Контрастное окрашивание

ВИРИРОВАНИЕ ФОТОГРАФИЧЕСКОЕ (тонирование) — превращение черно-белого серебряного изображения в окрашенное с художественной целью или для увеличения плотности и контрастности изображения. В. ф. осуществляют превращением серебра в окрашенное соединение заменой серебра другим металлом, осаждением на серебре соединений другого металла, окрашиванием серебра красителем, изменением дисперсности серебра. Для осуществления В. ф. изображение сначала отбеливают раствором окислителя и галогенида щелочного металла. Образовавшийся галогенид серебра обрабатывают растворами сульфидов для окрашивания изображения в желто-коричневый цвет заменяют серебро золотом, платиной, ураном, свинцом, ванадием и др. Цветовой оттенок зависит от дисперсности серебра, температуры тонирующего раствора, продолжительности обработки. [c.54]

Контрастное окрашивание красителями относится к числу неспецифических реакций этот метод обнаружения также может оказаться очень полезным. [c.96]

Сравнительная оценка модификации с применением фазово-контрастной микроскопии и метода А. С. Разумова при определении общего числа микроорганизмов в одних и тех же пробах воды Горьковского водохранилища показала довольно близкие результаты. Однако общее число бактерий, определяемое методом фазовоконтрастной микроскопии, выше (в среднем на 15%), чем полученное прямым счетом с окрашиванием. [c.85]

Контрастность изображения повышается при работе без пленки-подложки, т, е. при нанесении материала непосредственно на сетку. Усиливается контрастность отдельных фаз и при искусственном их окрашивании путем введения в объект частичек некоторых металлов, дающих иное рассеяние электронов, чем сама фаза. [c.134]

Для выявления структуры меди, латуни, оловянистой бронзы, монель-металла. Этот реактив также дает различное окрашивание зерен феррита в стали Для выявления структуры латуни и бронз. Иногда для получения более контрастной структуры после травления в этом реактиве применяется травление в реактиве № 9. Это особенно целесообразно для алюминиевой бронзы. Применяется в свежеприготовленном виде [c.48]

Фон поверхности - окрашивание проявителя при проявлении контрастного пенетранта или свечение проявителя при проявлении люминесцентного пенетранта, вызванное микрорельефом бездефектной поверхности объекта контроля. [c.571]

Фильтрацию воды через мембранный фильтр проводят без фильтровального прибора. Необходимый объем воды при помощи пипетки постепенно и равномерно наносят на поверхность мембранного фильтра, помещенного в чашку Петри на подкладку из нескольких слоев стерильной фильтровальной бумаги, которая впитывает воду, прошедшую через мембранный фильтр. Мембранный фильтр затем пинцетом перекладывают на чашки Петри с питательным агаром с 0,0005% ТТХ. ТТХ вводят в расплавленный агар перед его использованием. Колонии на мембранных фильтрах выращивают при 37°С в течение 24 ч. ТТХ в питательном агаре выполняет роль красителя для окрашивания колоний и получения достаточной контрастности, что облегчает и ускоряет подсчет. Для большей точности результатов счет колоний целесообразно проводить с помощью стереоскопического микроскопа. [c.73]

Дальнейшие модификации метода прямого счета микроорганизмов по Разумову касались усовершенствования этапа окрашивания микроорганизмов с целью сокращения времени анализа, получения большей контрастно- [c.82]

Биологические материалы отличаются высокой акустической контрастностью без использования каких-либо -методов окрашивания. С помощью сканирующей акустической микроскопии исследовали живые красные кровяные клетки и фибробласты цыпленка [86]. Этот хорошо разработанный метод, очевидно, можно успешно применять и во многих не менее интересных приложениях. [c.452]

Применение. В электронной микроскопии для дополнительного окрашивания с целью увеличения контрастности исследуемых объектов [1]. В аналитической химии для количественного определения иода в присутствии хлора и для микрохимического анализа галогенидов и многих металлов, например, Аи, Pt, U, Th. [c.378]

Окрашивание по Граму. Клеточная стенка, по-видимому, ответственна также за окрашивание по Граму. Способность или, наоборот, неспособность окрашиваться в темно-фиолетовый цвет при использовании метода, предложенного в 1884 г. Грамом, служит важным таксономическим признаком, с которым коррелируют другие свойства бактерий. Процедура окрашивания по Граму начинается с обработки фиксированных бактериальных клеток основным красителем кристаллическим фиолетовым. Затем следует обработка раствором иода. Иод образует с кристаллическим фиолетовым комплекс, нерастворимый в воде и плохо растворимый в спирте и ацетоне. После этого клетки дифференцируют , обрабатывая их спиртом грам-положительные клетки удерживают при этом комплекс краситель—иод и остаются синими, а грам-отрицательные обесцвечиваются. Для того чтобы сделать их видимыми, их дополнительно окрашивают контрастным красителем фуксином. [c.50]

В определенных случаях может рассматриваться как селективная реакция иона А1 + с алюминоном. К крупинке пробы, содержащей алюминий, добавляют крупинку хлорида аммония и столько же порошка алюминона. Тщательно растирают и смачивают смесь каплей воды. В присутствии алюминия появляется розово-красное окрашивание, если его нет, продукт окрашен в коричнево-красный цвет. Более контрастна реакция при замене хлорида аммония на карбонат. Пробы, содержащие железо, предварительно следует разложить нагреванием с сернокислым аммонием. Охлажденную массу смешивают с винной или лимонной кислотой, добавляют равное количество карбоната аммония, энергично растирают, прибавляют алюминон и продолжают растирание. Через некоторое время в присутствии алюминия появляется вишнево-красное окрашивание. При увлажнении реакционной массы дыханием и легком нагревании окраска появляется скорее. [c.124]

Окрашивание облученного полиэтилена, так же как и обычного, наряду с приданием изделиям хорошего внешнего вида преследует во многих случаях сугубо технические цели. Одновременно с решением эстетических задач обеспечивается необходимая маркировка, контрастность, маскировка, имитация. Обширная номенклатура красителей, рекомендуемых для окрашивания полиэтилена, приведена в ГОСТ 16338—70 и ГОСТ 16337—70. Сведения об окрашивании полиэтилена содержатся в работах [358—361]. В работе [362] обобщены результаты радиационных испытаний некоторых органических красителей и неорганических пигментов. Отсутствие у полиэтилена сродства ко многим красителям затрудняет их окрашивание. Основным способом окрашивания является механическое введение красителей и пигментов в состав композиций. Предложены методы окрашивания полиэтилена, основанные на химическом взаимодействии красителей со специально вводимыми в полиэтилен компонентами. Окрашивание может быть осуществлено введением в полиэтилен ионов металлов (никеля, хрома, кобальта, магния, марганца, железа, ванадия, меди, алюминия, цинка, стронция), способных к образованию комплексов с азокрасителями [363—367]. В этом случае используются, как правило, галогениды, сульфаты, оксалаты, фосфаты, бензоаты, салицилаты, цианиды, ацетаты, цитраты, стеараты металлов и др. [c.128]

Фиксированные по Боуэну препараты лучше всего окрашиваются разведенными растворами основных красителей. Подходят для этого 0,01%-ные растворы кристаллического фиолетового, тионина или метиленового синего, которыми прокрашивают в течение 1—5 мин. Точное время окрашивания определяют в предварительных экспериментах. Для окрашивания цитоплазматических включений могут применяться другие красители (разд. 3.3.11). Основные красители прокрашивают богатую рибосомами цитоплазму преимущественно в хорошо сохранившихся, фиксированных по Боуэну клетках нуклеоплазма не окрашивается, она негативно выявляется точно так же, как и при фазово-контрастной микроскопии живых клеток. Описанный способ фиксации не годится для окраски нуклеоплазмы по Гимзе, даже после обработки рибонуклеазой или кислотного гидролиза. [c.49]

Первичная (собственная) люминесценция наблюдается без предварительного окрашивания объекта, вторичная (наведенная) возникает после окраски препаратов специальными люминесцирующими красителями—флюорохрома-м и. Люминесцентная микроскопия по сравнению с обычными методами обладает радом преимуществ возможностью исследования живых микроорганизмов и обнаружения их в исследуемом материале в небольших концентрациях вследствие высокой степени контрастности. [c.15]

Описаны приемы локализации протеолитической активности после электрофореза в крахмальном [655, 1120] и полиакриламидном гелях [57] с использованием методики включения субстрата в гель. Возможность применения этой методики для указанной цели была недавно изучена [37]. Чтобы предотвратить миграцию белкового субстрата вовремя электрофореза, эти авторы использовали в качестве субстрата казеин, осажденный кислотой. Нерастворимый казеин обрабатывали ультразвуком и образовавшиеся мельчайшие частицы смешивали с гелеобразующим раствором. Конечная концентрация казеина в геле составляла 0,1% (масса/объем). После электрофореза гель инкубировали в течение 2—12 ч при 37°С в 0,1 М буфере трис-НС1 (pH 7,5). Казеин пригоден только при электрофорезе в кислой среде, поскольку в щелочной среде он мигрирует. В этом случае вместо казеина можно использовать препарат гемоглобина, приготовленный путем осаждения и обработки ультразвуком. Окрашивание гелей белковым красителем (напри-, мер, нигрозином) увеличивало контрастность полос. [c.303]

Объект можно сделать более контрастным, либо почти до предела закрывая диафрагму конденсора, либо окрашивая клетки, либо применяя фазово-контрастное устройство. Первое нежелательно, так как снижает апертуру конденсора и тем самым заметно уменьшает разрешающую способность микроскопа. Окрашивание препарата дает хорошие результаты, но в большинстве случаев оно осуществляется после фиксации микроорганизмов, что не всегда желательно. Основная ценность метода фазового контраста состоит в том, что он дает возможность наблюдать живые объекты, не прибегая к их фиксации и окрашиванию. Применение фазово-контрастного устройства не позволяет увеличить разрешающую способность микроскопа, но дает возможность увидеть прозрачные объекты более четко и даже выявить некоторые структуры и включения в клетках крупных бактерий. [c.91]

Контрастное окрашивание диффузионных структур на кремнии проводят 49%-ным раствором HF с добавкой 0,1% 70%-ной HNOg. При этом р-область селективно окрашивается вследствие более интенсивного оксидирования. Для этого же пригоден травитель СР-4А (см. работу 12). Толщину диффузионного слоя рассчитывают по формулам h = dsina или h = liga в зависимости от способа наблюдения (см. работу 14). Экспериментально определенную глубину диффузионного слоя сравнивают с теоретически рассчитанной- [c.165]

Контрастное окрашивание слоя. Желтый хииондиазид при экспонировании обесцвечивается (см. рис. II. 1) в местах действия света, но поскольку наряду с перегруппировкой идет и разложение, слой приобретает красноватый оттенок. Однако отличие цвета таких участков слоя от исходного невелико, особенно в желтом свете. При последовательном экспонировании шаблонов (одного или нескольких) на одну пластину из-за плохого цветового контраста возникает брак вследствие неверного совмещения, повторного экспонирования, например при перерывах в работе. Кроме того, готовый резистный слой часто обладает недостаточным контрастом по отношению к подложке, особенно неокрашенной и блестящей. Для придания цветового контраста готовому слою на подложке в композицию вводят 0,2—0,6 % от массы сухих компонентов различных красителей. При проявлении они не должны вымываться из слоя. Для создания контраста сразу после экспонирования необходимо обеспечить изменение цвета красителя в местах действия света. С этой целью вводят красители-иидика-торы, меняющие цвет в области pH 2,5—6,5 [пат. ФРГ 1447011], и вещества, генерирующие кислоту при фотолизе. Уже сама появляющаяся в слое при экспонировании замещенная инденкарбоновая кислота понижает pH системы, однако это понижение pH часто недостаточно для создания цветового контраста. При фотосольволизе галогенангидридов 4-сульфо-2-диазо-1-нафталинона образуется 2 моль сильной кислоты [например, пат. США 3969118 пат. ФРГ 2331377], однако слои с добавкой такого хинондиазида обладают меньшим сроком хранения [c.91]

Наиболее контрастное окрашивание наблюдалось прн добавке этанола. Преаваритель-ное нагревание растворов также улучшало контрастность окраски шкалы палладия. [c.120]

Большинство низших алифатических спиртов представляет собой летучие соединения, которые нельзя хроматографировать непосредственно на бумаге. Поэтому их обычно переводят в производные, например 3,6-динитрофталаты, 3,5-динитробензоаты, Л Л -диметил-л-аминобензолазобензоаты, ксантаты, которые легко поддаются обнаружению (табл. 3.6). Высшие алифатические спирты нелетучи, но обычно настолько липофильны, что их можно хроматографировать только в обращенно-фазных системах. Основная трудность в хроматографии этих соединений — их обнаружение. Для этого пригодны далеко не все реагенты. Высшие алифатические спирты можно обнаружить посредством контрастного окрашивания родамином В (ОР-11) их легко перевести в производные, например аллилуретаны, и обнаруживать в виде производных [64]. [c.101]

Применение ацето- или пропионоорсеина дает очень четкое контрастное окрашивание хромосом на фоне светлой цитоплазмы. Окрашивание цитоплазмы наблюдается лишь в очень редких случаях. [c.187]

На адсорбционном связывании молекул кислых органических красителей на поверхности белковых веществ основано окрашивание последних, чем широко пользуются для качественных и количественных определений при электрофорезе на бумаге. Избыток красителя необходимо вымыть из бумаги, так чтобы окрашенными оставались только белковые вещества следует выдерживать стандартные условия. На адсорбционных явлениях основано, по-видимому, так называемое контрастное окрашивание липоидных веществ, предложенное РСауфманом. [c.168]

Фазовоконтрастная микроскопия используется для повышения контрастности изображения. В световой микроскопии высокая контрастность объекта обусловливается окрашиванием отдельных его составных компонентов (поляризационная окраска и окраска, возникающая в результате травления препарата) и оптическим эффектом на границе раздела фаз, В электронном микроскопе повысить контрастность изображения этими способами возможно. Контрастность изображения в электронном микроскопе определяется степенью различия в рассеянии электронов отдельными составными частями (кристаллами и т. п.) препарата. Частй недостаточная контрастность отдельных фаз объекта не позволяет в полной мере использовать разрешаюш,ую способность электронного микроскопа. [c.134]

Рис. 2.15. Взаимодействие растительных клеток и агробактерий при совместном культивировании, Л. В присутствии пораиеииых растительных клеток агро-бакт рии образуют большое число целлюлозных фибрилл, которые вызывают соединение клеток, Б. Окрашивание снецифичны.м для целлюлозы красителем — тинопалом — ясно демонстрирует состав фибрилл. Прикрепление агробактерий к поверхности растительной клетки, которое можно наблюдать с помощью фазово-контрастного (Х1300, В) и сканирующего электронного микроскопов

Модификация Эрлиха (Ehrli h, 1956). С целью повышения контрастности между бактериями и фильтром последний окрашивают перед фильтряпирй, погружая на 5—10 с в раствор фуксина (0,3 мл насыщенного раствора в 10 мл дистиллированной воды). После фиксации в 95% спирте фильтр отмывают в дистиллированной воде в течение 10—15 мин. Окрашивание бактерий производят 0,01 % раствором предварительно профильтрованного метиленового синего (pH 10), накапывая краску на фильтр на 2—5 мин непосредственно на столике фильтровального аппарата. Краску фильтруют, мембранный фильтр подсушивают 10 мин при 60—70°С. [c.84]

Модификация метода прямого подсчета с применением фазово-контрастной микроскопии. А. Г. Кокина (1956), А. С. Разумов, Л. Е, Корш (I962), Ri hards, КгаЬек (1954) использовали фазово-контрастную микроскопию для подсчета общего числа бактерий, предварительно сконцентрированных на мембранном фильтре. После высушивания мембранного фильтра (без окрашивания) готовят препарат и просчитывают бактерии под микроскопом с помощью фазово-контрастного устройства. При подсчете бактерий используют зеленый светофильтр, благодаря которому получается поле зрения спокойного зеленого цвета. Бактерии на зеленом поле выглядят довольно контрастно, как черные точки или палочки различных размеров. [c.85]

П ш е н и ц а и я ч м е и ь. Не у всех злаков различие люминесценции срезов семян в зависимости от их жизнеспособности выражено отчетливо. В таких случаях пользуются другим приемом люминесцентного ана лиза — окраской флуоресцентными красителями. Так, жизнеспособность семян пшеницы, р ки и ячменя определяют после предварительного окрашивания Срезов зародышей флуорохромами, увеличиваюхцимп контрастность свечения зародыша и эндосперма. Для окраски срезов зародышей пшеницы применялся водно-спиртовой раствор родамина 6 ЖДН концентрации 0,00005—0,0001 г/сл , а для окраски срезов ячменя — содовый раствор (1% N33003) акридинового оранжевого концентрации 0,0003- - [c.233]

В электронной микроскопии для окрашивания структур, слабо импрегни-рующихся осмиевой кислотой, а также для усиления контрастности исследуемых [c.423]

В заключение следует упомянуть, что изображения, содержащие участки различного цвета, можно получать на диазотпп-Бых материалах простыми приемами. Например, на экспонированный слой диазосоединения по шаблону наносят щелочные растворы различных азосоставляющих, в результате чего получаются участки изображения, окрашенные в разные цвета [8]. Чрезвычайно широко применяются дпазотипньГе материалы на цветных подложках, что позволяет в сочетании с контрастирующими линиями изображения получать различные цветовые эффекты и значительно увеличить контрастность материала. С другой стороны, окрашенные в яркие тона подложки позволяют маскировать пожелтение фона отпечатков. В большинстве случаев при получении материалов этого типа светочувствительный раствор наносят на бумажную подложку, окрашенную предварительно минеральными пигментами или органическими лаками. Однако в некоторых случаях окрашивание фона можно осуществить в процессе проявления. Для получения, светокопий подобного рода рекомендуется в светочувствительный слой, содержащий диазосоединение и азосоставляющую, вводить вещества, которые при проявлении парами аммиака окрашивают подложку [9]. Образующийся в результате этой реакции краситель не отбеливается даже при интенсивном освещении. Для окрашивания подложки в желтый цвет в слой вводят калиевую соль титанофтористоводородной кислоты, которая взаимодействует с азосоставляющей, например с 2,3-диоксинафталин-б--сульфокислотой, и образует желтый краситель. [c.248]

Первое требование заключается в установлении достаточной контрастности между двумя типами блоков, чтобы можно было нх легко распознать. Это может быть достигнуто окрашиванием одного из блоков полибутадиенового или полиизопренового блока парами тетроксида осмия [17], а поливинилпирндинового блока — нитратом серебра [18]. Поскольку ни один из этих реагентов не окрашивает полистирол, полистирольные блоки появятся на микрофотографиях в виде светлых участков, а другие блоки — в виде темных. Второе требование электронографии состоит в необходимости приготовления достаточно тонких образцов, прозрачных для электронов, т. е. толщиной 100—2000 А. [c.213]

Большинство механических повреждений, таких, как истирание, разрушение от растяжения или трепания, вызывает продольное расш,епле-ние или фибриллирование волокон. Разрушение под действием кислот сопровождается поперечным растрескиванием 1204]. Сравнение образцов оксицеллюлозы, полученных окислением перйодатом, бихроматом и гипо-бромитом, показывает, что для каждого типа окисления имеется характерный рисунок фрагментации, но во всех случаях наблюдается поперечное расщепление микрофибрилл [188]. Оболочку вискозного шелка легко различить на тонких поперечных срезах, используя фазово-контрастную методику, причем не требуется ни окрашивания, ни какой-либо другой, обработки [208]. Анализ можно также провести с помощью водных растворов прямых 1127, 192, 194, 216] и основных красителей [16, 93]. Для этой же цели применяют восстановленное серебро [104, 124] и золото [124, 271]. Дисульфнновый синий VNS ( .I. 42045) различно окрашивает оболочку и сердцевину волокон, содержащих конденсационные смолы [137]. [c.302]

Для лучшего раздавливания объектов рекомендуется обработать их после окраски 5%-ным водным раствором цитазы (фермент пищеварительной железы виноградной улитки используются растертые высушенные зобы). Обычно применение ацетокармина дает возможность получать четко окрашенные хромосомы на фоне слабо окрашенной цитоплазмы. В том случае, если хромосомы красятся плохо, применяют протравливание в железо-аммоний-ных квасцах, в результате чего достигается достаточная степень контрастности в окрашивании хромосом и цитоплазмы. Для этого объект перед окрашиванием помещают на 5—10 минут в 2—4%-ный водный раствор железоаммонийных квасцов, промывают и окрашивают, как описано выше. [c.187]

Фиксация с последующим окрашиванием клеток и тканей— один из наиболее распространенных способов подготовки объектов к исследованию в цитологии и эмбриологии. Под действием химических фиксаторов (этиловый спирт, формалин, уксусная кислота и др.) в клетке прекращаются жизненные процессы, а ее химические компоненты осаждаются. После фиксации объект промывают. Дальнейшая обработка зависит от типа приготовления препарата. Можно окрасить материал сразу для изготовления временного препарата. Для получения тонких срезов толщиной в несколько микрометров объект обезвоживают, заключают в парафин и режут на микротоме. Срезы наклеивают на предметные стекла, освобождают от парафина и окрашивают. Красители подбирают так, чтобы повысить контрастность изображения отдельных структур, а в ряде случаев и выявить их химический состав, например ДНК, РНК, белки и др. Точное содержание химических веществ определяют на приборе — цитофотометре. [c.54]

Методы окрашивания могут быть теми же, что и для препаратов, фиксированных по Боуэну. Как и в том случае, цитоплазма окрашивается основными красителями, такими, как тионин, а нуклеоплазма не окрашивается. Однако нуклеоплазма имеет вид более узких пятен, чем при фазово-контрастной микроскопии живых клеток. Фиксированные OSO4 препараты пригодны для окрашивания нуклеоплазмы по Гимзе либо после гидролиза рибонуклеазой (100 мкг/мл в 1 мМ MgS04 в течение 30 мин), либо после гидролиза кислотой. Последний метод состоит из следующих стадий. [c.51]

Окраска капсул по методу Гинса. На конец предметного стекла микробиологической петлей наносят каплю черной туши, вносят в нее клетки, хорошо перемешивают и ребром покровного стекла делают мазок до всей поверхности стекла. Мазок высушивают на воздухе и фиксируют 5—10 мин смесью Никифорова или 3 мин абсолютным метанолом. Далее мазок окрашивают карболовым фуксином Циля, разбавленным водой в соотношении 1 3. Время окрашивания — 2—3 мин. Препарат промывают водой, высущивают на воздухе и микроскопируют с иммерсионной системой. На темно-сером фоне препарата контрастна выделяются розово-малиновые клетки бактерий, окруженные бесцветными капсулами. [c.104]

Заключение в глицерин—желатину для фазово-контрастной микроскопии или окрашивание препаратов гемалауном—эозином или метиловым зеленым — пиронином. [c.291]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология