Хлоропласты величина

Мембранные системы в хлоропласте состоят из ряда уплощенных мешков, которые наслаиваются друг на друга в виде стопок, образуя так называемую грану (рис. 8.8). Электроны могут направленно переноситься с одной стороны мембраны на другую так, что кислород выделяется внутри, а процесс восстановления происходит снаружи. Число молекул хлорофилла в каждом хлоропласте прямо зависит от величины поверхности мембран и составляет приблизительно 10 хлорофилльных молекул на хлоропласт. По-видимому, молекулы пигментов (преимущественно хлорофилла) должны распределяться в виде монослоев по поверхности мембран, создавая максимальную площадь поверхности пигмента для поглощения света и переноса энергии к особым участкам мембраны. Эксперименты с импульсным освещением показали, что скорость выделения кислорода у растений возрастает с ростом интенсивности света до определенного предела, соответствующего возбуждению одной из каждых 300 молекул пигмента. Однако этот результат не означает, что другие пигментные молекулы всегда неактивны, потому что квантовые выходы, измеренные при низких [c.232]

Репликация, транскрипция и трансляция геномов органелл. В хлоропластах и митохондриях ДНК представлена небольшими двухцепочечными молекулами, обычно кольцевыми, и не связана с гистонами. Таким образом, генетическая информация органелл содержится в структурах, весьма сходных с хромосомами прокариот, хотя и значительно меньших по размерам. В каждой органелле имеется множество копий ДНК (до 40—50 в некоторых хлоропластах). Кроме того, хлоропласты и митохондрии содержат аппарат транскрипции и трансляции, включая специфические для органелл рибосомы, которые меньше цитоплазматических 808-рибосом и близки по величине к 708-рибосо-мам прокариот. Синтез белка в органеллах ингибируется хлорам нико-лом и некоторыми другими антибиотиками, подавляющими этот процесс и у прокариот, но не влияющими на синтез белка в цитоплазме эукариотической клетки. Таким образом, хлоропласты и митохондрии обнаруживают ряд важных черт фундаментального сходства с прокариотическими клетками. Митохондрии обладают еще одной особенностью, характерной для клеток, но не для других компонентов клетки они образуются путем деления предсуществующих органелл. Это продемонстрировано также в отношении многих типов хлоропластов у водорослей. У высших растений зрелые хлоропласты развиваются из более простых структур — пропластид на стадии пропластид и происходит воспроизводство этих органелл. [c.49]

В митохондриальном матриксе, так же как и в строме хлоропласта, величина pH равна 8, но она создается за счет переноса протонов из органеллы наружу, а не в какой-то ее внутренний компартмент. Так как pH цитоплазмы поддерживается на уровне около 7,0, большая часть протонодвижущей силы на внутренней митохондриальной мембране создается не градиентом pH, а мембранным потенциалом. Однако и в митохондриях, и в хлоропластах каталитический компонент АТР-синтетазы находится в большом компартменте органеллы, который имеет pH 8,0 и заполнен растворимыми ферментами (соответственно в матриксе и в строме). Поэтому именно здесь образуется весь АТР органеллы (см. рис. 9-52). [c.46]

По величине и многим другим особенностям рибосомы бактерий сходны с рибосомами митохондрий и хлоропластов. Бактериальная клетка содержит примерно от 5000 до 50000 рибосом число их тбм больше, чем быстрее растет клетка. Во время активного синтеза белков на электронных микрофотографиях тонких срезов клетки можно видеть правильные цепочки рибосом. Это рибосомы, связанные наподобие бус на цепи мРНК их называют полирибосомами или полисомами. [c.22]

Уравнение (6.30) дает значение объема 1,4-10" см , который соответствует объему куба с ребром 2,4 мкм. Если мы сопоставим эту величину с объемом клетки (см. табл. 1-2) или органеллы, то увидим, что объем, захватываемый молекулой фермента за 1 с, составляет довольно заметную часть объема небольшой по размеру клетки, митохондрии, хлоропласта и т. д. [c.16]

Данная работа представляет собой обзор результатов, полученных в наших работах [5—8] количественный анализ спинового обмена макромолекул [7, 8] проводится с использованием нового теоретического подхода. Вначале излагаются способы определения величин Тх и и учета ядерной релаксации методом НН, затем рассматривается применение метода НН для изучения спинового обмена. макромолекул и регистрации выделения кислорода в хлоропластах гороха под действием света. [c.212]

Удерживание в неоднородном электрическом поле белков и нуклеиновых кислот с сохранением их биологической активности свидетельствует о возможной роли этого явления в живой клетке. Общеизвестно, что клеточная стенка неоднородна ио своему составу, а следовательно, и по диэлектрической проницаемости и имеет довольно высокий электрический потенциал [ б, 17, 474]. Мембраны клеточных органелл (митохондрий, хлоропластов) и бактерий содержат молекулярные электрические генераторы [87], причем величина генерируемой трансмембранной разности электрических потенциалов достигает существенных значений— 100--300 мВ. Поэтому вполне резонно допустить существование в клеточных структурах неравномерного неоднородного электрического поля, аналогичного создаваемому нами в эксперименте, с высокой напряженностью и градиентом потенциала, и предположить его влияние на процесс удерживания, локализацию и работу биологически активных соединений, особенно высокомолекулярных. [c.228]

В хлоропластах осенних листьев ивы также были обнаружены фенольные соединения (рис. 1,5), одно из которых идентифицировали как (- -)-катехин (Л/= 0,62). Два других вещества с меньшими величинами Rf и зеленовато-желтой флуоресценцией в УФ-свете являются, по-видимому, флавонолами. Следует отметить, что содержащиеся в хлоропластах фенольные соединения отсутствовали в надосадочной н идкости. [c.177]

Цифры, приведенные в табл. 35 (0,5—2,5% аскорбиновой кислоты в веществе хлоропластов), являются величинами того же порядка [251, 258], что и показатели концентрации витамина С в различных листьях (по данным Жиру, от 0,05 до 3% от сухого веса листьев). Содержание аскорбиновой кислоты сильно варьирует не только от вида к виду, но и с возрастом листьев, сезоном года и временем дня. [c.280]

Можно сделать независимый подсчет отношения хлорофилла к белку по микрофотографиям, показывающим, что хлоропласты занимают не более 20°/о всего объема листа. Полученная таким образом величина (18% вещества хлоропластов), возможно, соответствует действительности. Согласно фиг. 52, на гранулы приходится не более 30—40% объема хлоропласта в хлоропласте [c.392]

В митохондриальном матриксе, так же как и в строме хлоропласта, величина pH близка к 8, но она создается за счет переноса протонов из органеллы в цитозоль (pH около 7), а не в какой-то ее внутренний компартмент. Поэтому градиент pH относительно шл и протоно движущая сила на внутренней митохондриальной мембране, близкая к такой же силе на тишкоидной мембране хлоропласта, в основном создается за счет суммарного мембранного потенциала (см. разд. 7.1.7). Однако и в митохондриях, и в хлоропластах каталитический участок АТР-синтетазы находится в большом компартменте органеллы (соответственно в матриксе и в строме), который имеет pH около 8,0 [c.475]

Жидкий объем любого масштаба может подвергаться воздействиям гидростатической подъемной силы, возникающим однократно или многократно от многих и разнообразных видов и сочетаний физических процессов. Подъемная сила может возникнуть из-за разности плотностей в поле объемной силы, а разность плотностей образуется вследствие тепло- и массопереноса. В свою очередь тепло- и массоперенос, вызывающий появление подъемной силы, может быть обусловлен действием многих и разных механизмов. Например, даже кажущийся простым эффект возникновения подъемной силы, действующей на лист кукурузы, освещенный солнцем, оказывается достаточно сложным. Солнце нагревает лист, который для поддержания теплового равновесия (терморегулирования) может испарять водяной пар. В процессе фотосинтеза хлоропласт листа поглощает СОа из воздуха и выделяет Ог. Таким образом, в образовании результирующей подъемной силы одновременно участвуют перенос тепла и три процесса массопереноса. Эти процессы объединяются с переносом тепла излучением. Другой пример — потеря метаболической теплотымлекопитающими с поверхности их тел. Теплота тела порождает теплоперенос вблизи его поверхности. Но часто такое же по порядку величины воздействие оказывает потение. Испарения с поверхности тела увлажняют прилегающий слой воздуха. Таким образом, возникают две составляющие аэростатической силы, направленной вверх. [c.9]

А (l/ ie) = e[02]=0<9-10 с 1. Интересно отметить, что в темноте в хлоропластах кислорода нет, так как удаление кислорода откачкой или ферментативным способом, добавлением глюкозы и глюко-зоксидазы не изменяет величину Д. В то же время в липосомах для зонда (5) было измерено о[Оа] = (3- -5)-10 с [3, 6, 8]. Малая концентрация 0 в хлоропластах объясняется потреблением Oj в различных биохимических процессах ( дыхание растений). Зонд 6 не чувствует выделения кислорода (рис. 7, кривые [c.221]

Рибосомы состоят из двух субчастиц у бактерий это субчастицы 30S и 50S (рис. 2.19), образующие 708-рибосомы. По величине и многим другим особенностям рибосомы бактерий сходны с рибосомами митохондрий и хлоропластов. Бактериальная клетка содержит примерно от 50СЮ до 50000 рибосом число их тем больше, чем быстрее растет клетка. Во время активного синтеза белков на электронных микрофотографиях тонких срезов клетки можно видеть правильные цепочки рибосом. Это рибосомы, связанные наподобие бус на цепи мРНК их называют полирибосомами или полисомами. [c.43]

На основании этих экспериментов Рубен и Камен заключают, что первой стадией в фотосинтезе является энзиматическое карбоксилирование бесцветной молекулы, величина и концентрация которой близки к хлорофильной. К этому можно добавить, что это карбоксилирование происходит вне хлоропластов. [c.213]

Хлоропласты водорослей имеют различную величину п форму. Так, например, они имеют вид звезд (фиг. 50, В), полос (фиг. 50,/ ), или дисков (фиг. 50, А, Д) у некоторых видов наблюдались гиганты с линейными размерами до 100 л. Одноклеточная водорос.1ь hlorella, широко применяемая в исследованиях по фотосинтезу, имеет один колоколовидный хлоропласт, который покрывает внутреннюю часть клеточных стенок, оставляя лишь небольшую свободную поверхность протопласта. [c.360]

Некоторые реактивы (например, 10-процентный ацетон) заставляют гранулы собираться в одном углу хлоропласта [34]. По Хейтцу [27], гранулы представляют собой плоские диски. Это лучше всего видно на фотографиях, где они показаны сбоку (фиг. 52, Б). Большие диаметры гранул имеют величину от 0,3 — до 2 а [38]. Гранулы крупнее у тенелюбивых растений, чем у светолюбивых Б губчатой паренхиме гранулы крупнее, чем в столбчатой. [c.363]

По Нейшу [57], хлоропласты, разбухшие в дестиллированной воде, распадаются, и при этом освобождаются хлорофиллоносные гранулы (диски или сферы величиной в от размеров целого хлоропласта) гранулы набухают очень медленно и неделями не подвергаются распаду [27]. [c.363]

Результаты, полученные на микрофотографиях в ультрафиолетовом свете, были подтверждены наблюдениями с электронным микроскопом (см. фиг. 55). Тонкие диски или пластинки, обнаруживаемые этой фотографией, варьируют в диаметре от 0,4 до 2,5 [i, т. е. имеют ту же величину или крупнее, чем гранулы, но толщина их составляет всего 0,01—0,02 .. Кауше и Руска соглашаются с Менке, что эти пластинки могут иметь большее значение для структуры хлоропластов, чем сами гранулы. [c.365]

Главные составные части хлоропластов — белки и липоиды. В данном случае липоиды пони.маются в очень ягироком смысле, охватывая все соединения, растворимые в эфире или в смеси эфира со спиртом. Прежде считалось, что у растений хлоропласты являются главным вместилищем белков, так как был обнаружен статистический параллелизм между величиной хлоронластов и процентным содержанием азота в листьях. Однако Шумахер [76] оспаривал верность этого положения, а аналитические данные Менке, Нейша, Бота и Комара показали, что в то в )eмя как в хлоропластах содержится 40—50% белка, цитоплазма представляет почти чистый белок. [c.372]

Данные Граника указывают, что от 24 до 32% всех белков листьев шпината содерлштся в хлоропластах аналогичная величина (86%) получена для Phalaris tuberosa [1Ш]. Данные Менке [106] о содержании белков в клеточных стенках, протоплазме и хлоронластах приведены в табл. 47 [c.372]

Все эти опыты, подтверждая наличие связи хлорофилла с белками хлоропластов, не доказывают существования хлорофилл-белкового соединения с постоянным стехиометрическим составом, сравнимым с гемоглобином. Определения среднего отношения хлорофилла и белка в хлоронластах показывают, что имеющегося в наличии белка нехватает для того, чтобы каждой молекуле хлорофилла соответствовала белковая единица такой же величины, как в гемоглобине. [c.390]

Впрочем, до принятия любого названия было бы желательно иметь доказательство постоянства и воспроизводимости величины и состава комплекса хлорофилл — белок. Как мы упоминали в предыдущем разделе, величина частиц белок—липоид — пигмент, получаемых разрушением хлоропластов в воде, в различных опытах сильно варьирует. Теперь рассмотрим состав этих частиц и, в частности, отношение в них хлорофилла к бв-тку. Смит [159] полагает, что в экстрактах листьев до их нросветления детергентами три молекулы хлорофилла а и одна молекула хлорофилла Ъ связываются с одной белковой единицей, (мо-текулярный вес— 17 000). Этот вывод основывается, во-первых, на анализах, дающих 16,3 г хлорофилла на 100 г белка в веществе хлоропластов шпината Spina ia) и 15,5—16,5 г на 100 г бе.1ка у Aspidistra, и, во-вторых, на том факте, что среднее отношение хлорофилла а к хлорофиллу Ъ у высших растений близко к 3. Однако другие исследователи находили очень различные отношения белка к хлорофиллу, а также наблюдали большие различия в отношении хлорофиллов а я Ъ (хлорофилл Ъ почти отсутствует у многих водорослей). Табл. 56 показывает разультаты определения различными исследователями отношений белка к хлорофи.1лу в веществе хлоропластов. Два последних столбца дают число молекул хлорофилла на каждую единицу белка. [c.392]

Т. В. Годнев, С. В. Калишевич и Г. Ф. Закатич, работая с листьями рдеста, нашли показатели, близкие к тем, которые были установлены и в других работах содержание хлорофилла на один хлоропласт дает величину порядка 3,6 10-9 концентрация — 3,6—7,6% (ДЛИ СССР, 66, б, 957, 1950). (Ирим. ред.) [c.414]

Маскелл [26, 27], работавший в лаборатории Блэкмана, сделал новую попытку оправдать закон Блэкмана в его первоначальном виде. Он предположил, что причина кажущихся отклонений от этого закона лежит во взаимодействии факторов . Бот один из примеров того, что он имел в виду. В состоянии, лимитированном двуокисью углерода , определяющая скорость концентрация СО должна быть такой, какая преобладает в непосредственной близости с хлоропластами. Вследствие потребления двуокиси углерода при фотосинтезе эта концентрация является необязательно одинаковой с внешней концентрацией (в атмосфере или в окружающем растворе), но зависит от скорости диффузии двуокиси углерода из среды к хлоропластам и, таким образом, от отверстия устьиц. Следовательно, если освещение изменяет величину этих отверстий, оно может косвенно влиять на скорость фотосинтеза даже в состоянии, лимитированном двуокисью углерода , не потому, что скорость действительно чувствительна одновременно как к интенсивности света, I, так и к концентрации двуокиси углерода, [СОд], но потому, что освещение влияет на эффективное значение фактора [ Og]. [c.274]

Влияние неравномерности светового поглощения. Влияние неравномерности освещения и поступления реагентов, участвующих в процессе фотосинтеза, обсуждалось в общих чертах в гл. XXVI. В гл. XXVII при обсуждении кривых зависимости скорости фотосинтеза от концентрации двуокиси углерода мы отметили, что на ход этих кривых сильно влияет градиент концентрации, который создается, в особенности при интенсивном фотосинтезе, между внешней средой и слоем, непосредственно прилегающим к поверхности хлоропластов. Подобным же образом соотношение между величиной светового поглощения и выходом фотосинтеза может быть представлено на световых кривых в сильно искаженном виде вследствие того, что между сильно освещенными и затененными молекулами хлорофилла часто может существовать значительный градиент световой интенсивности. Даже в пределах единичного хлоропласта поглощение света на освещенной стороне может быть в 5—10 раз больше, чем на затененной если же освещение является диффузным, то погло- [c.436]

Эти качественные соображения показывают, что для получения световых кривых фотосинтеза, наиболее подходящих для кинетической интерпретации, лучше всего воспользоваться оптически тонкими суспензиями или тканями. Предел в этом направлении ставится, однако, тем фактом, что даже отдельные хлоропласты могут поглощать до 500/о падающего света в максимумах поглощения хлорофилла (см. фиг. 83). Поэтому разбавление суспензий водорослей до поглощения, значительно более низкого, чем указанная величина (или употребление слабозеленых тканей, например зеленой кожицы лука), может привести только к тому, что часть падающего света пройдет между хлоропластами, а неравномерность поглощения внутри пластид полностью сохранится. Равномерность поглощения может быть повышена только при употреблении клеток, бедных пигментами (хлоротпческие клетки), или при применении света, который сравнительно слабо поглощается хлорофиллом (например, зеленый свет). [c.452]

Смотреть страницы где упоминается термин Хлоропласты величина: [c.475] [c.456] [c.221] [c.161] [c.185] [c.114] [c.115] [c.237] [c.298] [c.38] [c.70] [c.336] [c.360] [c.360] [c.362] [c.363] [c.369] [c.371] [c.389] [c.414] [c.81] [c.91]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология