Сахара общая методика

Определение общих восстанавливающих сахаров (ВС) Среди разнообразных методов количественного определения ВС наибольшее применение нашли методы Шомоди-Нельсона и метод с 3,4-динитросалициловой кислотой (ДПС). Оба метода и их модификации изложены в рекомендациях Комиссии по биотехнологии ИЮПАК по определению целлюлазной активности [56], а также в работах [57, 58]. В разделе 5.6 приведены конкретные методики их применения. [c.131]

Образование озазонов (общая методика для качественного анализа). Встряхивают 0,5 мл фенилгидразина с 0,5 мл ледяной уксусной кислоты и 2 мл воды до полного растворения образуется ацетат фенилгидразина. К. этому раствору добавляют 0,2 г соответствующего сахара в 1 мл воды и нагревают 30 мин на кипящей водяной бане. Озазоны моносахаридов начинают выпадать уже после кратковременного нагревания, озазоны дисахаридов образуются медленнее. Затем дают раствору очень медленно охладиться, фильтруют и кристаллизуют из воды или спирта. [c.61]

Синтезирующее действие фосфорилазы определяли по общепринятой методике с глюкозо-1-фосфатом [9] и выражали в микрограммах прироста неорганического фосфора. Активность амилазы учитывали по увеличению содержания редуцирующих сахаров при инкубировании водных экстрактов из листьев и клубней с раствором крахмала. Для измерения направленности ферментативных превращений сахарозы применяли метод вакууминфильтрации А. Л.Кур-санова. Интенсивность оттока ассимилятов из листьев, их передвижение из надземной части растений в клубни определяли параллельно тремя методами а) по изменению сухого веса листьев за ночные часы с учетом траты веществ надыхапие б) по приросту сухого веса клубней за 7—10 дней в процентах от общего прироста веса растений в) по уменьшению содержания углеводов в листьях за ночные часы. Каждый из этих методов имеет свои недостатки, но поскольку результаты при их параллельном применении в наших опытах совпадали, можно считать полученные данные вполне надежныии- [c.236]

Общая методика восстановления сахаров 16] [c.233]

Методика опыта. Гидролизат разбавляют водой так, чтобы концентрация сахара в нем равнялась примерно 0,5%, и наливают в бюретку (вытяжка должна быть совершенно прозрачной). В две конические колбы наливают по 10 мл раствора Фелинга № 1 и 2. В одну из них наливают из бюретки 3—5 мл вытяжки, колбу нагревают иа сетке до кипения и кипятят точно 2 мин, после чего добавляют 5 капель метиленового синего. Сразу же кипящую жидкость (не снимая с сетки) титруют, добавляя по каплям сахарную вытяжку из бюретки до исчезновения окрашивания. Титровать надо быстро, чтобы общая продолжительность кипячения составляла точно 3 мии. Это титрование считают ориентировочным. [c.155]

Содержание сбраживаемых сахаров н общее содержание РВ р сусле может быть определено по ранее описанной методике (см. стр. 108 и 52). Однако определить точно прямым анализом содержание РВ в сусле не удается вследствие того, что при современных производственных условиях в нем всегда происходит преждевременное самопроизвольное брожение, прежде чем оно попадает в бродильный чан, причем часть сбраживаемых сахаров превращается в промежуточные не редуцирующие продукты брожения. Поэтому содержание в сусле РВ обычно не определяют. По этой же причине иногда требуется определять содержание спирта в сусле. [c.126]

Определение сахаров в гликонротеине нуждается в подходе, несколько отличающемся от того, который используется при анализе аминокислотного состава белков. Во-первых, все методики количественного определения данного сахара требуют освобонедения моносахарида из его глпкозида либо в отдельной предварительной стадии, либо в общей части используемой аналитической процедуры. Это объясняется тем фактом, что, вообще говоря, единственными функциональными группами, присутствующими в углеводной части гликопротеинов и обнаруживаемыми физическими или химическими методами до гидролиза, являются гидроксильные группы, общие для всех типов сахаров. Конечно, имеются также карбоксильные группы сиаловых кислот, обусловливающие сильно кислотный характер гликопротеинов, содержащих остатки сиаловых кислот. С другой стороны, боковые цепи аминокислотных остатков обычно свободны, сильно отличаются по структуре и реакционной способности и многие из них могут быть обнаружены и определены количественно физическими или химическими методами. Так, измерение поглощения в ультрафиолете применяется для определения тирозина и триптофана с помощью специальных методик можно отличить цистеин от цистина, а аргинин и гистидин можно определить колориметрическими методами, причем все это выполняется на интактном белке. [c.195]

Драгавцев В. А., Сахаров В. И. К методике статистического анализа длительных модификаций в растительных популяциях. — Журнал общей биологии, 1972, т. 33, № 6, с. 733—739. [c.201]

Ни одна из этих методик не позволяет точно определить все углеводы, содержащиеся в бактериях, так как для разных сахаров интенсивность окраски при данной длине волны различна ([5]. Описанные ниже методики с использованием антрона и фенола отличаются простотой. При их выполнении почти не мешают другие клеточные компоненты, а наиболее распространенные в микробных клетках гексозы дают сходную реакцию, что обеспечивает надежное определение общего содержания углеводов. [c.293]

Распределительная хроматография сахаров на бумаге. Теоретические осиоьы метода и общие положения методики были описаны на с. 27. [c.212]

Очевидно, что методика идентификации при помощи ГХ-МС или прямого ввода пробы и ионизации электронным ударом не всегда приводит к успеху. В принципе можно сказать, что ее применение ограничено веществами, имеющими значительную плотность паров (летучесть) и термическую стабильность. В этом отношении прямой ввод пробы имеет более широкий диапазон приложений, чем ГХ-МС. Область применения ГХ-МС может быть расширена за счет дериватизации компонентов, увеличивающей их летучесть, что часто находит применение в традиционном газохроматографическом анализе (см. разд. 5.2). В масс-спектрометрии использование подобных реакций дериватизации преследует две цели. Первая из них заключается в увеличении летучести вещества экранированием полярных групп, т. е. полярные протоны кислот, аминов, спиртов и фенолов заменяются более инертными группами путем, например, этерификации кислотных групп, ацетилирования амихюгрупп или силанизиро-вания. Кроме этого, дериватизацией можно улучшить параметры ионизации. Так, включение пентафторфенильного заместителя обеспечивает более интенсивный отклик в случае масс-спектрометрии отрицательно заряженных ионов при химической ионизации электронным захватом. В рамках этих направлений, многие нелетучие и (или) термически нестабильные вещества, такие, как стероиды, (амино)кислоты, сахара, и широкий спектр лекарственных препаратов, становятся доступными газохроматографическому и ГХ-МС-анализу. Очевидно, что процедура дериватизации влияет на массу исследуемого соединения. В общем случае, сдвиг в область более высоких значений m/z является преимуществом, так как в этой области должно быть меньшее число мешающих компонентов. Однако в случае идентификации неизвестных соединений надо помнить, что дериватизация может привести и к непредвиденным артефактам тогда для определения молекулярных масс рекомендуется использовать методы мягкой ионизации (разд. 9.4.2). [c.301]

В ВР 1993 применение ТСХ разобрано наиболее подробно, поскольку она применяется здесь наиболее широко. Приводятся разделы обор дование, приготовление пластин (если это необходимо), описание П1и>-ведения самой методики ТСХ, проявление (при этом дается yнивep aJ l,-ный, достаточно сложный способ проявления, в добавление к УФ 254 и другим), проверка разделяющей силы пластины, проверка детектирующей силы пластины и проявителя, сорбенты. В этой же общей статье приводятся методики идентификации барбитуратов, пенициллинов, фенотиазинов, стероидов, сахаров, тетрациклинов, а также сопутствующих примесей в барбитуратах, фенотиазинах, стероидах, сульфонамидах. [c.464]

Общий метод получения кетонов основан на реакции окисления вторичных спиртов четырехокисью рутения [3]1 Позднее оп был применен для окисления углеводов [4, 5], что позволило синтезировать ряд сахаров, содержащих кетогруппы [6—И] . В первоначальном варианте метода окисление проводилось эквивалентным количеством четырехокиси рутения при этом реакция часто сопровождалась переокислением образующихся кетонов до соответствующих лактонов. Побочная реакция и большой расход дорогого реагента являются главными недостатками рассматриваемого варианта методики. Оба эти недостатка были устранены Джонсом с сотр. [12—14], которые предложили рроводить окисление перйодатом калия в буферном растворе в присутствии карбоната калия и каталитического количества двуокиси рутения. Значительно быстрее окисление протекает при использовании гипохлорита натрия (или С12). В этом случае необходимость в буферном растворе отпадает, однако в молекуле сахара не должно быть защитных группировок, чувствительных к действию разбавленного раствора гипохлори-та натрия [15, 16]. [c.261]

Область применения. В условиях проведения пробы большинство альдегидов и кетонов образует кристаллические фенилгидразоны. Время, необходимое для образования озазонов из сахаров, зависит от нескольких факторов, таких, как чистота и количество сахара, количество реактива и pH растЕора. В общем по скорости образования фенилозазонов сахара располагаются в следующем ряду фруктоза>сорбоза>глюкоза>ксилоза> >рамноза>арабиноза>галактоза. Сахароза частично гидролизуется и примерно через 20 мин. медленно образует небольшое количество глюкоза-зона. Озазоны мальтозы и лактозы растворимы в горячем растворе и выделяются после охлаждения. Вид кристаллов озазонов под микроскопом помогает идентификации [40—42]. Для открытия микрограммовых количеств карбонильных соединений можно использовать методику, описанную для пробы (29). [c.398]

Методики Винцлера и Сёренсена и Хаугарда, по-видимому, дают в общем случае удовлетворительные значения содержания нейтральных сахаров в гликопротеинах ). Однако определение с фенолом и серной кислотой после предварительного гидролиза в разбавленной кислоте дает несколько большие значения содержания маннозы в яичном альбумине [99, 100], по сравнению с результатами, полученными без гидролиза [98] или другими методами [7, 101]. Ранее Диксон [54] отметил, что предварительное нагревание с 0,5 н. серной кислотой повышает интенсивность окрашивания при реакции овомукоида с орцином. [c.206]

Применяемые для этой цели методики исходят из общих методов анализа углеводов [49], гликосфинголи-пидов [43] и гликопротеинов [47]. Сахара, связанные гликозидными связями, освобождаются путем метанолиза с выделением 0-метилгликозидов, и все свободные сахара также превращаются в метилгликозиды тем же способом. При метанолизе гликозидных связей происходит изменение конфигурации молекулы, однако при этом образуется только один аномер. Из свободных сахаров образуется больше одного аномер а, так как в растворе присутствует смесь аномеров. [c.211]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология