Стекла, предметные и часо

Для определения размеров частиц дисперсной системы небольшое количество изучаемой суспензии или порошка, смоченного жидкостью , помешают на предметное стекло. Концентрация дисперсной фазы не должна быть большой, чтобы каждая частица могла быть рассмотрена отдельно. Пробу суспензии покрывают покровным стеклом и помещают на столик микроскопа. Размеры чаС иЦ с1 определяются путем отсчета числа делений п окулЯрнОй шкалы на расстоянии, в котором укладывается изображение частицы, и умножением его на цену деления при данном увеличении [c.7]

Элюент метанол —25% раствор аммиака 10 1. Для качественного обнаружения промедола в биологическом материале Ю. А. Хомов и Н. В. Кокшарова предложили использовать микрокристаллическую реакцию получения ализари-ната промедола, для чего остаток после удаления органического растворителя обрабатывают 1—2 каплями 0,1 н. раствора НС1 и смешивают на предметном стекле с одной каплей 0,2% водного раствора ализарина красного. Через 5—10 минут, а при незначительных концентрациях через IV2—2 часа (при хранении во влажной камере) появляются сростки из игольчатых и узкопластинчатых кристаллов. Кристаллооптические константы погасание прямое Ng= 1,606, Np = 1,525, Ng—Np = 0,081. Знак удлинения отрицательный. [c.207]

Мелко истолченный порошок испытуемого вещества, например салола (75), предварительно высушенного в эксикаторе (рис. 14), поместите в стеклянный капилляр (диаметр около 1 мм, длина 40 мм), запаянный с одного конца. Для этого немного порошка насыпьте на предметное стекло (выдается перед занятием) и прижмите порошок открытым концом капилляра. Перевернув капилляр запаянным концом книзу, постучите им по столу, Тогда частицы вещества, попавшие в капилляр, опустятся на дно. Повторите эту операцию несколько раз, пока слой вещества в капилляре не достигнет 2—3 мм. С помощью резинового колечка, отрезанного от каучуковой трубки, прикрепите капилляр к термометру так, чтобы испытуемое вещество находилось на уровне шарика ртути термометра (рис, 15). Правильные результаты получаются лишь при медленном нагревании (со скоростью повышения температуры около 2° в минуту). Для контроля пользуются минутными песочными часами (рис. 16). Собранный прибор показан на рис. 17. [c.38]

Под стеклянный колокол помещают зерна испытуемого минерала на стеклянной пластинке (предметное стекло) и концентрированную соляную кислоту в фарфоровой чашке. Через 12—24 часа покрывают другую такого же размера пластинку слоем горячего раствора желатины, содержащего примерно 1 % диметилглиоксима. Не охлаждая желатины, накрывают первую пластинку второй с тем, чтобы зерна минерала пришли в тесное соприкосновение с желатиной. Вокруг зерен, содержащих никель, образуются красные пятна, увеличивающиеся до тех пор, пока желатина не застынет. Размер пятна примерно пропорционален содержанию никеля в испытуемом минерале. [c.314]

Для определения распределения белка внутри гранул носителя готовят тонкие срезы носителя с прикрепленным ферментом, принимая меры предосторожности против нарушения структуры матрицы. Для этого гранулы носителя включают в 20 /о-ную желатину. Частицы геля выдерживают 5 ч при 37 °С в растворе желатины, затем смесь переносят в подходящий для этих целей небольшой контейнер и оставляют на несколько часов в холодильнике. Желатиновые блоки замерзают, их режут микротомом на образцы толщиной 10 мкм. Полученные срезы наносят на предметные стекла и покрывают тонкими покровными стеклами для предохранения от высыхания. С помощью флуоресцентного спектрофотометра записывают спектры поглощения и излучения флуоресцеинизотиоцианата меченной флуоресцеином аминопептидазы, как свободной, так и связанной с агарозным или декстрановым носителем. [c.255]

Взятие пробы. Предметные стекла, покрытые слоем желатины, содержащей реактив (см. ниже), смачивают водой из пульверизатора и ставят в наклонном положении (желатиновым слоем вверх) на разных уровнях в помещении, в котором исследуется запыленность воздуха. Через определенный промежуток времени (например, через час) желатиновый слой подвергают исследо-ранию. [c.409]

Через 24 часа помещают предметное стекло под микроскоп, снабженный подвижным столиком и окуляром с перекрестом нитей, или под передвигающийся микроскоп и для каждой трубки измеряют расстояние между меткой и верхней точкой каждого мениска. Через 48 час. измерения повторяют. (Для растворителей с более высокой температурой кипения время между измерениями следует увеличить, в некоторых случаях до нескольких недель.) [c.182]

Адсорбенты. Адсорбирующими материалами в тонкослойной хроматографии могут служить силикагель, оксид алюминия, диатомиты и измельченная до пудры целлюлоза. Тонкослойную пластинку изготовляют распылением водной суспензии тонкозернистого адсорбента на поверхности стеклянной пластинки или предметного стекла. Пластинку затем выдерживают для уплотнения слоя. Для некоторых целей ее можно активировать нагреванием в сушильном шкафу в течение нескольких часов. [c.287]

Вводные пояснения. Определение токсичности фунгицидов обычно проводится так же, как определение ток-сичиости контактных инсектицидов. Поверхность стекла (предметного стекла, дна стеклянного стаканчика) или листа обрабатывают лабораторным опыливателем порошкообразным либо с помошью опрыскивателя жидким фунгицидом. На обработанные таким образом поверх- ости накладываются капли суспензии опор, после чего стекла или стаканчики помещают во влажцую камеру с надлежащей температурой Можно поместить их в чаитки Петри. В этом случае для создания повышенной влажности чашки Петри закрывают крышками, с нижней стороны которых находится фильтровальная бумага, и выдерживают 4—5 дней при температуре не выше 10°. Затем на 16—20 часов температуру повышают до 20—25°. [c.146]

Нисходящая хроматография на бумаге была впервые применена для разделения аминокислот в гидролизатах белка . Предложенные тогда простые приборы применяются и в настоящее время. Главной частью является длинная узкая полоса фильтровальной бумаги, верхним концом погруженная в стеклянный сосуд с растворителем. Сосуд этот делается из широкой стеклянной трубки, запаянной с обоих концов, но имеющей довольно широкое продольное отверстие сверху. Погруженный конец бумаги удерживается в сосуде предметным стеклом. Другой конец свободно свисает вниз через находящуюся на некотором расстоянии стеклянную палочку в камеру, для которой авторы методики рекомендовали использовать фановые трубы. Снизу труба устанавливается на плотно подогнанном подносе из толстого листа свинца. На дно камеры наливается тот же растворитель, чтобы камера была насыщена его парами. Стеклянный сосуд устанавливается сверху, в расширении фановой трубы, и верхнее отверстие ее закрывается хорошо притертым стеклом. Так как можно взять довольно длинную фановую трубу, то и полосы фильтровальной бумаги могут быть длинными, что позволяет достигать хорошего разделения находящихся в смеси веществ. Для одномерной хроматограммы применяют полоски бумаги 1,5 см щирины и 20—56 см длины. На верхнем конце на расстоянии 5 см от края проводят простым карандашом линию— начало. В центре этой линии наносят 2—5 мкл ( il) исследуемого раствора. Большие количества наносить не следует, так как тогда пятна получатся размазанные. Если раствор очень разбавленный, то можно, высушив нанесенное количество, снова добавить на то же место еще такое же количество вещества, два-три раза, каждый раз тщательно высушивая. Затем конец бумажной полосы погружают в сосуд с растворителем так, чтобы карандашная метка не была погружена в растворитель, опускают другой конец в фановую трубу, плотно закрывают сверху стеклом и оставляют на длительное время. Скорость движения зависит от сорта бумаги. Так, например, для бумаги ватман № 1 за 6 часов растворитель (фенол-вода) проходит 15—25 см, за 24 часа — 30—50 см. Конечно, для но- [c.108]

Льняную крученую нить, обмотанную вокруг предметного стекла от микроскопа, замачивают в смеси этанол — вода (1 1), тщательно промывают этой смесью и высушивают при 110° в течение 3 час нить хранят в закрытой склянке и по мере надобности отрезают куски стандартной длины. [c.70]

Имеющиеся данные о длительном сохранении спорами способности к прорастанию основываются на наблюдениях о сохранении инфекционности споровой массой, без учета процента сохранившихся в ней жизнеспособных спор. Для определения способности спор к прорастанию Мюллер-Кеглер рекомендует посев спор на агар с суслом, разлитый на предметные стекла. После затвердения агара на него иглой наносится суспензия спор в стерильной воде. Для того чтобы не нарушалась поверхность питательной среды, используется 3%-ный агар. Концентрация спор в суспензии должна быть такой, чтобы на стекле можно было различать отдельные споры. Через 24, 48 и 72 часа содержания спор на стеклах в стерильных чашках Петри при температуре 20° С препараты окрашивают метиленовой синей, нанося 0,1%-ный раствор красителя по каплям, и подсчитывают количество проросших спор по окрасившимся ростковым трубкам. [c.370]

Предметные стекла кипятят в 2—3%-ном растворе соды в течение 2—3 часов, затем соду нейтрализуют слабым раствором соляной кислоты, после чего стекла несколько [c.164]

Иногда сначала смешивают в пробирке равные объемы растворов химического вешества со споровой суспензией (по 1 мл). При этом способе рабочий раствор и опо-ровую суспензию готовят в концентрациях в 2 раза выше, чем требуется. После перемешивания одну каплю смеси наносят на предметное стекло, которое помещают во влажную камеру. Иногда после смешивания равных объемов рабочего раствора и суспензии спор в пробирках их плотно закрывают и оставляют на 24 часа при соответствующей температуре для прорастания спор. Для подсчета одну каплю смеси помещают на предметное стекло и просматривают под микроскопом. [c.166]

Немаловажное значение имеет учет испарения капель при полевых испытаниях опрыскивателей. Капли, уловленные теми или иными заборниками (например, осевшие на предметных стеклах), доставляются в лабораторию для анализа по крайней мере через несколько часов. За это время капли могут испариться настолько, что результаты измерений окажутся искаженными. [c.182]

При изучении токсичности часто пользуются методами контактного проращивания и бумажного диска . При первом методе предметные стекла опрыскивают испытываемым составом, после подсыхания наносят на стекла капли споровой суспензии и помещают их во влажные камеры при оптимальной температуре прорастания гриба. Учет действия яда проводят через 24—48 часов. При втором методе из фильтровальной бумаги приготовляют бумажные диски диаметром 2—3 см и опрыскивают их испытываемым составом после высушивания диски помещают в чашки Петри с [c.43]

Весьма удобным веществом для исследования текстуры лиотропных жидких кристаллов является олеат калия Водноспиртовые растворы олеата калия имеются в продаже под названием жидкое калийное мыло . Если поместить каплю такого раствора между предметным и покровным стеклами, то через несколько часов по краям покровного стекла начинают расти смектические лиотропные жидкие кристаллы (рис. 40, а). Ближе к центру препарата образуется текстура, домены которой похожи на сферокристаллы (рис. 40, б). Заметно, что домены выходят попарно из двух точек, расположенных рядом иногда точки могут находиться и на значительном расстоянии друг от друга. Когда росту одиночного домена такой текстуры не мешают соседние домены, он приобретает вид тела вращения (рис. 41). По мере увеличения размеров домен приходит в соприкосновение со стеклами, его смектические слои, перпендикулярные оси домена, закручиваются в циклиды Дюпена, и в результате образуется более сложная текстура (рис. 42). Домены описываемой текстуры не стабильны в течение 1—2 дней, по мере испарения растворителя, они расслаиваются (рис. 43). Сначала образуются ленты, которые часто состоят из цепи мелких конфокальных доменов. Слегка сдвигая покровное стеклышко, можно добиться, чтобы ленты исчезли смектические слои расположатся тогда параллельно стеклам, и препарат окажется погашенным между скрещенными николями микроскопа. Так образуется монокристальный слой лиотропного смектического жидкого кристалла. [c.56]

Образец разрывают на маленькие кусочки и насыпают в колбу с подкисленной водой (4 капли НС1 удельного веса 1,18 на 50 жл воды). Кипятят 1 час. Подкисленную воду сливают, наливают дистиллированную воду и доводят до кипения. Тщательно размельчают образец, встряхивая его в колбе со стеклянными шариками. Перед употреблением предметные стекла и растворы охлаждают примерно до 20°. Волокна помещают на предметное стекло и заливают раствором А (примерно 0,5 жл), дают постоять 1 мин и снимают жидкость фильтровальной бумагой. Один раз промывают раствором Б и насухо промокают. Заливают волокна раствором В, оставляют на 30 сек и снова насухо промокают. Наконец, наносят одну каплю раствора Г и немедленно накрывают покровным стеклом. [c.288]

Для отличия коффеина от теобромина можно пользоваться следующей микрохимической реакцией Tunmann a. Коффеин растворяется в концентрированном водном растворе хлоралгидрата уже на холоду, теобромин— лишь при нагревании. Полученный раствор испаряют на предметном стекле без покровного. Через 2 часа остаток исследуют микроскопически. Теобромин, если он присутствует, выкристаллизовывается в виде сферокристаллов (30—40 а величиной). Кристаллы расположены рядами, частью одиночно, частью группами. Их радиальное строение видимо весьма отчетливо или во всей массе кристаллов или лишь на их краях. В поляризованном свете кристаллы сверкают цветами радуги и показы- [c.446]

Материалы и оборудование. Трехнедельиые растения фасолн. Диски из хлоркобальтовой бумаги на целлулоидной подложке, канцелярские скрепки, часы, микроскопы, стекла предметные и покровные, пинцеты, капельницы с водой, лезвия безопасной бритвы, препаровальные иглы. [c.51]

Поместите на часовое или предметное стекло 1 каплю бензальдегида (прозрачная бесцветная жидкость с запахом горьких миндалей) — на общем столе. Уже через час по краям капли появляются кристаллы бензойной кислоты, а через несколько часов вся капля закристаллизо-вывается [c.131]

Для лабораторных занятий могут быть использова ны обычные дрожжи. Небольшой кусочек дрожжевой массы помещают за несколько часов до занятий в теплую подсахаренную воду и ставят в теплое место. Образуется беловатая мутная жидкость. На предметное стекло наносят каплю этой жидкости, закрывают покровным стеклом, наносят на него кедровое масло и просматривают препарат с иммерсионной системой микроскопа. Клетки хорошо видны и при меньших увеличениях. В пекарских дрожжах обычно присутствуют две расы дрожжей — одна раса представлена округло-эллипсовидными клетками, быстро разъединяющимися при почковании, другая — удлиненно-цилиндрическими клетками, образующими при почковании ветвистые кустики (псевдомицелий). На многих клетках видны почки. В мелкозернистом содержимом живых дрожжей хорошо заметны крупные прозрачные вакуоли, занимающие иногда центральное положение. [c.40]

Этого не случается, если капли помещают на предметное стекло во влажную камеру (чашка Петри, закрытая обыкновенным стеклом крышка чашки Петри не пригодна ввиду плохих оптических свойств). В последнем случае сперматозоиды в норме двигаются 6—7 часов и более. Однако и эта модификация не полностью удовлетворяет, так как более статистически значимо не ТЕюо, а ТЕ50 (время прекращения движений половины спермиев). [c.255]

Чтобы сделать культуральные методы более быстрыми и одновременно иметь возможность определить соотношение живых и мертвых клеток в исследуемом материале, был предложен кз-льтурально-микроскопический. метод на предметных стеклах с агаром и с микроскопическим подсчетом клеток сразу после посева и через несколько часов. Отмечаются делящиеся и покоящиеся клетки. Более чувствительная модификация этого метода, основанная иа способности живых клеток в присутст- [c.106]

Фунгицидная активяость -препаратов определялась по способу контактного проращивания спор тест-объекта. С этой целью определенный объем водной -суспензии испытуемого препарата в кояцентрациях 0,00125, 0,005 и 0,02% по токсическому началу наносили пипеткой на предметные стекла, на которых выгравированы кружочки диаметром по 13 мм для предотвращения растекания капель суспензии -препарата по поверхности стекла. После подсушивания при комнатной температуре капель, анесенных на предметные стекла, на сухой осадок препарата наносили тот же объем свежеприготовленной суспензии тест-объекта. Затем предметные стекла помещали во влажные камеры (чашки Петри) и экспозировали в течение 24 час. при температуре 20—22°. Приведенная выше методика, применяемая много лет токсикологической лаборатории, аналогична методике, описанной в литературе , и отличалась от нее только способом нанесения суспензии препарата на предметные стекла. [c.188]

Метилсиликоновые пасты иногда применяют в качестве гидрофобизирующих средств вместо метилсиликонового масла, например для гидрофобизации предметных и покровных стекол для микроскопа, пипеток, чашек Петри, иммерсионных объективов и т. д. (см. стр. 300). Если нужно удалить со стекла гидрофобную силиконовую пленку, то стекло опускают на несколько часов в концентрированную серную кислоту. После этого стекло споласкивают свежей порцией серной кислоты и только потом водой. Если сразу сполоснуть стекло водой без споласкивания свежей серной кислотой, то происходит гидролиз диметилсилил-серных эфиров, образовавшихся при действии серной кислоты на диметилполисилоксановую пленку, и регенерированный ди-метилполисилоксан снова может гидрофобизировать поверхность стекла. [c.354]

Зараженные пробирки помещают в термостат при 37 . Если через 24 часа какие-либо культуры не свертывают молока, не ферментируют лактозы (синий цвет индикатора не меняется) и ферментируют глюкозу, соответственно изменяя в среде цвет индикатора (среда желтеет),— не исключена возможность их отнесения к тифо-паратифозной или дизентерийной группе. В таких случаях ставится ориентировочная аглютинация. С этой целью на предметное стекло наносят каплю соответствующей специфической сыворотки, предварительно разве- Аглютинащ1я на стекле (спра- [c.577]

Защитное действие хинолина в концентрированной соляной кислоте можно объяснить образованием на поверхности металла комплексных соединений железа, которые плохо растворяются в соляной кислоте и экранируют металл от соприкосновения с ней, замедляя коррозию. Действительно, при растворении тонкого железного порошка (поле чен восстановлением FejOg в токе водорода) или оксалата железа в концентрированной соляной кислоте, содержаще) 10—15% хинолина, крупинки железа вначале растворяются с выделением водорода, затем начинают обрастать желтым игольчатыми кристаллами и выделение водорода замедляется (наблюдалось под микроскопом при проведении этой реакции на предметном стекле). Кроме того, реакцию про-водили н следующим образом. В ампулу с восстановленным железом засасывали концентрированную соляную кислот с хинолином, предварительно насыщенную водородом. Реакция начиналась бурно, затем выделение водорода постепенно уменьшалось, одновременно наблюдалось образование светло-желтых кристаллов. Через несколько часо). вся реакционная смесь закристаллизовывалась. Затем ампулу разбивали, желтые кристаллы промывали на фильтре концентрированной соляной кислотой, сушили в эксикаторе, наполненном азотом, над a lj. Некоторые порции полученных таким образом кристаллов были перекристаллизо-ваны из смеси концентрированной соляной кислоты с ацетоном. [c.67]

На предметное стекло стеклянной палочкой наносят 1 каплю геля или лактофенола, в нее помещают конус нарастания, или отдельные цветки, или его части и накрывают покровным стеклом. Для просветления тканей препарат выдерживают в глицериновом геле или лактофеноле под стеклянным колпаком или в коробке для препаратов от нескольких часов до нескольких дней. [c.9]

Пленки V2O5 (толщиной 220 ЗОк и 1600 240к). Тонкие пленки ванадия получали путем напыления в вакууме на кварцевые предметные стекла для микроскопа, концы которых предварительно покрывали платиной. Для превращения металлических пленок в пленки V2O5 стекла нагревали на воздухе при 400° или ниже в течение 24 час. В процессе нагревания пленки, имевшие вначале вид непрозрачного серебряного зеркала, становились прозрачными и желтели. После этого электрические контакты с каждой стороны стекла еще раз покрывали платиной. Толщину ванадиевой пленки рассчитывали на основании потери в весе навески ванадия и геометрии вакуумного испарителя. Точность расчетов была проверена путем прямого полярографического определения металлического ванадия на предметных стеклах, используемых в опытах, и оказалась равной 15%. [c.237]

На предметное стекло наносят несколько капель хлороформного раствора резерпина, хлороформ испаряют, а остаток растворяют в одной капле 1 % раствора уксусной кислоты и добавляют одну каплю 5% раствора роданида аммония. В присутствии резерпина образуются дендритообразные сростки кристаллов (иног да через 2 часа) (рис. 30). [c.109]

П. 60 г содержимого банки, обозначенной нами под № I, измельчалось, соединялось вместе, заливалось этиловым спиртом, подкислялось спиртовым раствором щавелевой кислоты до слабокислой реакции по лакмусу. На следующий день спирт сливался, а оставшийся объект снова заливался этиловым спиртом, слабо подкислялся спиртовым раствором щавелевой кислоты и оставлялся на сутки при комнатной температуре. Такая операция повторялась еще раз. Затем все спиртовые извлечения соединялись вместе, упаривались при 40° до сиропообразной жидкости, которая обрабатывалась небольшим количеством спирта. Свернувшиеся белки отфильтровывались, а жидкость снова упаривалась при 40°. Такая операция проделывалась до тех пор, пока при добавлении спирта уже не наблюдалось образования хлопьев. После этого сиропообразный остаток обрабатывался 25 мл дистиллированной воды, и водный раствор повторно извлекался хлороформом. Хлороформные извлечения соединялись вместе, фильтровались и хлороформ удалялся при комнатной температуре. Остаток по удалении хлороформа из кислого хлороформного извлечения был бурый, маслянистый, с неприятным гнилостным запахом. После обработки этого остатка 20 мл горячей дистиллированной воды, подщелоченной едким натром, производилось повторное извлечение хлороформом. Щелочные хлороформные извлечения соединялись вместе, хлороформ удалялся при комнатной температуре. К остатку добавлялась бромная вода жидкость упаривалась досуха на водяной бане. После упаривания сухой остаток смачивался каплей концентрированного раствора аммиака, по краям наблюдалось пурпурнокрасное окрашивание. Водная жидкость щелочной реакции подкислялась серной кислотой и повторно извлекалась эфиром. Эфирные извлечения соединялись вместе, фильтровались и эфир удалялся при комнатной температуре. Остаток слегка буроватого цвета, маслянистый, растворялся в небольшом количестве эфира и распределялся на нескольких предметных стеклах. Эфир удалялся при комнатной температуре. С остатками были проделаны следующие реакции 1) на остаток наносилась капля концентрированной серной кислоты, а затем капля дистиллированной воды — появлялся белый аморфный осадок, который через час перешел в кристаллический, по краям капли образовались сферические сростки из игольчатых кристаллов 2) на остаток наносилась капля аммиака, затем капля 10% раствора соляной кислоты — появлялся белый аморфный осадок, кристаллизующийся через 30 минут с образова- [c.213]

Максимальное размножение наблюдается через 48 часов, а через трое суток появляются первые вздувшиеся клетки — рпоран-гии. Полная споруляция заканчивается через 13—16 дней. В одной зараженной личинке через 3 недели может размножиться 5x10 и даже 2X10 спор. Инокулюм возбудителя сохраняют в виде сухих мазков гемолимфы больных личинок на предметных стеклах (после предварительной стерилизации их хлорным натрием). Биоматериал, полученный в результате заражения личинок, хранят в склянках в холодильнике. Для приготовления биопрепарата личинок промывают, пропускают через мясорубку и залива- [c.221]

Первоначальное выделение культуры Aph. flos-aquae из естественных водоемов осуществлялось этими авторами путем промывки отдельных трихомов водорослей от всех других видимых микроорганизмов стерильной питательной средой в углублении предметного стекла (при увеличении в 200 раз). Отмытые трихомы помещались в среду ASM-1 (см. ниже) с азотом и без него, а также с добавлением актидиона ( 15H23NO4) для торможения роста посторонней микрофлоры. Инкубацию проводили при 20° и освещении люминесцентными лампами с мощностью светового потока в 2500 лк, с периодами чередования свет — темнота — 14—10 час. [c.178]

Для определения влияния дитиокарбаматов на жизнеспособность спор Риз1с1ас1 ит dendгit um конидии выделяли с листьев через 10, 17 и 32 дня после обработки и проращивали их в воде на предметных стеклах в течение 20 часов при температуре 25° С. Повторность опыта 4-кратная. [c.54]

Для того чтобы лишний раз убедиться в существовании в раневой перидерме соединений, обладающих фунгитоксичным действием, опыт был продолжен в несколько иной модификации. На свеженарезанный ломтик картофеля, на ломтик после образования на нем раневой перидермы, на такой же ломтик с удаленной раневой перидермой и просто на раневую перидерму помещался кусочек це.ллофана в форме покровного стекла. На целлофан наносили каплю воды, содержащую взвесь спор F. solani. Ломтики картофеля помещались во влажные чашки Петри, которые ставились в термостат при температуре 15° С. Через 18—20 час., когда споры гриба начинали прорастать, целлофан осторожно снимался, помещался на предметное стекло под микроскоп и производился подсчет числа проросших спор. Замерялась также длина инфекционных гиф. [c.58]

Срезы толщиной 10 мк нарезают из пропитанных парафином волокон и наклеивают на предметное стекло при помощи клейковины. Парафин удаляют ксилолом и после обработки в течение 2 мин 95 и 60%-ньш спиртом переносят срезы в викторию голубой В ( .I. 44045) (2%-ный раствор в кипящей воде, охлажденный и отфильтрованный). Срезы окрашивают в течение 1 час, промывают водой и затем 100%-ным диоксаном (5 сек), 90%-ным водным диоксаном (две порции по 5 сек) и, наконец, 100%-ным диоксаном (от 5 до 20 сек). После этого срезы помещают иа 1 час в 0,2%-ный раствор калькомина бриллиантового желтого концентрированного ( .I. 24895) в смеси воды с диоксаном (10 90). Наконец, срезы промывают 5 сек 90%-ным водным диоксаном и 10—60 сек чистым диоксаном. Оболочка окрашивается в синий, а сердцевина волокна — в желтый цвет 193, 104, 175]. [c.305]

Приготовленный раствор кармина наливают в фарфоровый тигель и помещают в него фиксированный объект на несколько часов, после чего тигель осторожно подогревают, не доводя краситель до кипения. Затем объект переносят на предметное стекло в каплю свежего ацетокармина или 45%-ной уксусной кислоты (у корешков отрезают кончик длиной около 1 мм, окрашенный в более темный цвет, остальную часть удаляют). Каплю с объектом накрывают покровным стеклом и осторожно надавливают кончиком пинцета. Затем покровное стекло накрывают фильтровальной бумагой и объект полностью раздавливают круговым движением ручки препаровальной иглы, добиваясь равномерного распределения клеток в один слой. [c.187]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология