Цитоплазма окрашивание

Романовского яркое пурпурно-красное окрашивание клеточных ядер прц i синем цвете протоплазмы., хотя кислый краситель эозин окрашивает цитоплазму в розовый цвет). [c.13]

Мацерация. В процессе приготовления препаратов давленой ткани большое значение для качества препаратов имеет мацерация тканей перед окрашиванием. Мацерирующие жидкости просветляют цитоплазму и растворяют клеточные стенки, помогая клеткам свободно разъединяться при раздавливании. [c.186]

Добавление к раствору кармина 1—2 капель уксуснокислого железа повышает быстроту и интенсивность окрашивания. Но избытка железа следует избегать, так как оно вызывает потемнение всей цитоплазмы. [c.187]

Сафранин Красный Ядра лигнин и суберин у растений используется в основном для срезов растительных тканей в сочетании со светлым зеленым для окрашивания цитоплазмы [c.214]

Таким образом, можно отметить значительные различия мутантов по сравнению с контролем и между собой. В точке роста стебля эти различия касаются прежде всего величины того интервала pH, при котором наблюдается одновременное окрашивание двумя красителями. Наиболее широкой ИЭЗ обладает мутант 925-25а, причем в отношении всех трех компонентов клетки — цитоплазмы, ядра и ядрышка. Менее широкой ИЭЗ отличается мутант 925-10. [c.191]

Появление более тонких методов исследования субклеточных компонентов в первые десятилетия этого века позволило выяснить локализацию обоих типов нуклеиновой кислоты (ДНК и РНК) в клетке. Было обнаружено, что именно ДНК является тем веществом, которое обусловливает то характерное окрашивание части ядра гистологическим красителем, на основании которого эта часть ядра была первоначально названа хроматином . Дальнейшее исследование показало, что ДНК действительно является главной составной частью хромосом, в которых она связана с белком, масса которого в хромосомах в три-четыре раза превышает массу ДНК. В отличие от ДНК, которая обнаруживается главным образом в ядре, основная масса РНК локализована в цитоплазме. Однако небольшая часть клеточной РНК находится в ядре. Она сосредоточена там в ядрышке, которое характеризуется чрезвычайно высокой концентрацией РНК. [c.44]

Фиксированные по Боуэну препараты лучше всего окрашиваются разведенными растворами основных красителей. Подходят для этого 0,01%-ные растворы кристаллического фиолетового, тионина или метиленового синего, которыми прокрашивают в течение 1—5 мин. Точное время окрашивания определяют в предварительных экспериментах. Для окрашивания цитоплазматических включений могут применяться другие красители (разд. 3.3.11). Основные красители прокрашивают богатую рибосомами цитоплазму преимущественно в хорошо сохранившихся, фиксированных по Боуэну клетках нуклеоплазма не окрашивается, она негативно выявляется точно так же, как и при фазово-контрастной микроскопии живых клеток. Описанный способ фиксации не годится для окраски нуклеоплазмы по Гимзе, даже после обработки рибонуклеазой или кислотного гидролиза. [c.49]

За последние три десятилетия XIX в. в изучении клеточной основы жизни были достигнуты выдающиеся успехи. Ряд исследователей, главным образом немецких, открыли, что гаметы представляют собой клетки и что клетка — это не просто комочек однородного вещества, а некая структура, состоящая из ядра и цитоплазмы. Благодаря усовершенствованию микроскопов и разработке специальных методов окрашивания стало воз- [c.33]

Вопрос о структурной организации цитоплазмы уже очень давно вызывает споры среди цитологов. Ранние микроскопические наблюдения над живыми клетками показали, что цитоплазма-это вязкая жидкость, консистенция которой может изменяться от более жидкой до состояния, напоминающего пластичную твердую массу. В период между 1870 и 1885 гг. благодаря развитию методов фиксации и окрашивания клеток широко распространилось мнение, что цитоплазма содержит разветвленную трехмерную сеть белковых нитей. Эту точку зрения энергично оспаривали некоторые гистологи, утверждавшие, что наблюдаемая после фиксации сетчатая структура цитоплазмы есть не что иное, как артефакт-результат коагуляции белков в процессе приготовления препаратов. Сейчас, спустя почти 100 лет, все еще можно слышать подобные возражения, хотя речь идет уже о значительно более тонких нитях, увидеть которые можно только с помощью электронного микроскопа. [c.126]

На основании собственного опыта мы считаем, что лучшим способом оценки активности и специфичности конъюгатов может быть пробное окрашивание образцов клеток, их мембран или цитоплазмы. Действительно, классические контроли специфичности окрашивания, такие, как торможение избытком немеченых антител или адсорбция антисыворотки соответствующим антигеном, очень часто практически неосуществимы. В этих случаях однотипное окрашивание фиксированных мазков, приготовленных из клеток какой-либо другой ткани или другого вида, свидетельствуют о неспецифичности конъюгата. [c.172]

Представив себе способы защиты организма от вторжений, познакомимся с самими защитниками. Их переднюю линию составляют циркулирующие в крови лейкоциты. Под этим общим названием объединяются клетки разной специализации. Это, во-первых, гранулоциты, или, как их еще называют, полиморфноядерные лейкоциты. Первое название связано с наличием в цитоплазме гранулоцитов множества мелких гранул, очень похожих на лизосомы, второе отмечает причудливое разнообразие форм сегментированных ядер этих клеток. По характеру окрашивания гранулоциты подразделяют на эозинофилы, которые красятся только кислыми красителями (например, эозином), базофилы, которые окрашиваются только основными красителями, и нейтрофилы, которые можно выявлять красителями как кислой, так и основной природы. [c.86]

Хромовую кислоту готовят растворением в воде хромового ангидрида СгОз — сильного окислителя, представляющего собой темноокрашенные кристаллы, очень гигроскопичные и легкорастворимые в воде. Она проникает в объекты не очень быстро, коагулирует белки, сохраняет детали строения ядра, цитоплазмы, а также митохондрии и комплекс Гольджи. После фиксации хромовой кислотой объект необходимо тщательно промыть водой, иначе образуется осадок, мешающий окрашиванию тканей. [c.62]

Иммунофлуоресцентное окрашивание иммуноглобулина в цитоплазме плазматических клеток. [c.31]

Работа 5. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ СЕМЯН ПО ОКРАШИВАНИЮ ЦИТОПЛАЗМЫ [c.10]

Вводные пояснения. При повреждении растительной ткани увеличивается сродство цитоплазмы к красителям. На этом основаны методы определения жизнеспособности семян по окрашиванию их зародышей витальными красителями. Жизнеспособными считаются те семена, зародыши которых не окрашиваются. [c.10]

Применение ацето- или пропионоорсеина дает очень четкое контрастное окрашивание хромосом на фоне светлой цитоплазмы. Окрашивание цитоплазмы наблюдается лишь в очень редких случаях. [c.187]

Ядро — самая крупная структура в большинстве клеток оно легче всех других структур различается в световом микроскопе (особенно после соответствующего окрашивания или при использовании фазового контраста) и оно же было первой клеточной органеллой, выделенной в значительных количествах (Мишер, 1871 г.). По большей части в клетке бывает только одно ядро. Это тельце приблизительно сферической формы диаметром около Ъ мк я объемом 45 мк . Оно окрун еио трехслойной ядерной мембраной или оболочкой (толщиной около 75 А), которая отделяет его от цитоплазмы. Разделение, однако, не является полным, так как мембрана может быть пронизана многочисленными порами или отверстиями кроме того, во многих клетках ядериая мембрана связана с другой цитоплазматической структурой — эндоплазматической сетью (см. ниже). Возможно, что именно через эти поры, имеющиеся в ядерной мембране, и переходят в клет- [c.240]

Некроз — местное отмирание тканей — обнаруживается на гистологических препаратах прежДе всего по изменениям окрашивания тканей, прекращению митоза, изменению нормального расположения хроматина внутри ядер и грануляции цитоплазмы пораженных клеток. Характерной особенностью некроза у насекомых является распад вдшечного эпителия на разобщенные шаровидные клетки (дезинтеграция эпителия), что является собственно аналогией с гангреной высших организмов. [c.32]

Для лучшего раздавливания объектов рекомендуется обработать их после окраски 5%-ным водным раствором цитазы (фермент пищеварительной железы виноградной улитки используются растертые высушенные зобы). Обычно применение ацетокармина дает возможность получать четко окрашенные хромосомы на фоне слабо окрашенной цитоплазмы. В том случае, если хромосомы красятся плохо, применяют протравливание в железо-аммоний-ных квасцах, в результате чего достигается достаточная степень контрастности в окрашивании хромосом и цитоплазмы. Для этого объект перед окрашиванием помещают на 5—10 минут в 2—4%-ный водный раствор железоаммонийных квасцов, промывают и окрашивают, как описано выше. [c.187]

Разбавленный раствор йода в йодистом калии (Хг/К ) можно использовать для окрашивания крахмала в тканях в темно-синий цвет. Крахмал — это углевод, запасаемый обычно в растительных клетках в виде мелких зерен. Крахмальные зерна легко наблюдать, если провести по предметному стеклу разрезанным клубнем картофеля, а затем окрасить мазок раствором Ь/К . Помимо крахмала раствор Тг/К окрашивает также лигнифицированные ткани (такие, как ксилема и склеренхима) в ярко-желтый цвет, а нелигнифицированные — в бледно-желтый. Ядра в клетках выглядят при этом более яркими, чем цитоплазма. [c.216]

Та типичная клетка, которую мы до сих пор рассматривали и которая изображена схематически на фиг. 4, представляет собой клетку эукариотического типа. Такая клетка является основной единицей не только всех высших, многоклеточных животных и растений, но также и таких низших, одноклеточных организмов, как грибы, простейшие и водоросли. Изобретение в 30-х годах электронного микроскопа, разрешающая способность которого Б сто раз превышает разрешающую способность светового микроскопа, и последующее появление более тонких методов окрашивания и приготовления препаратов дали возможность разглядеть гораздо больше деталей строения эукариотической клетки. На фиг. 20 показана электронная микрофотография ядра и окружающей его цитоплазмы клетки летучей мыши. На этой фотографии хорошо видна двухслойная структура ядерной мембраны, а также отверстия, или поры, в этой мембране, через которые ядро сосбшается с цитоплазмой. Можно видеть, что находящиеся в цитоплазме митохондрии, как и ядро, окружены мембраной. Но самсе важнее, что те цитоплазматические структуры, которые на основании данных световой микроскопии принято было называть вакуолями , оказались на электронных микрофотографиях сетью удлиненных, тонких образованных мембранами структур. Эта сеть, названная ждоплазматической сетью, представляет собой сложную систему впячиваний наружной мембраны. Таким образом, полость вакуоли на самом деле непосредственно связана с внеклеточной средой. Темные точки, которые, как можно видеть, выстилают эндоплазматическую сеть, — это рибосомы, маленькие частипы, состоящие примерно из одинаковых количеств белка и РНК. В рибосомах локализовано около двух третей всей цитоплазматической РНК. [c.44]

Методы окрашивания могут быть теми же, что и для препаратов, фиксированных по Боуэну. Как и в том случае, цитоплазма окрашивается основными красителями, такими, как тионин, а нуклеоплазма не окрашивается. Однако нуклеоплазма имеет вид более узких пятен, чем при фазово-контрастной микроскопии живых клеток. Фиксированные OSO4 препараты пригодны для окрашивания нуклеоплазмы по Гимзе либо после гидролиза рибонуклеазой (100 мкг/мл в 1 мМ MgS04 в течение 30 мин), либо после гидролиза кислотой. Последний метод состоит из следующих стадий. [c.51]

Первичный анализ экспрессируемых в дрожжевой системе чужеродных белков проводят с помощью электрофореза в геле. Если эффективность экспрессии белка достаточно высока, соответствующую полосу в геле можно визуализировать кумасси голубым или путем окрашивания серебром. При низком уровне экспрессии придется использовать вестерн-блот-анализ с антителами к данному белку. Далее необходимо провести биологический анализ для того, чтобы подтвердить наличие у экспрессируемого дрожжевой клеткой продукта ожидаемой биологической активности. Нередко белки, продуцируемые в цитоплазму, не обладают соответствующей активностью. Секреция экспрессируемого продукта в среду помогает преодолеть эти трудности. [c.236]

В последней четверти XIX в. в результате детальных микроскопических исследований и благодаря применению открытой тогда 1ЮВ0Й техники специфичного окрашивания было довольно подробно изучено сложное поведение хромосом в процессе клеточного деления у простейших и у высших организмов. В эукариотических клетках помимо ядра и цитоплазмы были открыты и другие структурные единицы и органеллы — цитоплазматическая мембрана, различного рода вакуоли, ядрышко, центриоли и так называемый аппарат Гольджи [301. [c.41]

В то время как функции сократимого кольца и опоясывающих десмосом достаточно ясны, роль других систем актиновых филаментов не столь очевидна. Хорошим примером могут служить организованные пучки таких филаментов, называемые напряженными нитями,-характерные компоненты цитоскелета культивируемых клеток (рис. 10-60). Они имеют толщину 0,5 мкм и длину около 5 мкм, содержат наряду с актином некоторые другие белки и располагаются в цитоплазме у нижней (прикрепленной к подложке) поверхности клетки. Эти волокна можно отделить от других клеточных компонентов, и в изолированном виде они способны сокращаться в присутствии АТР. Особенно четко напряженные нити выявляются при иммунофлуоресцентном окрашивании (рис. 10-61), и с помощью этого метода было показано, что они содержат актин, миозин, а-актинин и тропомиозин. Некоторые из этих белков, включая миозин, располагаются вдоль волокна с определенной периодичностью, однако детали строения всего этого комплекса (как, впрочем, и других сократительных систем немышечных клеток) остаются неясными. Тем не менее нам все же кое-что известно о свойствах немышечного миозина. [c.115]

Окрасить ДАФИ в концентрации 0,1 мкг/мл при 37 °С. После 15 мин инкубации окрашивание оказывается слабым, но флуоресценцию цитоплазмы легче выявить после кратковременной инкубации, чем после 60 мин инкубации, когда флуоресценция ядер становится интенсивной. [c.119]

Рис. 9.2. Флуоресцентное окрашивание микоплазмы. Клетки окрашивали Хехст 33 258, флуоресцирующим в комплексе с ДНК. А — клетки ЗТ6 можно видеть позитивное окрашивание цитоплазмы, особенно заметное в делящихся клетках. Б — не содержащие микоплазмы клетки PyY. [Содержащие микоплазму клетки ЗТ6 любезно предоставлены доктором Льюисом из Flow Laboratories.]

Концентрация рибосом определяется содержанием РНК в клетке и находится в коррелятивной зависимости от базофиль-ных свойств ее цитоплазмы (базофильные участки цитоплазмы, как и ядро, окрашиваются основными красителями). Наличие в клетке эргастоплазмы (от греч. ergaston — рабочий, вырабатывать и трансформировать) — базофильных участков основной плазмы — указывает на присутствие в ней большого количества рибосом, У быстрорастущих растительных, животных и бактериальных клеток содержание РНК (а следовательно, и особенности окрашивания) всегда коррелирует с концентрацией рибосом. [c.42]

Рис. 7.2. Микрофотография толстого среза в световом микроскопе при большом увеличении. Обратите внимание на гранулярное окрашивание и плотные частицы в вакуслизированных эноцитах в отличие от цитоплазмы в эноцитах цитоплазма жировых клеток гомогенна. I - эноцит, 2 жировая клетка.

Для апикальной цитоплазмы, от которой отходят микроворсинки, характерно присутствие многочисленных митохондрий (рис. 16.4, 16.11 и 16.14) на одномикронных срезах это заметно по интенсивному окрашиванию апикальной области толуидиновым синим (рис. 16.4). Обогащенная митохондриями область цитоплазмы простирается от основания гранулярной зоны до микроворсинок самая высокая концентрация митохондрий наблюдается в цитоплазматическом чехле, окружающем пучок микроворсинок, и внутри цитоплазматических тяжей, достигающих поверхности верхушки зубца (рис. 16.14, 4). Митохондрии хорошо контрастируются, варьируют по размеру и форме многие из них, особенно те, которые заключены в цитоплазматический чехол, удлиненные и извилистые. Значительное содержание митохондрий у апикального полюса верхушечных клеток указывает на высокие энергетические потребности какого-то определенного или всех этапов отложения магнетита. Этими этапами могут быть окончательное превращение внутриклеточного железа, транспорт железа через мембраны микроворсинок, осаждение ферригидрита между фибриллами матрикса и преобразование его в магнетит внутри матрикса. [c.115]

Анализ реплик замороженных сколов мембран саркоплазматического ретикулума, предварительно обработанных ванада-том, показал, что на выпуклых полумембранах (см. рис. 16) возникают своеобразные вмятины, или углубления. Создается впечатление, что полипептид АТФазы был глубже утоплен в липидный матрикс. В то же время с помощью негативного окрашивания мембран установлено, что ножка АТФазы (см. рис. 16) после обработки саркоплазматического ретикулума ванадатом становится короче и основная часть фермента, выступающая в цитоплазму, локализуется ближе к мембране. Эти данные косвенно свидетельствуют о том, что при кон-формационном переходе АТФазы, связанном с изменением сродства к Са +, происходит ее перемещение в глубь мембраны. [c.61]

Для рассматриваемого способа окрашивания характерно протравливание срезов л<елезоаммоиийными квасцами. При последующем действии красителя образуется черный железогема-теиновый лак, который неодинаково удерл<ивается различными структурами клетки. Окраска сохраняется многие годы. Цитоплазму, ядрышки и оболочку можно подкрашивать сразу после дифференцировки 1%-м раствором эозина. [c.87]

Окрашивание ацетофуксином. Окрашивают объекты в ацетофуксине в закрытых бюксах в течение 1—3 ч. Давленый препарат готовят в 30%-й уксусной кислоте, которая способствует обесцвечиванию цитоплазмы. Хромосомы окрашиваются в темно-фиолетовый цвет. [c.100]

Соединительнотканная тучная клетка человека на гистологическом срезе. Видна темно-голубая цитоплазма с лиловыми гранулами. Окрашивание альциа-новым синим и сафранином, х 600. (Фото любезно предоставлено д-ром T.S. Orr.) [c.41]

Рутинная окраска. Для рутинного окрашивания необходимо ото-1ать 2—3 препарата, содержащих достаточное количество мета-азных пластинок с сохранившейся цитоплазмой (рис. 1, см. лейку). Окрашивание производят в течение 5—7 мин 1 %-ным (асителем Гимза ( Мегск ), приготовленным на фосфатном буфере Н 6.8). Краску смывают проточной холодной водой, препараты . 1сушивают на воздухе и заключают в канадский бальзам. Получен- >1е препараты используют для определения количественных карио- [c.81]

Дифференциальное окрашивание на О-диски было впервые предложено Сибрайт [4], после чего неоднократно модифицировано многими авторами [5—7]. О-окрашивание хромосом является наиболее распространенным и информативным из всех методов дифференциального окрашивания. С его помощью определяют гомологи нормальных хромосом и структурно перестроенные хромосомы. Для проведения О-окрашивания отбирают препараты, содержащие достаточное количество метафазных пластинок без цитоплазмы [c.82]

Многие гранулы, окрашивающиеся Суданом III, или Суданом черным В (0,3 %-й раствор в 70 %-м растворе этилового спирта), состоят из поли-р-оксимасляной кислоты. Для выявления полИ 3 оксимасляной кислоты готовят препарат клеток из 24-часовой культуры. Мазок подсушивают на воздухе, фиксируют над пламенем горелки, окрашивают су-даном черным В 5...15 мин краситель может при этом высохнуть, но это не имеет значения. Затем краситель смывают, препарат подсушивают фильтровальной бумагой и обрабатывают ксилолом, несколько раз погружая в него стекло. Время обесцвечивания не должно быть более 1 мин. Дополнительное окрашивание препарата проводят 0,5 %-м водным раствором сафранина 5...10 с. Включения поли-р-оксимасляной кислоты выглядят как черно-синие гранулы в розовой цитоплазме клеток. [c.37]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология