом. В чистую сухую пробирку пятикубиковой пипеткой наливают 5 см рабочего раствора (т. е. 0,1%-ный раствор ЫааООз) и добавляют 40 мм исследуемой гепарнизированной крови. Содержимое пробирки тщательно и равномерно перемешивают и наливают в специальную кюветку, помещаемую в гнездо эритрогемометра. Определение ведут в синей области спектра. По шкале, отградуированной в единицах концентрации гемоглобина, получают ответ в грамм-процентах. Вся процедура определения занимает 20—30 сек. [c.85]

Одним из источников ошибок при определении количества гемоглобина с помощью гемометра Сали является излишне поспешная работа. Следует помнить, что максимальная окраска рас-Рис. 34. Гемометр, твора пигмента (см. ход работы) достигается не сразу, а постепенно поэтому приливание дестиллированной воды производят через 10 или 15 минут (не ранее), и всегда точно соблюдая определенный промежуток времени, так как иначе могут получиться несравнимые результаты. [c.242]

Для оценки токсичности водных вытяжек были в основном избраны такие исследования, которые выявляли влияние стирола на организм. К ним относится клинический анализ крови у белых крыс, включавший определение количества гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов и подсчет лейкоцитарной формулы оценка антитоксической функции печени с помощью пробы Квика — Пытеля определение общего количества белка и отдельных его фракций в сыворотке крови белых крыс. В моче у белых крыс устанавливали наличие одного из метаболитов стирола — миндальной кислоты. Кроме того, вели наблюдения за общим состоянием животных и динамикой их веса исследовали условнорефлекторную деятельность белых мышей и их выносливость к физической нагрузке (длительность принудп- [c.78]

Показатели крови. Наиболее важно отметить изменения в показателях функций дыхательной (число эритроцитов, количество гемоглобина) и защитной (общее количество лейкоцитов, число моноцитов и лимфоцитов). Кровь для определений берут у рыб из сердца, или из жаберной артерии, или из хвостовой артерии с помощью острого капилляра. Прямой подсчет эритроцитов производят ш.ироко распространенным методом в специальной камере ( Коржуев, 1962). Кр01вь, взятую смесителем и разбавленную в 200 раз раствором хлористого натрия (6 г/л), хорошо перемешивают и после выпуска двух-трех капель на фильтровальную бумагу (удалить разбавленную кровь из стержня пипетки) наносят на счетную камеру. Закрывают камеру покровным стеклом, которое хорошо притирают , и затем подсчитывают число эритроцитов в 80 малых. квадратах. Высота камеры 0,1 мм, а сторона малого квадрата 0,05 мм. Объем жидкости над малым квадратом равен 0,00025 мм . Число эритроцитов выражают в 1 мм . Для этого, учитывая произведенное разведение в 200 раз, полученное число эритроц.итов на 80 малых квадратах умножают на 10 000. При хорошей работе ошибка подсчета эритроцитов не превышает 12%. [c.55]

Гематологические исследования состояли в определениях количества гемоглобина, числа эритроцитов и лейкоцитов и других показателей. Результаты этих исс.ледовапий приведены в табл. 2. [c.308]

Электрофорез на ацетате целлюлозы служит простым и вместе с тем чувствительным способом обнаружения аномальных видов гемоглобина. Наиболее подходящей буферной системой является смесь трис-борная кислота-ЭДТА (pH 8,4) [816, 1141, 1224]. Для качественных анализов можно использовать микрометоды. Электрофореграммы анализируют либо без применения красителей, либо после их окрашивания общими белковыми красителями или с помощью пероксидазы. Последний метод, очевидно, более специфичен, так как выявляет только те белки, которые содержат гем. Шнейдер [1141] рекомендует двукратное окрашивание сначала пунцовым S, а затем раствором бензидина, содержащим нитропруссид натрия (дает синюю окраску). Если при электрофорезе необходимо определить содержание минорного (т. е. имеющегося в незначительном количестве) компонента, например гемоглобина Аг, то наиболее надежный метод состоит в том, что на пленку наносят относительно большое (точно определенное) количество образца, элюируют соответствующие зоны электрофореграммы без ее предварительного окрашивания и проводят фотометрическое измерение [1141]. При денситометрическом сканировании окра- [c.321]

Выбор методов. В случае неспецифических нарушенш морфологического состава крови рекомендуется набор методов, включающий определение содержания гемоглобина, подсчет количества эритроцитов, лейкоцитов и лейкоцитарно11 формулы крови. [c.219]

Организм животных может синтезировать лишь определенные аминокислоты другие происходят из белков нищи, как уже указывалось выше. Поэтому недостаточно, чтобы пища животных содержала определенное количество белков (определенный процент азота) она должна содержать достаточное количество каждой незаменимой аминокислоты. Белки молока, мяса, рыбы, яиц, мозга, сыворотки, фибрина, сои и пшеничного зародыша содержат незаменимые аминокислоты в адекватном количестве эти белки могут заменять друг друга без какого-либо ущерба. Нанротив, в гемоглобине, желатине и многих белках растений (см. зеин) наблюдается дефицит некоторых незаменимых аминокислот (см. табл. 14). Потребление с пищей исключительно этих белков приводит к серьезным расстройствам (например, к нервным расстройствам у крыс в отсутствие валина). Отсутствие незаменимых аминокислот в белках пищи ярко проявляется на молодых животных, рост которых прекращается или замедляется. Эти явления исчезают при введении в их диету молока. [c.443]

Фельдман М. Г. Определение малых количеств гемоглобина. Лабор. практика, 1941, №> 10-11, с. 16—18. Библ. Зназв. 8286 йалков Я. А. и КановерЭ. Г. Изучение оптимальных условий извлечения алкалоидов из водной среды в зависимости от pH раствора. Сообщ. 1. Извлечение хинина. Уч. зап. (Киевск. ин-т усовершенствования провизоров), 1950, 1, с. 16—22. Библ. 8 назв. 8287 [c.312]

Определепие токсичности смолы амберлита Ш-4 путем введения ее в диету крыс в течение одного месяца не могло решить вопроса о ее безопасности при клиническом применении п течение длительного периода, особенно при лечении пептической язвы. Поэтому Сегаль и другие авторы [2] провели исследование оральной токсичности амберлита IR-4 у крыс в течение длительного периода (восемь месяцев). В диету крыс вводили очищенную смолу в количествах 0 0,5 2 и 20%. Во время испытапия крысы, получавшие смолу, обнаружили нормальный рост и имели вполне обычный вид. Процесс пищеварения протекал также нормально, и у испытуемых крыс не было никаких признаков диарреи. В конце восьмимесячного периода были произведены гематологические испытания (определения процентного содержания гемоглобина, количества гемоглобина в 100 мг крови, числа эритроцитов и лейкоцитов). Все найденные величины оказались нормальными содержание гемоглобина 92%, число красных кровяных клеток 6,9—8,9-10 , число лейкоцитов 7200—18 400 у крыс, получавших 20% смолы, содержание сахара в крови оказалось равным 9i,155 мг- % (у контрольных 85,105 л0-%), а содержание хлоридов — 604— 639 мг-% (у контрольных 587 мг-%). [c.309]

Количественное определение. Протеолитическая активность. Метод основан на определении количества тирозина, освобождаемого трипсином из гемоглобина в определенных условиях. Протеолитическая активность выражается в тирозиновых единицах (TEis.s" ) по Айсону. [c.715]

При разрушении эритроцитов в клетках ретикуло-эндотелиальной системы гемоглобин, освобождаясь от железа, переходит через стадию протопорфирина в билирубин, который в определенных количествах циркули-)ует в крови в виде так называемой непрямой формы. 1ереход билирубина из крови в желчь определяется образованием в печени прямого соединения его с одной или двумя молекулами глюкуроновой кислоты при помощи фермента трансферазы. Прямой билирубин, или глю-куронид-билирубин, в кишечнике превращается бактериями в стеркобилин, а частично путем ферментативного восстановления — в уробилин, который, всасываясь в кровь, частично снова попадает в печень, а частично [c.225]

С помощью электрофореза на ацетате целлюлозы легко можно разделить целый ряд различных видов гемоглобина человека, например гемоглобины А, Р, 5 и С. Однако при электрофорезе в щелочных условиях нельзя отделить НЬ5 от других гемоглобинов, имеющих сходный заряд, а также НЬС от тех вариантой гемоглобина, которые, подобно НЬС, отличаются от НЬА на два заряда (НЬЕ и НЬО). Из-за незначительных различий в подвижностях гемоглобинов А и Р трудно обнаружить небольшие количества НЬА в присутствии больших количеств НЬР, и наоборот. Шмитд и Холланд [1136], проводившие оценку готовых наборов, предназначенных для электрофореза гемоглобинов (на ацетате целлюлозы), подчеркивают, что на каждую пластинку ацетата целлюлозы следует наносить набор свидетелей, содержащий гемоглобины А, Р, 5 и С. Они также пришли к выводу, что некоторые партии ацетата целлюлозы дают плохие результаты. Шмидт и Брозиус [1135] обращают внимание на тот факт, что источником ошибок при тестах на аномальные виды гемоглобина нередко является неверная интерпретация электрофоретической картины. Поэтому считают необходимым при определении фенотипа гемоглобина использовать по меньшей мере два метода, например электрофорез при разных pH или электрофорез при одном значении pH в сочетании с тестом на растворимость НЬ5. [c.322]

К постоянным количествам антнтела и комплемента прибавляют различные количества антигена. После инкубации добавляют эритроциты барана и антитела против эритроцитов барана. После второй инкубации смесь центрифугируют для удаления оставшихся целыми эритроцитов. Количество выделившегося гемоглобина определяют по поглошению сунернатанта. Если комплемент не фиксируется, то в супернатанте присутствует максимальное количество гемоглобина. Заметим, что два различных количества антигена могут приводить к фиксации одного и того же количества комплемента. Для измерения количества антигена при неизвестной концентрации необходимо проводить определения с разбавлениями образца. Если при разбавлении антигена количество фиксируемого комплемента уменьшается, фиксируемое количество соответствует участку кривой, отвечающему избытку антитела. [c.255]

Гемоглобин. — Этот белок ответственен за перенос кислорода из легких к тканям тела. Механизм дыхания животных может быть продемонстрирован на растворе гемоглобина следующим образом если раствор гемоглобина встряхивать с кислородом, он становится ярко-красным (артериальная кровь) если удалить кислород при помощи вакуум-насоса, раствор гемоглобина становится синевато-красным (венозная кровь). Легко может быть осуществлена кристаллизация окисленного гемоглобина— окоигемоглобина. Для этого раствор гемоглобина обрабатывают небольщим количеством спирта для понижения растворимости и оставляют яа 2—3 недели при 0°С. Последующие кристаллизации требуют все уменьшающихся количеств этилового спирта и меньше времени. Процентный состав оксигемоглобина слегка меняется для препаратов, полученных из различных животных. Типичная эмпирическая формула гемоглобина ( TasHues OjosNzoaSaFe) мини мальный молекулярный вес 16 500—17 000 (определен на основании содержания железа). Так как седиментационный метод дал величину в четыре раза большую, то п, вероятно, равно четырем. [c.671]

Результаты определения аминокислотного состава большинства белков указывают на наличие такого количества цистина, которого вполне достаточно для образования дисульфидных мостиков между известным числом открытых полипептидных цепей. Однако гемоглобин лошади, имеющий шесть N-кoнцeвыx валииовых остатков [160, 245], не содержит [c.175]

Определение в клинике содержания билирубина в крови (общего, непрямого и прямого), а также уробилиногена мочи имеет важное значение при дифференциальной диагностике желтух различной этиологии (рис. 16.5). При гемолитической желтухе ( надпеченочной ) вследствие повышенного гемолиза эритроцитов и разрушения гемоглобина происходит интенсивное образование непрямого билирубина в ретикулоэндотелиальной системе (см. рис. 16.5, б). Печень оказывается неспособной утилизировать такое большое количество непрямого билирубина, что приводит к его накоплению в крови и тканях. В печени при этом синтезируется повышенное количество прямого билирубина, который с желчью попадает в кишечник. В тонкой кишке в повышенных количествах образуется мезобилиноген и в последующем — стеркобилиноген. Всосавшаяся часть мезобилиногена утилизируется печенью, а резорбирующийся в толстой кишке стеркобилиноген выводится с мочой. Таким образом, для гемолитической желтухи в типичных случаях характерны следующие клинико-лабораторные показатели повышение уровня общего и непрямого билирубина в крови, в моче — отсутствие билирубина (непрямой билирубин не фильтруется почками) и положительная реакция на уробилиноген (за счет повышенного попадания в кровь и мочу стеркобилиногена, а в тяжелых случаях—и за счет мезобилиногена, не утилизирующегося печенью) лимонно-желтый оттенок кожных покровов (сочетание желтухи и анемии) увеличение размеров селезенки ярко окрашенный кал. [c.563]

Имеется сообщение [15] об исключительно чувствительной и специфической методике для определения групп —8Н, по которой в качестве титрующего агента используется Ag (Tris)" , где Tris обозначен три(оксиметил)аминоэтан. Титрование можно проводить в водных буферных нейтральных растворах, которые не денатурируют белки и не ускоряют скорость окисления групп —SH. Титрующие смеси с pH 7,4 готовят смешением 4 мл М. раствора три(оксиметил)аминоэтана с 3,4 мл 1 М HNO3 и 0,3 мл 1 М раствора КС1. После добавления необходимого количества тиола (около 1 мкМ) раствор доводят до 30 мл и титруют, используя насыщенный электрод Hg — HgO — Ва(0Н)2, который имеет потенциал —0,10 в относительно НКЭ. При титровании небелковых групп —SH в присутствии 0,01% желатины получают более воспроизводимые отсчеты тока. Этот метод дает сведения как о числе, так и об относительной реакционной способности групп —SH в таких нативных и денатурированных белках, как альбумины, ферменты и гемоглобины. [c.392]

Остатки природных белков, составляющие группу примерно из 20 аминокислот, все имеют I (/е с>)-конфигурацию, кроме глицина, у которого R = Н (Зангер и Смит приводят список этих кислот и используемые сокращения [1785]). По-видимому, отдельные d ( ел /го)-кислоты входят в состав некоторых низших организмов. Мы не будем здесь касаться d-кислот, хотя они и представляют определенный интерес. Это следует, в частности, из результатов исследования оптической активности синтетических полипептидов. Белки построены в основном из трех-четырех различных остатков, но в меньшем количестве в молекулу входят также еще пятнадцать или больше других кислот. Простейш ий белок, инсулин, состоит из 106 аминокислотных единиц, гемоглобин — из 580. [c.254]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология