Измерение содержания воды в тканях

Измерение содержания воды в тканях [c.164]

Измерение содержания воды в тканях чаще всего проводят на листьях. Имеются, однако, также и данные почти по всем другим видам тканей и органов. Для нефотосинтезирующих тканей часто бывает вполне достаточно выразить содержание воды в расчете на сухой вес, аналогично тому как это делается для почв. Обычно берут образцы ткани, взвешивают их, чтобы получить сырой вес Wf), высушивают в термостате до постоянного веса при 85- 90°, а затем снова взвешивают для определения сухого веса WJ . Содержание воды W — выражают в процентах от сухого веса [c.164]

Термоэлектрические психрометры, применяемые для измерений по первому методу, — это те же приборы, с помощью которых определяется водный потенциал почвы (см. гл. III). Никаких дополнительных разъяснений здесь не требуется. Затруднения возникают иногда лишь вследствие того, что ткань листа ведет себя не так, как влажная фильтровальная бумага, используемая для градуировки. Это, как полагают, частично объясняется тем, что при измерении содержания воды в листовой ткани в психрометре оказывается значительно меньше воды, чем при аналогичных измерениях, производимых с почвой или влажной фильтровальной бумагой за счет же количества воды, адсорбирующейся ка стенках психрометра при уравновешивании, могут существенно снижаться видимое содержание воды и величина Ч ткани во вре , я наблюдений. Значение этого обстоятельства можно свести к минимуму, если увеличить количество листовой ткани в пробе. [c.168]

Предложены методы измерения температуры стеклования, которые особенно целесообразно применять к влажным и сухим волокнам. В частности, показано, что измерение модуля упругости дает достоверные значения Гст волокон. Обсуждаются влияния содержания воды на величину температуры стеклования волокна, а также важное значение температуры стеклования волокон во влажном состоянии для сохранения размеров тканей и одежды. [c.491]

Измерение pH проводят на рН-метре со стеклянным и хлор-серебряным электродом, который является электродом сравнения. Определению не мешают окраска, мутность, свободный хлор, присутствие окислителей, восстановителей и содержание солей в пробе. Точность потенциометрического определения pH снижается при пользовании загрязненным электродом. Поэтому его обезжиривают куском тонкой ткани, смоченной эфиром или раствором синтетического моющего средства. Затем несколько раз промывают водой и каждый раз вытирают для удаления обезжиривающего вещества. [c.209]

Главный недостаток использования сырой массы в качестве показателя роста состоит в том, что получаемые при этом данные могут варьировать из-за колебаний содержания влаги в тканях. Истинный рост отражается в изменении содержания более постоянных, чем вода, компонентов, а единственный надежный метод его измерения — определение сухой массы. Для этого организм убивают и помещают в печь при температуре ПО °С, чтобы удалить всю влагу. Эту процедуру повторяют до тех пор, пока масса не станет постоянной, что и будет соответствовать сухой массе. Для получения более точных данных рекомендуется измерять сухую массу как можно большего числа экземпляров, а затем вычислять среднюю величину. Полученное таким образом значение более надежно, чем результаты взвешивания одного экземпляра. [c.121]

Измерение внутриклеточных концентраций метаболитов. Измерение концентраций промежуточных продуктов метаболизма в живой клетке сопряжено с большими экспериментальными трудностями. Поскольку клеточные ферменты катализируют быстро протекающие метаболические превращения, одна из обычных проблем при всяком экспериментальном вмешательстве в жизнь клетки связана с тем, что данные, полученные путем измерений, отражают не физиологические, а равновей1ые концентрации метаболитов. Поэтому любая экспериментальная методика будет надежной лишь в том случае, если с ее помощью удастся мгновенно подавить все ферментативные реакции в интактной ткани и тем самым предотвратить дальнейшие превращения промежуточных продуктов метаболизма. Этой цели можно достичь путем быстрого сжатия ткани между большими алюминиевыми пластинами, охлажденными жидким азотом ( —190°С) такой прием носит название фиксация замораживанием . После замораживания, мгновенно подавляющего действие ферментов, ткань растирают в порошок и ферменты инактивируют путем осаждения хлорной кислотой. Осадок удаляют центрифугированием, а прозрачную надосадочную жидкость анализируют на содержание в ней метаболитов с помощью специфических ферментативных тестов. Истинную концентрацию данного метаболита в клетке определяют расчетным путем, учитывая общее содержание воды в ткани и данные измерений объема внеклеточного пространства, В табл. 1 приведены кажущиеся внутриклеточные концентрации субстратов и продуктов реакции фосфорилирования фруктозо-6-фосфата, катализируемой фер- [c.474]

Измерение осмотического потенциала почвенного раствора (Ч ) или осмотического давления (я) может производиться лишь после того, как этот раствор будет извлечен из почвы. При извлечении сначала содержание воды доводится до некоего заданного уровня — до так называемого сверхнасыщения, — а затем насыщенный экстракт диализуется [613. Для определения л можно применять психрометры, так же как и для измерений Ч , с той разницей, что вместо почвенных образцов при этом используется упомянутьп экстракт. Можно также определять осмотическое давление по понижению точки замерзания, т. е. так, как определяют я клеточного сока, извлеченного из растительных тканей (см. гл. V). [c.106]

Вместо прямых методов измерения водного потенциала в некоторых случаях могут оказаться полезными косвенные методы. Наиболее обычный косвенный способ состоит в построении кривой зависимости содержания воды от для изучаемой ткани (см., например, фиг. 38). Такая кривая используется затем для градуировки в единицах относительного содержания влаги. Этот метод, впервые предложенный Уэзерли и Слейчером [826], применялся Слейчером [685] его же, по сути, применяют (хотя, быть может, и не вполне [c.170]

Определение водиого потенциала ткани состоит в записи исходной величины электрического сигнала, поступающего от сухого терморезистора из термостатированной камеры, заполненной исследуемым образцом, и записи силы тока после смачивания терморезистора путем кратковременного погружения его в капсулу с водой. Калибровка установки проводится по регистрации измеиения силы тока при помещении в камеру фильтровальной бумаги, смоченной раствором сахарозы с известным осмотическим потенциалом. Некоторая погрешность определения возникает вследствие того, что ткань листа ведет себя не так, как влажная фильтровальная бумага, используемая для градуировки. Это частично объясняется тем,что при работе с листовой тканью в психрометре оказывается значительно меньше воды, чем при измерениях, проводимых с почвой или влажной фильтровальной бумагой за счет же воды, адсорбирующейся на стенках психрометра, могут существенно снижаться содержание воды и величина водного потенциала ткани во время определения. Значение этого обстоятельства можно уменьшить, если свести к минимуму объем свободного пространства в камере, увеличить массу растительного объекта, изготавливать камеру с минимальной адсорбцией пара. Внутри камеры должна быть полироваи-ная металлическая поверхность. Возможно также влияние иа [c.51]

Градиентометры уже применяются в медицине для регистрации магнитной восприимчивости различных тканей. В простейшем варианте образец намагничивают в однородном постоянном магнитном поле, создаваемом большими катушками Гельмгольца. Такой метод использовался для измерений магнитной восприимчивости тканей печени человека (Farrell et al, 1980), которая зависит от содержания железа в данном органе и может свидетельствовать о каких-то расстройствах кроветворной системы. Вначале измерения проводились с помощью градиентометра второго порядка при низком уровне магнитных шумов. Позже этой же группе ученых удалось провести исследования в клинике, где уровень помех был значительно выше. Для этого они использовали катушку, создававшую поле с определенным градиентом в исследуемом объеме, и градиентометр второго порядка. Чтобы уменьшить влияние положения градиентометра относительно тела пациента на результаты измерений, которое обусловлено различием магнитной восприимчивости диамагнитных воздуха и тканей организма, между телом и дьюаром помещали резиновый мешок с водой (рис. 4.18). [c.191]

В Институте физиологии и биохимии растений АН МССР ра зработан быстрый способ определения сроков полива по величине электрического сопротивления тканей листа плодовых растений. Установлена обратная зависимость между величиной электрического сопротивления тканей листьев яблони, влажностью почвы и содержанием воды в листьях и прямая — между электрическим сопротивлением,. величиной сосущей силы, концентрацией клеточного сока и водным дефицитом. При электрическом сопротивлении тканей листьев в пределах 500— 900 кОм плодовые растения хорошо обводнены и в поливе не нуждаются. При повышении электрического сопротивления до 1000—1500 кОм сад следует поливать (нижний предел для семечковых пород, верхний — для косточковых). Электрическое сопротивлен1- ,е 2000 кОм и выше является показателем наступления резкого дефицита воды в растениях. Сконструирован тестер со специальным датчиком для измерения электрического сопротивления листьев на дереве (М. Д. Кушниренко, Г. П. Курчатова). [c.146]

Навеску 5 г исследуемого объекта (взятая из 100 г тщательно измельченной средней пробы) помещают во флакон (типа пенициллинового),добавляют 0,5 мл 96%-ного этилового спирта и 0,5 мл стандартного спиртового раствора бензола (1,7 мг/л). Смесь тщательно перемешивают, флакон закрывают эластичной резиновой пробкой и ставят на 5 мин в металлический цилиндр, который на /з высоты погружают в кипящую водяную баню. Затем нагретым до 60°С шприцем отбирают 5 мл газовой фазы и вводят в хроматограф. Измеренное на хроматограмме отношение высот пиков определяемого вешества и стандарта позволяет с помощью предварительно построенного калибровочного графика (в условиях, идентичных анализу) рассчитать концентрацию дихлорэтана в исследуемом образце. Условия газохроматографического анализа колонка 240X0,6 см с 15% триэтиленгликоля на сферохроме-1 (0,2—0,3 мм), температура 96 °С, скорость газа-носителя (гелий, водород) 70 мл/мин, детектор — катарометр. Предел обнаружения 0,25 мг в 5 г пробы. Погрешность определения в интервале содержания дихлорэтана от 0,25 до 12,5 мг составляет 5—107о- Аналогичная методика разработана Койима и Кобайаши [59] при определении толуола в тканях в интервале концентраций 0,2—2 мг/л с той лишь разницей, что твердая ткань суспендировалась в воде и в качестве стандарта использовался этилбен-зол, который добавлялся к суспензии в этанольном растворе. [c.135]

В работе Зусмана и Чина [173] представлены данные исследования мышечной ткани трески с помощью спектрометра ЯМР высокого разрешения. Для получения препарата использовали цилиндрическую ячейку диаметром 5 мм с зубчатым режущим краем. Ввинчивая ячейку в рыбное филе, получали одинаковые по размеру образцы. Авторы провели измерения при разных температурах вплоть до —70 °С. В спектрах имеется один широкий симметричный пик, смещенный в слабое поле по отношению к сигналу от ТМС. Положение этого пика совпадало с сигналом от дистиллированной воды при той же температуре. Содержание жидкой воды определяли сравнением площади пика в ЯМР-спектрах образца и эвтектического 23,3%-ного раствора хлорида натрия в воде, зарегистрированных при одинаковой температуре. График зависимости содержания жидкой воды в мышечной ткани трески от температуры (рис. 8-12) имеет резкий излом в интервале температур от —5 до —15 °С, нулевое значение достигается при температуре —70 °С. Выстрозамерзающая вода названа авторами свободной водой, медленнозамерзающая — связанной . Следует отметить, что жидкая вода обнаруживается даже при температуре, близкой к —70 °С. [c.476]

Измерения, проведенные в 47 участках Средиземного моря, выявили наличие А. У. в средней концентрации 0,17 мкг/л. По другим данным, в средиземноморских водах горизонтальные перепады концентраций А. У. не превышали 1,5 мкг/л, а в наиболее загрязненном районе Северной Атлантики — 2—3 мкг/л (Орлова, Пикинер). При содержании А. У. в воде даже менее 10 % они могут поглощаться гидробионтами и накапливаться в тканях последних. Максимальные концентрации А. У. обнаружены в поверхностных слоях воды, с глубиной наблюдается снижение их уровня так, на 100-метровом горизонте содержание А. У. уменьшается вдвое, на глубине 500 м — близко или равно аналитическому нулю. [c.113]

Источники ошибок при измерении флуоресценции еще более многочисленны, чем при измерении поглощения. Свет флуоресценции, который должен быть измерен, необходимо с помощью фильтров отделить от выходящего из клетки рассеянного возбуждающего света (часть этого света может иметь ту же или почти ту же длину волны см. фиг. 18 и фиг. 23). Еще одним источником ошибок является реабсорбция излучаемого света внутри самой клетки ее, однако, можно свести к минимуму, если использовать ткани с. очень низким содержанием хлорофилла. На фиг. 23 показан спектр флуоресценции белых участков листа пестролистной разновидности плюща видно, что он сильно напоминает спектр флуоресценции хлорофилла а в эфире (фиг. 8, Л), хотя и с некоторым смещением максимума в длинноволновую сторону (как это характерно также для спектра поглощения in vivo). В нормальном листе реабсорбция вблизи максимума поглощения хлорофилла а значительно уменьшает интенсивность флуоресценции и еще больше сдвигает максимум в длинноволновую сторону. В то же время дальний красный максимум флуоресценции при 740 нм, где хлорофилл поглощает совсем слабо, в нормальном листе оказывается значительно выше благодаря более высокому содержанию хлорофилла. Рассеяние и внутреннее отражение в листе, которые увеличивают реабсорбцию, удлинняя путь света, можно уменьшить, инфильтрируя межклетники водой [304]. Этот же метод можно использовать и для улучшения спектров поглощения. [c.45]

С помощью специальной формы приемной катушки градиометра, чувствительной к источнику, залегающему на определенной глубине, группе университета Кейз Вестерн Резерв удалось измерить содержание железа в печени пациента [175, 176]. Авторами применен интересный метод компенсации влияния воздушного промежутка между пациентом и прибором, изменение которого может давать паразитные сигналы, так как высокочувствительный магнитометр легко замечает разницу между магнитными восприимчивостями воздуха и тканей организма. В промежуток между прибором и пациентом вставлялся мягкий мешок, заполненный водой, диамагнетизм которой с хорошей точностью соответствует диамагнетизму тканей, и поэтому небольшие изменения промежутка не мешали измерениям. О диамагнетизме человеческого тела нужно обязательно помнить при проведении измерений в магнитном поле, поскольку простое приближение тела к магнитометру в земном поле эквивалентно включению дополнительного постоянного поля величиной 20-50 пТл - той или иной ориентации в зависимости от геометрии измерения. [c.107]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология