Приготовление агара

Для приготовления агар-агаровых мостиков 3 г [c.22]

Рис. 13.1. Приготовление агара в чашках для выделения мутантов, устойчивых к антибиотикам. Вверху — первый этап внизу — второй этап. 1 — питательный агар, 2 — агар с антибиотиком. В результате получается градиент концентрации антибиотика, возрастающий от низких значений у левого края чашки до высоких значений у правого края.

В верхние отверстия трубки 1 вводят мостики 10, которые заполнены агар-агаром, приготовленным на 0,1 п. растворе хлорида калия. Другие концы мостиков погружают в сосуды 11, содержап ие раствор сульфата меди. На концы мостиков, опускаемых в сосуды И, надевают резиновые кольца — метки, чтобы случайно пе опустить эти концы в испытуемый раствор. В сосуды 11 опускают также зачищенные концы медной проволоки, присоединяемой к источнику постоянного тока на 100—120 в. Осторожно и одновременно открывают оба крана 2 в отверстиях кранов обозначается граница раздела золя и контактной жидкости. Затем осторожно поворачивают кран 7, открывая его лишь частично с тем, чтобы обеспечить медленное передвижение [c.175]

В различных коллоидных системах и растворах полимеров минимальная концентрация геле- и студнеобразования зависит от природы дисперсной фазы. Так, глютин застудневает при 5 /о-ной концентрации, золь кремневой кислоты — при 3—6%-ном содержании 5102, агар принимает студнеобразное строение при 0,1—0,2%-ной концентрации, а германиевокислый кальций дает гель при содержании воды 99,935%. Понятно, что эти концентрации для различных систем могут меняться в зависимости от способа приготовления золя или раствора полимера, его чистоты и ряда других условий, но основной принцип зависимости желатинирования и гелеобразования от концентрации остается неизменным. [c.228]

Следует обратить внимание на то, что электролитная цепь в гальваническом элементе всегда должна быть замкнута. Это достигается с помощью изогнутой стеклянной трубки, которая заполнена гелем агар-агара или желатины, приготовленном в растворе K I. Этот столбик проницаем для ионов, движущихся в электрическом поле. [c.232]

На спиртовых заводах получило распространение приготовление посевного материала в виде поверхностной культуры гриба на пшеничных отрубях, которое складывается из следующих двух операций 1) выращивание спороносной культуры гриба в пробирках на сусло-агаре 2) засев спорами пшеничных отрубей в колбах и выращивание культуры гриба. [c.154]

Для приготовления агаровых пластинок используют предметные стекла. Предварительно их обезжиривают, тщательно промывают водой и высушивают. Стекла нумеруют, укладывают на строго горизонтальную поверхность и на каждое осторожно наливают пипеткой с широким концом 4 мл агара. Пузырьки воздуха в агаре необходимо вывести пипеткой на края стекла. Когда агар застынет и образуется твердый гель, в нем посередине вырезают лунку (щель) для нанесения исследуемого раствора. Приготовленные пластинки укладывают в электрофоретическую камеру. Агаровое плато соединяют с буферным раствором бумажными мостиками из фильтровальной бумаги. В щель каждой пластинки вводят сыворотку крови, предварительно разведенную буферным раствором. На электрофореграмму наносят около 100—300 мкг белка в объеме 0,01 мл. Прибор подключают к источнику тока. Медленно повышая напряжение, доводят силу тока до 20—25 мА (напряжение 200—300 В). Электрофорез проводят в течение 3—4 ч. [c.93]

Для приготовления агаризованного солодового сусла 2,0— 2,57о сухого агара расплавляют в сусле при 100° С, раствор фильтруют через вату, разливают в пробирки и стерилизуют в автоклаве при избыточном давлении 0,08 МПа в течение 30 мин. [c.283]

Приготовленные питательные среды МПА, сусло-агара, картофельного агара разливают в стерильные чашки Петри слоем 2—3 мм, дают застыть агару и затем для проверки бактериальной стерильности среды выдерживают эти чашки в термостате прн 37° С в течение 24 ч. После этого чашки Петри с питательной средой, в которых отсутствуют колонии микроорганизмов, готовы к высевам проб. [c.283]

При приготовлении твердых питательных сред для поверхностного выращивания каллусных тканей используют очищенный агар-агар — полисахарид, получаемый из морских водорослей. В качестве примеров в табл. 6.2 приведены составы наиболее распространенных питательных сред. [c.162]

Методика приготовления. Растворяют 10 г высушенного пептона Р, 10 г мясного экстракта Р, 10 г глицерина Р, 3,0 г натрия хлорида Р и 17 г агара Р в количестве воды, доста- [c.398]

Методика приготовления. Растворяют 1 г водорастворимого экстракта дрожжей Р, 5 г аммония нитрата Р, 5 г натрия дигидрофосфата Р, 5 г безводной глюкозы Р и 14 г агара Р в количестве воды, достаточном для получения 1000 мл раствора. [c.399]

Обе среды разливают в пробирки по 5 мл, стерилизуют насыщенным паром под давлением в паровом стерилизаторе при 1 ати (0,1 МПа) 20 мин. Пробирки охлаждают в наклонном положении. На скошенный агар делают посев музейной культуры. Тест-культуру инкубируют от 16 до 18 ч при 37 °С и используют для приготовления посевного материала. [c.51]

Определение общего числа бактерий. Приготовленный раствор (суспензию, эмульсию) образца вносят по I мл в каждую из двух пробирок с 4 мл расплавленной и охлажденной до температуры от 45 до 50 °С среды № 1. Быстро перемешивают содержимое пробирки и переносят в чашку Петри, содержащую 15—20 мл застывшей питательной среды № 1. Быстрым покачиванием чашки Петри равномерно распределяют верхний слой агара. После застывания среды чашки переворачивают и инкубируют в течение 5 сут при температуре от 30 до 35 °С. Через 48 ч и окончательно через 5 сут подсчитывают число бактериальных колоний на двух чашках, находят среднее значение и, умножая [c.196]

Приготовление агар-агарового сифона и каломелевого электрода см. Мисловицер, Определение концентрации водородных ионов, Госхимтех-издат, стр. 196—202, 1932. [c.48]

Чтобы получить гель крахмала, берут 10 г гидролизованного крахмала фирмы onnaught Medi al Laboratories, нагревают со 100 мл соответствующего буферного раствора на водяной бане при непрерывном перемешивании. Далее, как и при приготовлении агара, горячий раствор помещают в сосуд под уменьшенным давлением с тем, чтобы удалить из раствора воздух. После этого отмеренное количество раствора крахмала наливают на подложку и распределяют равномерным слоем. [c.165]

Приготовленные агар-агаровые сифоны хранят в банке с на-сыщенньбм раствором хлористого калия. [c.150]

Измерение скорости электрофореза выполняли в специально сконструированной кювете, схема которой дана на рис. 12.1. Рабочую стеклянную кювету 1 в виде прямоугольного парал-лепипеда с открытыми торцами длиной 20 мм и поперечным сечением 20x0,8 мм помещали между двумя сосудами 2 также прямоугольного сечения, изготовленными из оргстекда. Толщина стенок измерительной ячейки составляла 0,2 мм, что обеспечивало надежную визуализацию микрообъектов при работе с темнопольным микроскопом. Боковые емкости 2 в месте их сочленения с кюветой имели ряд отверстий диаметром 0,5 мм эти емкости прочно закреплялись на основании 3, в котором было высверлено отверстие для вхождения темнопольного объектива 4. Б нижнюю часть емкостей 2 помещали гель агар-агара 5, приготовленный на 1 н. растворе КС1 сверху заливали 0,1 и. раствор USO4 (б) и помещали медные электроды 7. Такая установка удобна в обращении в ней обеспечена герметичность сочленения боковых емкостей с измерительной камерой и возможность тщательной очистки последней после проведения исследований. На основании данных о подвижности частиц дисперсной фазы вычисляли -потенциал по формуле Гельмгольца — Смолуховского без учета поправки на поверхностную проводимость [59]. [c.202]

В трубку впаян платиновый электрод, который присоединяют к отрицательному полюсу батареи через потенциометр. К положи-гелБпому полюсу источника тока присоединяют каломельный электрод 8, который соединяют с раствором в сосуде 9 агар-агаровым мостиком И, приготовленным на 0,5 н. растворе хлорида калия. [c.185]

Гели обладают электрической проводимостью. И.ммобилизован-ный растворитель в геле образует, по существу, непрерывную среду, в которой более или менее свободно могут передвигаться ионы различных электролитов. На этом явлении основано применение гелей агар-агара, приготовленных на растворе КС1 для заполнения мостиков, с помощью которых соединяют отдельные электроды в гальваническую цепь. [c.395]

Приготовление электролитического моста из агар-агара и хлорида калия. Растворяют 3 г агар-агара в 100 г кипящей воды. Вводят в раствор, иомешивая, 10 г K I, Теплый раствор всасывают в стеклянную изогнутую П-образную трубку и охлаждают. В студне ие должно быть пустот и пузырей, [c.147]

В качестве проводника второго рода ( электролитического мостика ) может служить узкая стеклянная трубочка, соединяющая оба полуэлемента трубочке обычно заполняется студнем агар-агара, приготовленным на растворе какого-нибудь электролита (КО, Na l и т. п.). [c.145]

Пектины и альгиновые кислоты — тоже полисахариды, первые из которых заполняют межклеточные промежутки в выс ших растениях и содержатся прежде всего в молодых тканях Их добывают из кожуры фруктов и используют для получения джемов. Строительным элементом пектинов являются альду роновые кислоты (разд. 7.5.1.1). Альгиновые кислоты получа ют из морских водорослей и применяют в пищевой промыш ленности. Из водорослей добывают также другие полисахари ды — агар (используется для приготовления питательной ере ды для микробов) и караген (применяется в пищевой промыш ленности). [c.215]

Для приготовления агаризованной среды 10%-ная вытяжка из отрубей выдерживается в течение 1 ч на кипящей водяной бане, фильтруется через марлю, смешивается в соотношении 1 1с вытяжкой нз солодовых ростков, выдержаииоп в течение 1 ч при температуре 30° С и отфильтрованной через марлю. В полученной среде расплавляется 2,0—2,5% агара. Отрубно-ростковый агар стерилизуется при давлении 0,1 МПа в течение 30—40 мин. [c.77]

Сусло-агар. Для приготовления солодового сусла одну часть солода (по массе) размешивают с четырьмя частями водопроводной воды. Смесь нагревают прп размешпванпп до 45° С п выдерживают прп этой температуре 30 мпн, затем температуру повышают до 58° С п смесь выдерживают 1 ч, после чего температуру доводят до 62—63° С п выдерживают смесь при этой температуре до полпого осахаривания крахмала, которое устанавливают по отрицательной реакции с 1%-ным раствором йода. После осахаривания смесь кипятят 20—30 мин, доводят водой до первоначального объема и отделяют от дробины путем фильтрования через полотняный мешок. Концентрация СВ в сусле должна быть 8—10%. [c.283]

Продуцентами витамина В,2 при его промышленном получении служат актиномицеты, метанообразующие и фотосинтезирующие бактерии, одноклеточные водоросли. В 70-х годах XX в. интерес ученых привлекли пропионовокислые бактерии, известные еще с 1906 г. и широко использующиеся для приготовления препаратов животноводства. Вьщелено 14 видов пропионовокислых бактерий, продуцирующих витамин В,2 их физиолого-биохими-ческая характеристика дана Л. И. Воробьевой. Для получения высокоочищенных препаратов витамина 6,2 пропионовокислые бактерии культивируют периодическим способом на средах, содержащих глюкозу, казеиновый гидролизат, витамины, неорганические соли, хлорид кобальта. Добавление в среду предшественника 5,6-диметилбензимидазола (способствует переводу неактив-. ных форм в природный продукт) по окончании первой ростовой фазы (5 — 6 суток) стимулирует быстрый (18 —24 ч) синтез витамина с выходом последнего 5,6 —8,7 мг/л. Путем селекции, оптимизации состава среды и условий культивирования выход витамина В)2 в промышленных условиях был значительно повышен. Так, выход витамина на среде с кукурузным экстрактом и глюкозой при поддержании стабильного значения pH близ нейтральных зон достигает 21 — 23 мг/л. Мутант пропионовокислых бактерий продуцирует до 30 мг/л витамина. Бактерии плохо переносят перемешивание. Применение уплотняющих агентов (агар, крахмал), предотвращающих оседание бактерий, а также использование высокоанаэробных условий и автоматического поддержания pH позволяет получить наиболее высокий выход витамина — 58 мг/л. [c.55]

Для приготовления желирующего бульона используют отходы от разделки рыбы (головы, плавники, кости). На 1000 учетных банок расходуют около 70 кг отходов. Отходы моют, заливают водой и варят до полного разваривания. Полученный бульон фильтруют и добавляют в соответствии с рецептурой компоненты (в том числе уксусную кислоту, соль, сахар и агар). Агар используется с целью увеличения клейкости и прочности желеобразного студня. Бульон с внесенными компонентами вновь нагревается и подается на заливку. Банки герметизируют и стерилизуют при температуре 112 °С в течение 65 мин. [c.208]

Используют чашк И Петри или прямоугольные лотки, заполненные на глубину 3—4 мм, если нет других указаний в частной статье, культуральной средой, предварительно засеянной соответствующей культурой чувствительного тест-организма, приготовленного, как описано ниже. Питательный агар может состоять из двух отдельных слоев, из которых только верхний слой может быть засеян. Концентрация тест-организ-ма должна быть подобрана таким образом, чтобы получить четкие зоны угнетения в соответствии с ответами на дозу с различными концентрациями стандарта. Если посев готовят, как описано ниже, засеянная среда обычно содержит 1 мл посевного материала на 100 мл культуральной среды. Если культура состоит из суспензии вегетативных клеток, температура расплавленной для засева агаровой среды не должна превышать 48—50° С. Следует специально отобрать чашки и лотки с плоским дном во время заполнения их устанавливают на ровной горизонтальной поверхности для обеспечения одинаковой толщины слоя среды. При использовании некоторых тест-организмов методику можно усовершенствовать, перед употреблением высушивая засеянные лотки при комнатной температуре в течение 30 мин или помещая их в холодильник при 4°С на несколько часов. [c.166]

Методика приготовления. Растворяют 17,0 г панкреатического гидролизата казеина Р, 3,0 г папаинового гидролизата соевой муки Р, 5,0 г хлорида натрия Р, 2,5 г гидрофосфата дикалия Р, 2,5 г гидрата глюкозы Р и 10—20 г агара Р в воде до получения примерно 500 мл. Нагревают раствор, прибавляют 10,0 г полисорбата-80 Р и тотчас разводят водой до получения 1000 мл. [c.210]

Методика приготовления. Тщательно растирают в ступке в следующем порядке 0,5 г Ь-цистина Р, 2,5 г хлорида натрия Р, 5,5 г гидрата глюкозы Р, 0,75 г агара Р, 5,0 г водорастворимого экстракта дрожжей Р и 15,0 г панкреатического гидролизата казеина Р. Прибавляют немного горячей воды, переносят в подходящую посуду и прибавляют воды до получения 1000 мл. Растворяют все содержимое путем нагревания на кипящей водяной бане, следя за тем, чтобы полностью растворился Ь-цистин Р. Прибавляют 0,3 мл меркаптоуксусной кислоты Р или 0,5 г меркаптоацетата натрия Р (предпочтительно последний, так как он более устойчив) и прибавляют раствор гидроокиси натрия (1 моль/л) ТР в количестве, достаточном для получения окончательного значения pH простерили-зованной среды 7,0—7,2. Вновь нагревают раствор, но не до кипения, фильтруют, если необходимо, через кусочек ваты и прибавляют 1,0 мл раствора резазурина натрия (1 г/л) ИР. Разливают раствор в подходящие флаконы, стерилизуют автоклавированием в течение 18—20 мин при 121 °С и быстро охлаждают до 25 °С. [c.211]

Методика приготовления. Растворяют 10 г высушениого пептона Р, 6 г. мясного экстракта Р и 15 г агара Р в (количестве воды, достаточном для получения 1000 мл раствора. При необходимости доводят pH раствором гидроксида натрия (1 моль/л) ТР так, чтобы конечное значение pH стерилизованной среды было 7,8. При необходимости, чтобы получить прозрачный раствор, фильтруют его, разливают раствор в подходящие сосуды и стерилизуют в автоклаве при 121 °С в течение 18—20 мин. [c.399]

Приготовление посевного материала делают смыв суточной тест-культуры со скошенного пептонно-солевого агара раствором натрия хлорида изотоническим 0,9 %. Плотность микробной взвеси должна быть от 1 до [c.52]

Поддержание тест-культуры 5. 1ис1м1Г1ди КМ поддерживают на скошенном сусло-агаре, приготовленном из солодового сусла, доведенного до 7 °Б (Баллинга) с помощью сахарометра, с добавлением 1,5% агара микробиологического. Инкубацию ведут при температуре от 29 до 30 С в течение 48 ч. Тест-культуру хранят при температуре от 4 до 6 С, пересевают не реже одного раза в месяц. [c.60]

Культуру тест-микроба. andida utilis ЛИА-01 выращивают на чашках Петри со средой № 3 в течение 48 ч при температуре (30 1) °С, отбирают типичные колонии, пересевают их в пробирки со скошенным агаром того же состава и выращивают в указанных выше условиях. Полученная культура служит посевным материалом для приготовления взвеси клеток, применяемой в течение длительного времени. Для этого культуру с поверхности среды смывают 5—10 мл стерильного раствора натрия хлорида изотонического 0,9 % и засевают матрац с 300 мл среды № 3 (со скошенной поверхностью). Через 2 сут культуру смывают 50 мл стерильного раствора натрия хлорида изотонического 0,9%. По мере надобности готовят рабочую взвесь, густота которой должна быть такой, чтобы при разведении ее в 30 раз 0,9% раствором натрия хлорида изотонического оптическая плотность составляла 0,22—0,23. Для определения густоты взвеси используют нефелометр с нейтральным светофильтром и кюветы с толщиной слоя 3 мм. Рабочая взвесь может храниться в течение 30 сут. [c.219]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология