Полисахаридно-белковый комплекс

Клеточная стенка дрожжей, например, составляет примерно 15% массы клетки,,ее толщина достигает 400 нм. В состав клеточной стенки входят белково-полисахаридные комплексы и липиды. Примерно 70% сухой массы клеточной стенки дрожжей составляют полисахариды маннан и глюкан. Именно полисахариды играют большую роль в сохранении ее механической прочности. [c.14]

Пектины сосредоточены в средней ламелле между клетками (рис. 1.8). В неповрежденной ткани пектиновые вещества обычно нерастворимы, и их называют протопектинами. Нерастворимость объясняется молекулярной массой полимера, хотя этому способствует и наличие двухвалентных катионов (например, Са ). Содержание гемицеллюлозы и целлюлозы в клеточной стенке у фруктов может быть очень разным (термин пентозаны применяется в основном к зерну). По разным оценкам, у груш клеточные стенки состоят из 21,4% глюкозы, 21% ксилозы и 10% арабинозы [42], тогда как у яблок — из 76% глюкозы, 1,2% ксилозы и 6% арабинозы [47]. Еще более усложняет ситуацию тот факт, что некоторая часть полисахаридов может присутствовать в виде протеогликана или полисахаридно-белковых комплексов. [c.40]

Следует отметить, что клеточные стенки грамотрицательных бактерий, к которым относятся водородные бактерии, представляют сложный белково-полисахаридно-липидный комплекс, трудно разрушаемый лизоцимом. Однако использованный нами стандартный метод для разрушения клеточных стенок грамотрицательных бактерий с помощью лизоцима показал его применимость для водородных бактерий. [c.94]

Антигенная структура и факторы патогенности. Возбудитель имеет капсульный протеиновый и соматический полисахаридный родовой антигены продуцирует экзотоксин, представляющий собой белковый комплекс из нескольких компонентов (летального, вызывающего отек, и протективного). [c.290]

Через 16—20 сут ферментации суспензию центрифугируют. В результате варки белки денатурируются, клеточные стенки рвутся при последующем ферментативном гидролизе белки, а также белково-полисахаридные комплексы клеточной оболочки разрушаются до аминокислот и полисахаридов. Осадок после центрифугирования промывают несколько раз холодной и горячей водой для удаления растворимых сахаров, промывают этиловым спиртом и высушивают в вакууме. Размельченный препарат используют в медицине. [c.135]

Большинство купажей перед их отгрузкой для физического осветления и осаждения полифенольных соединений подвергают осветлению (традиционно его проводили яичным белком, но в настоящее время чаще применяют казеин, желатин или рыбий клей). Затем осуществляют фильтрование, перед которым иногда используют центрифугирование для ускорения разделения сухих веществ. Для удаления из вина нестабильных белково-полисахаридных комплексов может также проводиться осветление бентонитом. Проведение таких предваряющие охлаждение процедур желательно для удаления ингибиторов кристаллизации битартрата калия (иначе в процессе обработки холодом не будет должной степени кристаллизации). [c.227]

ХОНДРОИТИН. Соединительные ткани состоят из волокон коллагена, погруженных в белково-полисахаридный комплекс — белок, ковалентно связанный с углеводом. Наиболее распространенным является полимер, известный под названием хондроитина. В отличие от гликогена углеводная цепь хондроитина не разветвлена, а мономеры соединены в нем р-гликозид-ными связями. Хондроитин резко отличается от других полисахаридов тем, что представляет собой гетерополимер, построенный из чередуюш,ихся остатков с-глюкуроновой кислоты и К-ацетил-в-галактозамина, несущего сульфатную группу. Так называемый хондроитин А содержит эту группу при атоме С4 аминосахара в настоящее время для него принято название хондроитин-4-сульфат. Аналогичным образом хондроитин С — это хондро-итин-6-сульфат. [c.463]

Полисахариды. Полисахариды — весьма сложная по своему составу и строению группа антигенов, входящая в структуру стенок микроорганизмов и многих других клеток (например, эритроцитов) и определяющая их специфичность. Полисахариды входят в состав многих белков (гликопротеидов) и также играют роль антигенных детерминант. В большинстве случаев полисахаридные антигены представляют собой длинную цепь, к которой присоединены боковые короткие олигосахариды, содержащие 4—6 остатков сахаров, фактически являющиеся антигенными детерминантами. В одних случаях олигосахаридные группировки идентичны и тогда весь полисахаридный комплекс представляет собой чередующиеся антигенные детерминанты (аналогично гаптенам, присоединенным к белковой глобуле). В других случаях боковые цепи могут сильно различаться между собой. Как правило, в антигенную детерминанту входят остатки сахаров, расположенные на конце боковых цепей, содержащие заряженную группу (например, Ы-ацетил-глюкозамин), которая является иммунодоминантной группой. [c.15]

Плоские бимолекулярные липидные мембраны (Б Л М) формируются на отверстии в гидрофобном материале и разделяют два раствора электролита, состав которых можно целенаправленно изменять. Такие мембраны, вероятно, представляют наиболее адекватную модель биологических мембран. Они взяты за основу при реконструкции различных функциональных мембранных комплексов, так как большинство современных данных говорит в пользу того, что все (за некоторым исключением) естественные мембраны содержат в своей основе липидный бислой, и самосборка мембран начинается именно с его образования, а затем уже происходит внедрение в липид белковых, полисахаридных и других компонентов, что и приводит к формированию мембранной системы. [c.132]

Партридн и Эльсден [23] нашли, что для полного отделения полисахарида от хондроитинсульфат-белкового комплекса (из носовой перегородки быка) необходима обработка 0,1 н. едким натром нри 25° в течение 20 час. В этих условиях разделение необратимо, и чистые фракции хондроитинсуль-фата и белка можно выделить зонным электрофорезом. Белковая фракция, однако, содержала 1—2% хондроитинсульфата. Авторы сделали вывод, что необратимость диссоциации под действием щелочи убедительно свидетельствует, что полисахаридные цепи связаны с белком ковалентными связями, которые довольно легко гидролизуются щелочами . Упомянутый выше хондроитинсульфат-белковый комплекс из хряща акулы не разрушался 0,05 н. едким натром при 25° в течение по крайней мере 72 час. [c.31]

Макромолекулы внеклеточного матрикса секретируются находящимися в нем клетками, в особенности многочисленными фибробластами. В специализированных видах матрикса, например в хряще и кости, макромолекулы представляют собой продукт секреции особых клеток например, хрящ образуют хон-дробласты, а кость-остеобласты. Два основных класса макромолекул, образующих матрикс,-это 1) коллагены и 2) полисахариды из группы гликоз-аминогликанов, которые обычно ковалентно связаны с белком в комплексы-протеогликаны. Молекулы гликозамшогликанов и протеогликанов образуют сильно гидратированный гель основного вещества , в который погружены коллагеновые волокна. Эти длинные волокна укрепляют и упорядочивают матрикс, а водная фаза полисахаридного геля обеспечивает диффузию питательных веществ, метаболитов и гормонов между кровью и клетками ткани. Во многих случаях в матриксе имеются также волокна резиноподобного белка эластина, придающие ему упругость. Кроме того, к основным компонентам внеклеточных матриксов относятся два высокомолекулярных гликопротеина фибронектин, широко распространенный в соединительных тканях (и в крови), и ламинин, обнаруженный до сих пор лишь в базальных мембранах. Несомненно, будет открыто еще много других белковых компонентов. [c.221]

Антраксин. Белково-полисахаридно-нуклеиновый комплекс, извлеченный при гидролизе сибиреязвенных бацилл. Применяется для постановки кожно-аллергической пробы. [c.214]

Биополимеры, содержащие одновременно пептидные и полисахаридные цепи, уже достаточно давно найдены в животных организмах. Позднее они были обнаружены также в микроорганизмах и растениях и в настоящее время составляют наиболее обширный и изученный класс смешанных биополимеров. Существует известная неопределенность в номенклатуре этих соединений, которые часто называются углевод-белковыми соединениями или комплексами они известны и под наименованиями мукополисахаридов (для веществ, содержащих большое количество углеводов), мукопротеинов (для веществ, содержащих больше белковых фрагментов), мукоидов и т. п. В последнее время их чаще всего называют гликопротеинами, независимо от соотношения в них пептидной и полисахаридной части, и мы принимаем здесь зто наиболее целесообразное название. Гликопротеины выделены из многих секреторных жидкостей, таких, как плазма крови, цереброспинальная жидкость, моча, синовиальная жидкость, слюна, желудочный сок и т. п. Они имеются в эритроцитах, нервной ткани и т. д. Очень многие белки содержат определенное количество углеводов , присоединенных в виде олиго- или полисахаридных цепей, и в сущности являются гликопротеинами сюда относятся овальбумин и овомукоид — главные компоненты белка куриного яйца, Y-глобулин и другие белки крови, многие ферменты, такие как, например, рибонуклеаза В, така-амилаза, глюкозооксидаза из Aspergillus niger, некоторые гормоны, в частности гормоны гипофиза (тиреотропин, фолликулостимулирующий гормон), и др. Важнейшая функция гликопротеинов связана, по-видимому, с обеспечением всех видов клеточных взаимодействий, таких, как скрепление клеток в тканях, иммунохимическое взаимодействие, оплодотворение и т. п. (см. гл. 22). [c.566]

Экстракцией 6%-ным раствором гидроксида калия из измельченных стеблей сильфии 49] выделен белково-полисахаридный комплекс, не разделяющийся в условиях гель-фильтрации и электрофореза. Оп содержал 71 %i полисахарида и более 20% белка. Для оценки взаимосвязи между полисахаридом и белком комплекс фракционировали на ДЭАЭ-целлюлозе и сефадексах G-100 и G-200. В отдельных пробах определяли содержание белка и углеводов. Белковая составляющая не отделялась от полисахаридной, но максимумы их не совпадали, что свидетельствует об отсутствии прочной химической связи между этими полимерами. Аналогичные результаты были получены при попытке расфракциониро-вать этот комплекс методом электрофореза. Количественная ха- [c.117]

Применение иммунологических методов в препаративных целях осложняется прочностью и специфичностью комплекса антиген— антитело. Некоторые комплексы можно разложить только с одновременной деструкцией одного из компонентов, обычно антигена при этом освобождается антитело [371—373]. Антитела против полисахаридных (пневмококковых) антигенов можно отделить [374—376] в концентрированном растворе Na l (1,8 М), причем получаются растворы антител различной степени чистоты. Как показывают результаты измерения содержания азота в осажденных антителах, степень чистоты таких растворов нередко приближается к 100% . Успех применения этого метода, повидимому, частично зависит от эффективности антисыворотки, применявшейся для преципитации. Антитела белковых антигенов, например дифтерийный антитоксин, не могут быть выделены при помощи такого простого метода. Оказалось целесообразным гад-ролизовать белковый антиген пепсином или трипсином в определенных условиях при этом удается выделить только 30—60% указанного антитоксина [377]. Сырой дифтерийный антитоксин, полученный в результате обработки трипсином, не является, как показывает проба на постоянство растворимости, чистым, хотя токсином можно осадить 95% его. Этот препарат был разделен [c.79]

Стимулируют репаративные процессы в ране покрытия из белково-полисахаридных комплексов. Так, хорошие результаты показали отечественные системы на основе комплексов альгина-та натрия и коллагена Альгикол ) и хитозана и коллагена ( АГо-лахит ) [7]. [c.190]

Аллергены представляют собой взвесь убитых микробных тел, фильтрат убитых культур, белково-полисахаридные комплексы, очищенные термостабильные фракции фильтратов жидких культур или инактивированный и разведенный в буферном растворе перитонеальный экссудат лабораторных животных (токсоплазмин). Имеются также аллергены для диагностики вирусных инфекций, приготовленные из вируссодержащих тканевых культур. [c.81]

Как экзополисахарид, так и полисахарид белково-липоидно-полисахаридного комплекса разделяются электрофоретически на три компонента. Компоненты обоих полисахаридов сходны как по расположению на электрофореграмме, так и по физиологическому действию на листья и клубни картофеля. Антиген, содержащийся в мицелии, его полисахаридная часть, экзополисахарид гриба, а также культуральная среда после роста на ней Ph. infestans вызывают у тканей картофеля поражения, близкие к симптомам фитофтороза. [c.50]

Внутрйклеточный пигмент в форме гранул, имеющих цвет от желтого до коричневого, содержит железо, что является важным диагностическим признаком. Гемосидерин нерастворим в щелочах, но растворяется в сильных кислотах. Он не обесцвечивается сильными окислителями, не проявляет аргентаффинности, свободен от жира и дает положительную ШИК-реакцию, обусловленную его нахождением в белково-полисахаридном комплексе. Этот комплекс-носитель, кроме того, дает резко положительную реакцию с тетразо-лием после бензоилированйя. [c.246]

Отсутствие метахромазии или других окрасок не означает, что ГАГ не содержится в неокрашенных структурах, так как биохимическими методами они, как правило, выявляются в соединительной ткани. Причиной несоответствия может служить слишком низкая для гистохимических методов концентрация этих веществ или (чаще) блокада их реакционноспособных групп белками, с которыми они связываются в протеин-поли-сахаридных комплексах. В специально проведенном нами исследовании обработка протеазами — трипсином, химотрипсином, папаином — в небольшой концентрации приводила к появлению или усилению метахромазии и окраски альциановым синим основного вещества в пленочных препаратах соединительной ткани [Шехтер А. Б., 1964, 1966]. Подобный эффект, вероятно, объясняется частичным протеолизом белков и диссоциацией белково-полисахаридных комплексов с деблокированием реакционных групп ГАГ. [c.81]

Эти новые электронно-микроскопические данные о деструкции коллагеновых фибрилл при мукоидном набухании в какой-то мере расшифровывают результаты поляризационно-микроскопических и гистохимических исследований, выполненных 20— 30 лет назад. Расщепление коллагеновых фибрилл находит подтверждение в деструкции коллагенового волокна, выявляемой прп поляризационно-микроскопическом исследовании очагов мукоидного набухания соединительной ткани ушек сердца при ревматизме [Ревзис М. Г., 1968]. Отмеченный параллелизм между выраженностью фибриллярного расщепления коллагеновых волокон и степенью метахромазии соединительной ткани согласуется с мнением о демаскировке ГАГ при повреждении коллагеновых волокон [Орловская Г. В., 1958 Шехтер А. Б., 1964 Митин К. С., 1966]. Действительно, разрывы слабых электростатических связей белково-полисахаридных комплексов с коллагеновыми фибриллами должны предшествовать разрывам более прочных боковых связей между тропоколлагеновыми протофибриллами. Поэтому высвобождение реактивных групп демаскированных протеогликанов и ГАГ обусловливает метахромазию дезорганизованной соединительной ткани. [c.183]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология